We isolated two Cd-binding high molecular weight proteins from intraperitoneally cadmium injected rat liver. Molecular weight of Cd-BP(I) purified from Sephacryl S-100 and DEAE Sepharose column chromatography and Cd-BP(II) purified from DEAE Sepharose column chromatography and Sulphonyl Sepharose column chromatography was 33,000 and 18,400, respectively. Alcohol dehydrogenase and alkaline phosphatase acitivities were not detected from two purified proteins.
GTP binding protein (G-protein) associated with membrane and involved in signal transduction was isolated from bovine brain, and molecular weight of G protein was observed. As the results, cell membranes were homogenized from bovine brain tissues and proteins of membrane were gained using 1% cholate, and progressed the chromatography. The purification process was performed by step, DEAE-Sephacel, Ulttrogel AcA 34 and heptylamine-Sepharose column chromatography. The chromatographic fractions were confirmed by GTP binding assay and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. Molecular weight of $Go{\alpha}$ was revealed 39,000 dalton and $G{\beta}$ 36,000 dalton. One more step of heptylamine-Sepharose was enforced to purify the GTP binding protein. Finally I gained the GTP binding protein isolated subtype of $Go{\alpha}$ and $G{\beta}$.
The effects of pH on the binding of human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (hGM-CSF) expressed from transgenic plant cell suspensions to cationic and anionic exchange resins were investigated. In terms of stability, the optimum pH was found to be 5-7. In the case of using buffer exchange, when CM-sepharose was used as a cationic exchange resin, the best binding pH was 4.8 (77%) and when DEAE-sepharose was used as an anionic exchange resin, the best binding pH was 5.5 (74%). Without using buffer exchange, the optimum pH was 4.6 and the adsorption yield was 84%. From these results, a possibility of overcoming the degradation and instability of secreted protein product by in firm adsorption was found.
Several enzyme immobilization methods has been compared for immobilization of pepsin. Carboxymethyl cellulose and diethylaminoethyl cellulose were activated with Hcl and with NaOH, and were used for immobilization of pepsin. Sepharose-4B was activated cyanogen bromide, and was used for immobilization of pepsin. Porous glass beads were derivatized with 3-aminopropyitrlethoxysilane and with succinicanhydride, and were used for immobilization of pepsin. The results abtained were summarized as follow, 1. 10 mg/gr. dry bead and 15mg/gr. dry bead of pepsin were absorbed to CM-cellulose and DEAE-cellulose, 20 mg/gr. dry bead and 27 mg/gr. dry bead were coupled to CM-cellulose and DEAE-cellulose with glutaraldehyde respectively. Enzyme yields were 22% and 24% of soluble pepsin. 2. 16 mg/gr. dry bead of pepsin was attached to cyanogen bromide activated sepharose-4B, 19mg/gr. dry bead was cross linked to the activated bead with glutaraldehyde. Immobilized enzyme activity was 23% of soluble pepsin. 3. 40 mg/gr. dry bead of pepsin was conjugated to the derivatized glass beads. Immobilized enzyme activity was 45% of soluble pepsin.
Pretense produced by Bacillus subtilis PANH765 was purified from culture supernatant by using ammonium sulfate fractionation DEAE-cellulose ion exchange chromatography, and gel filtration with Sephacryl S 200 HR and Sepharose CL-6B. DEAE-cellulose ion exchange column chromatography, separated the pretense into one fraction. This fraction was further purified using Sephacryl S 200 HR and Sepharose CL-6B gel titration. The molecular mass of pretense was estimated to be 35.0 kDa by the SDS-PAGE and gel filtration using Sepharose CL-6B. The results indicated that the purified pretense are monomeric proteins. Specific activity and purification folds of pretense were 657 U/mg and 4.35, respectively. The optimum temperature, optimum pit stable at a temperature range and pH ranges for the purified protease were 65$^{\circ}C$, 7.05, 50 ∼ 75$^{\circ}C$ and 6.0 ∼ 7.5, respectively. The pretense activity was decreased by the presence of PMSF and DFP, which the protease activity was increased by the presence of Na$\^$+/, K$\^$+/, Mg$\^$2+/ and NH$_4$$\^$+/ ions.
For the preliminary step to make and characterize the monoclonal antibodies of human alpha-fetoprotein (AFP) was purified from 534g of human fetal tissues through the procedures of tissue extraction, DEAE-cellulose, concanavalin A-Sepharose, Cibacron Blue F3GA-agarose and immunoadsorbent affinity chromatography. The isolated AFP preparation showed a single band on polyacrylamide gel electrophoresis and a single precipitin are against rabbit anti-human cord serum and anti-human AFP on immunoelectrophoresis. Our AFP also displayed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The recovery of AFP was 8.76mg total.
