Acyl-binding protein (ACBP)은 긴사슬 acyl-CoA와 결합하는 고도로 보존되어 있는 세포질 단백질이다. 인삼의 유용 유전자를 대량으로 분석하기 위하여 제작된 인삼 모상근cDNA library로부터 인삼 ACBP유전자가 분리되었다. 이 유전자는 길이가 453 bp이고 264 bp의 open reading frame (10kDa)을 가지고 있었다. 인삼 ACBP의 아미노산 서열을 다른 식물체에서 보고된 것과 비교한 결과 castor bean과 89.5%로 매우 높은 유사성을 나타내었으며, lilly, Digitalis. Arabidopsis, rape 등과 각각 81.8%, 80.7%, 73%, 71.9%의 유사성을 나타내었다. 그러나 인삼의 ACBP는 Arabidopsis 와 rape의 ACBP보다 5개의 아미노산이 적은 87개의 아미노산으로 이루어져 있었고 어떠한 signal peptide로 발견되지 않았다. 그리고 현재 보고되어 있는 다른 식물체의 ACBP와 계통분석을 한 결과 인삼의 ACBP는 Arabidopsis나 cotton 보다는 castor bean과 매우 가까운 유연관계에 있는 것으로 나타났다.
In E. coli, chromosomal DNA associated with proteins is condensed into an organized structure known as nucleoid. Using a nitrocellulose filter binding assay to identify proteins forming nucleoid, a 21 kDa protein was purified from E. coli. The molecular weight of the purified protein was 21 kDa on SDS-polyactylamide gel electrophoresis and 24 kDa on gel permeation chromatography. A molecular weight of 21 kDa on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis is unique among known proteins which are believed to be involved in the formation of nucleoid in E. coli. The 21 kDa protein nonspecifically binds to both double-stranded and single-stranded DNA. Sedimentation in a sucrose gradient revealed that the protein induced significant condensation of both supercoiled plasmid DNA and linear bacteriophage $\lambda$ DNA On the basis of quantitative Western-blot analysis, approximately 40,000 molecules of the protein were estimated to exist in an E. coli. The biochemical properties and cellular abundance of the 21 kDa protein suggest that this protein participates in the formation of nucleoid in E. coli.
A defect in uvsC of Aspergillus nidulans caused high methyl methansulfonate (MMS)-sensitivity, hyporecombination, and a lack of UV induced mutation. The uvsC gene of Aspergillus nidulans shares a sequence similarity with the RAD51 gene of Saccharomyces cerevisiae. In this study, in vitro and in vivo tests were conducted in order to determine whether or not the UVSC protein had functional similarities to RAD51, the recombination enzyme in yeast. The purified recombinant UVSC protein, following expression in Escherichia coli, showed binding activity to single-stranded DNA (ssDNA), when both ATP and magnesium are present. In addition, ATPase activity was also demonstrated and its activity was stimulated in the presence of ssDNA. The UVSC protein that was expressed under the ADH promoter in S. cerevisiae suppressed in part the sensitivity to MMS of the rad51 null mutant. Similarly, when the uvsC cDNA was expressed from the nmt promoter, the MMS sensitivity of the rhp51 null mutant of Schizosaccharomyces pombe was partially complemented. These results indicate that the A. nidulans UVSC protein is a functional homologue of the RAD51 protein.
Retroviral integrase is required for integration of viral DNA into the host cell chromosome. Human immunodeficiency virus type-1 integrase was partially purified as a part of a fusion protein linked to a maltose-binding protein and characterized in terms of an endonucleolytic activity. The concentration of the fusion protein purified through an amylose column was about 12mg/ml. Indicating that the solubility of the fusion protein is highly increased by the presence of a maltose-binding protein, considering that the integrase protein alone is poorly solubilized. The endonucleolytic activity of the fusion protein was detected at 0.1 to 1.OmM $Mn^{++}$ ion, but not at any concentrations tested of $Mn^{++}$ ion.
The Jun and Fos families of eukaryotic transcription factors form heterodimers capable of binding to their cognate DNA enhancer elements. We are interested in searching for inhibitors or antagonists of the binding of the Jun-Fos heterodimer to the activator protein-1 (AP-1) site. The basic-region leucine zipper (bZIP) domain of c-Fos was expressed as a fusion protein with glutathione S-transferase, and allowed to form a heterodimer with the bZIP domain of c-Jun. The heterodimer was bound to glutathione-agarose, to which were added radiolabeled AP-1 nucleotides. After thorough washing, the gel-bound radioactivity was counted. The assay is faster than the coventional electrophoretic mobility shift assay because the gel electrophoresis step and the autoradiography step are eliminated. Moreover, the assay is very sensitive, allowing the detection of picomolar quantities of nucleotides, and is not affected by up to 50% dimethylsulfoxide, a solvent for hydrophobic inhibitors. Curcumin and dihydroguaiaretic acid, recently known inhibitors of Jun-Fos-DNA complex formation, were applied to this Jun-GST-fused Fos system and revealed to decrease the dimer-DNA binding.