A novel type of sulfotransferase, arylsulfate sulfotransferase (EC 2.8.2.22) purified from Haemophilus K-12, an intestinal bacterium of a mouse, was immobilized onto AH-S epharose 4B, CH-Sepharose 4B and DEAE-celluose. The enzyme was stabilized for storage more markedly by covalent immobilization onto AH-Spharose 4B or CH-Sepharose 4B and by adsorptive immobilization onto DEAE-cellulose than the free enzyme. The optimal pH and acceptor substrate specificity of immobuized enzyme were similar to those of the free enzyme.
Deer antler tissue contains the most rapidly growing bone in the animal kingdom. Thus, it is likely that growing antler tissue is a rich source of local paracrine bone-stimulating factors. Growth factors, at least the insulin-like growth factor (IGF), control the bone-remodelling process. In this study, we tried to isolate and purify IGF-I from fresh antler tissue by the routine isolation and purification of protein. The purification involved ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sepharose CL-60 ion-exchange chromatography, CM-Sepharose CL-6B ion-exchange chromatography, and Sephadex G-50 chromatography. Purified fractions from each step were analyzed by high-performance liquid chromatography (HPLC), SDS polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PACE), Dot-blot, and Western-blot methods. Furthermore, the quantification of partially purified IGF-I was calculated by enzyme-linked immunosorbent assays (ELISA) using antibody to human recombinant IGF-1. SDS-PAGE analysis of the final fraction yielded two molecular bands and the signal band was at 12 kDa on the Western-blot film. This purified IGF-I fraction showed a peak at retention time of eight min. The quantity of IGF-I in 20 g deer antler tissue as starting weight was calculated using a standard curve to be 2910 ng/ml, and total IGF-I amount is 0.291 g. The results show that IGF-I, which can be found in deer antler, can be partially purified and quantified by classic protein isolation methods.
Sphingomonas sp. KS 301, which was isolated from oil contaminated soil, was shown to have five different SODs (SODI, II, III, IV, V) which can be separated by DEAE-Sepharose chromatography, and SOD III was finally purified in this study by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sepharose chromatography, Superose 12 gel filtration and Uno-Q1 ion exchange chromatography. The molecular weight of SOD III was 23 kDa as determined by SDS-PAGE and the apparent molecular weight of the native enzyme was estimated to be approximately 71 kDa by Superose-12 gel filtration chromatography. These data suggest that the purified SOD consists of at least two subunits. The specific activity of the SOD III was higher than Mn type or Fe type SOD of Escherichia coli by 5 fold. To determine the type of SOD III, inhibitory effects of $NaN_{3},\;H_{2}O_{2},\;KCN$ were examined. 10 mM $NaN_{3}$ was able to inhibit 56% of the SOD III activity, which indicates that this SOD is Mn type. The optimum pH of the SOD III was 7.0 and the optimum temperature was $20^{\circ}C$. N-terminal amino acid sequence of purified SOD III was most similar to those of Psudomonase ovalis and Vibrio cholerae among bacteria.
These experiments were carried out to isolate SIgA from human and bovine milk. The immunochemical properties of SIgA from human and bovine milk were examined by Gel filtration, DEAE and SDS-PAGE. Double Immunodiffusion, and Immunoelectrophoresis. The results obtained are as follows: 1. Human SIgA was purified from colostrum of Korean women by repeated gel filtration on Sephadex G-200 and Sepharose 6B, but bovine SigA was not cleary purified from bovine colostrum of Holstein cows by anion exchange chromatography using DEAE-Sephadex A-50 and gel filtration on Sephadex G-200 and Sepharose 6B. 2. The immunochemical properties of fractions from gel filtration on the Sephadex G-200 and Sepharose 6B column as assessed by Immunoelectrophoresis and double Immunodiffusion to identify the presence of IgM in first peak fraction, and the presence of pure SIgA in second peak fraction. However, Bovine SigA rich fraction from bovine colostrum of Holstein cows contained a large amount of $IgG_1$-dimer in addition to SIgA. 3. The fragments of reduced bovine colostrum SIgA rich fraction were estimated to have molecular weights of secretory component, heavy chain and light chain (75,000-80,000, 50,000-60,000, 25,000-27,000 daltons) by SDS-PAGE, respectively. Those were similar to the molecular weight of reduced SIgA from human milk.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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