Small GTP-binding proteins are divided into three major group: Ras, Rho and Ypt/Rab. They have the conserved regions designed G1 to G5 that are critical in GDP/GTP exchange, GTP-induced conformational change and GTP hydrolysis. We isolated and characterized genomic DNA or cDNAfragments encoding G1 to G3 domains of small GTP-binding protein Rab and Rho from several plant species using two different PCR-based cloning strategies. Seven rab DNA fragments were isolated from 4 different plants, mung-bean, tobacco, rice and pepper using two degenerate primers corresponding to the GTP-binding domain G1 and G3 in small GTP-binding proteins. The amino acid sequences among these rab DNA fragments and other known small GTP-binding proteins shows that they belong to the Ypt/Rab family. Six rho DNA fragments were isolated from 5 different plants, mung-bean, rice, Arabidopsis, Allium and Gonyaulax using the nested PCR method that involves four degenerate primers corresponding to the GTP-binding domain G1, G3 and G4. The rho DNA fragments cloned show more than 90% homology to each other. Sequence comparison between plant and other known Rho family genes suggests that they are closely related (67 to 82% amino acid identity). Sequence analysis and southern blot analysis of rab and rho in mung-bean suggest than thses genes are encoded by multigene family in mung-bean.
Transcription termination of the human mitochondrial genome requires specific binding to termination factor mTERF. In this study, mTERF was produced in E. coli and purified by two-step chromatography. mTERF-binding DNA sequences were isolated from a pool of randomized sequences by the repeated selection of bound sequences by gel-mobility shift assay and polymerase chain reaction. Sequencing and comparison of the 23 isolated clones revealed a 16-bp consensus sequence of 5'-GTG$\b{TGGC}$AGANCCNGG-3' in the light-strand (underlined residues were absolutely conserved), which nicely matched the genomic 13-bp terminator sequence 5'-$\b{TGGC}$AGAGCCCGG-3'. Moreover, mTERF binding assays of heteroduplex and single-stranded DNAs showed mTERF recognized the light strand in preference to the heavy strand. The preferential binding of mTERF with the light-strand may explain its distinct orientation-dependent termination activity.
Deinococcus radiodurans recA는 이 미생물의 방사선 저항성을 나타내는 표현형에 필수적이며 재조합성 DNA 수선 과정에 관여한다. 이 과정에서 RecA 단백질은DNA와 결합하여 반응의 활성 종인 RecA nucleoprotein 필라멘트를 형성한다. DNA-의존성 ATPase 활성과 함께, RecA 단배질의 외가닥 DNA 혹은 이중가닥 DNA와의 상호작용은 RecA 단백질이 관여하는 반응의 중심과정으로 이에 관한 분석을 시도하였다. D. radiodurans RecA 단배질은 DNA에 결합한 DNA-단백질 복합체만이 ATPase 활성을 나타내므로, ATP (혹은 dATP) 가수분해를 측정함으로써 RecA와 외가닥 DNA와의 상호작용 정도를 분석하였다. D. radiodurans RecA 단백질은 외가닥 DNA의 염기 구성의 이질성에 영향을 받았으며, homopolymer인 poly(dT)와의 상호작용에서 가장 높은 가수분해 활성을 보였다. Homopolymer인 합성 DNA-의존성 ATP 및 dATP의 가수분해는 pH 6.0과 9.0의 범위에서 다소 일정한속도로 일어났으며 최적 pH는 7.0과 7.5 사이였다. 외가닥 DNA-의존성 ATPase 활성은 염의 존재에 영향을 받아 KCl이 존재하면 다소 억제되나, K-glutamate가 존재하면 오히려 촉진되었다. RecA 단백질과 외가닥 DNA의 상호작용을 ATP 가수분해로 분석하였을 때 2 mM 이상의 magnesium 이온이 DNA 결합반응에 필요하였으며, 비교적 넓은 범위의 pH에서 외가닥 DNA와의 결합반응이 일어나며, 이러한 결합반응은 당량적인 비(1:3, RecA protein: DNA nucleotide)로 일어났다.
The product of bacteriophage T7 gene 2.5 is a single-stranded DNA binding protein and plays an important role in T7 DNA replication, recombination, and repair. Genetic analysis of T7 phage defective in gene 2.5 shows that the gene 2.5 protein is essential for T7 DNA replication and growth (Kim and Richardson, 1993). The C-terminal truncated gene 2.5 protein ($GP2.5-{\Delta}21C$) cannot substitute for wild-type gene 2.5 protein in vivo; suggesting that the C-terminal domain of gene 2.5 protein is essential for protein-protein interactions (Kim and Richardson, 1994; J. Biol. Chem. 269, 5070-5078). Truncated gene 2.5 proteins lacking 19 residues ($GP2.5-{\Delta}19N$) and 39 residues ($GP2.5-{\Delta}39N$) from the amino-terminal domain were constructed by in vitro mutagenesis. $GP2.5-{\Delta}19N$ can support the growth of T7 phage lacking gene 2.5 while $GP2.5-{\Delta}39N$ cannot substitute for wild-type gene 2.5 protein in vivo; however, its ability to bind to single-stranded DNA is not affected. These results clearly demonstrate that the 20~39 amino-terminal region of gene 2.5 protein is required for T7 growth in vivo but may not be involved in DNA binding activity.
Magnetic nanoparticles prepared from an alkaline solution of divalent and trivalent iron ions could covalently bind protein via the activation of Nethyl-N-(3-dimethylaminopropyl) carbodiimide (EDC). Trypsin and avidin were taken as the model proteins for the formation of protein-nanoparticle conjugates. The immobilized yield of protein increased with molar ratio of EDC/nanoparticie. Higher concentrations of added protein could yield higher immobilized protein densities on the particles. In contrast to EDC, the yields of protein immobilization via the a ctivation of cyanamide were relatively lower. Nanoparticles bound with avidin could attach a single-stranded DNA through the avidin-biotin interaction and hybridize with a DNA probe. The DNA hybridization was confirmed by fluorescence microscopy observations. Immobilized DNA on nanoparticles by this technique may have widespread applicability to the detection of specific nucleic acid sequence and targeting of DNA to particular cells.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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