The effect of various additives on the thermostability of Bacillus sp. cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) was investigated. CaCl$_2$, starch, and glycerol had a positive effect on the thermostability of the CGTase, which was very stable for 6 months with added starch (5%, w/v) and CaCl$_2$(0.05 M) at 30$^{\circ}C$.
The influence of ethylene glycol, glycerol, sorbitol and sucrose on the thermostability of Bacilus stearothermophzlus cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) was investigated. Glycerol, sorbitol and sucrose had effect on thermostability of the CGTase. The effects appeared to be strongly dependent on concentration of additives. The thermostability of CGTase also was assayed in organic solvents such as n-butanol, l, &dioxane, n-octane. The therrnostability of CGTase increased in l, 4-dioxane and n-octane. Particularly, in n-octane, the CGTase retained the 81% of the initial activity after incubation at $75^{\circ}C$ for 90 min.
- The cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) of a mutant of Bacillus stearothermophilus was purified in one step by affinity chromatography. The recovery was 95%. The specific activity of the CGTase increased from 26.2 U/mg protein to 485.5 U/mg protein. The purified CGTase was almost homogeneous by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The one-step purification proved to be feasible with the mutant in contrast to the parent strain, which required pre-purification step of ammonium sulfate precipitation.
Mechanism of the cyclodextrin (CD) production reaction by cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) using swollen extrusion starch as substrate was investigated emphasizing the structural features of starch granule. The degree of gelatinization was identified to be the most representative structural characteristic of swollen starch. The most suitable degree of gelatinization of swollen starch for CD production was around 63.52%. The structural transformation of starch granule during enzyme reaction was also followed by measuring the changes of the degree of gelatinization, microcrystallinity, and accessible and inaccessible portion to CGTase action of residual swollen starch. The adsorption phenomenon of CGTase to swollen starch was also examined under various conditions. The inhibition mechanism of CGTase by various CDs was identified to be competitive, most severely by a-CD. The mechanism elucidated will be used for development of a kinetic model describes CD production reaction in heterogeneous enzyme reaction system utilizing swollen extrusion starch.
The cyclodextrin glucanotransferase(CGTase) gene of Bacillus macerans was expressed in Saccharomyces cerevisiae and the recombinant CGTase was partially purified from the yeast culture supernatant. The optimal pH and temperature of the CGTase were found to be 6.0 and 5$0^{\circ}C$, respectively. The pH and temperature stabilities of the recombinant enzyme were significantly enhanced and the half life at 55$^{\circ}C$ was about 60 hr. When the recombinant CGTase was reacted with 5% soluble starch, the conversion yield of total cyclodextrin (CD) from starch was estimated to be 41% at 48 hr, whereas the wild type enzyme showed the yield of 12%. This improvement of conversion yield and thermal stability of CGTase may be useful for the development of low-cost CD production process.
The cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) was purified from the culture broth of Bacillus stearothermophilus by ammonium sulfate precipitation and affinity chromatography. The specific activity of the CGTase increased by about 31-fold from 111.5 U/mg protein to 3445.0 Ulmg protein. The SDSPAGE indicated that the purified CGTase was homogeneous and the molecular weight of the purified CGTase was about 78,000. The optimum pH and temperature was 6.0 and $60^{\circ}C$, respectively. This enzyme was stable from pH 5.5-10.0. The enzyme retained its full activity at the incubation temperature up to $60^{\circ}C$ and calcium ion increased the thermal stability. The isoelectric point was about 4.8.
The cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) gene from Bacillus stearothermophilus NO2 was expressed in Saccharomyces cerevisiae 2805 under the adhl promoter. The CGTase was purified from S. cerevisiae 2805/pVT-CGTS. The purified enzyme exhibited a optima of activity around pH 7.0 and $65^{\circ}C$. Thermal stability of the enzyme was increased fairly as compared with the CGTase of B. stearothermophilus NO2. The conversion yield of cyclodextrin (CD) and the production ratio of $\alpha$-, $\beta$,-, ${\gamma}$-CD from starch were showed similarly aspect to the CGTase of B. stearothermophilus NO2.
Cyclodextrin Glucanotransferase(EC 2.4.1.19 : 1,4-${\alpha}$-glucano) transferase, cyclizing; CGTase) can be separated and recovered in an aqueous two-phase system composed of poly(ethylene glycol)(PEG)/dextran and PEG/salt. In an aqueous two-phase system consisting of PEG 35000 (5%) and dextran T2000 (7%), all cell and debris were collected at the interphase. CGTase partitioned to the denser dextran phase at an yield of 83.4%. On the other hand, in an aqueous two-phase system consisting of PEG 35000 (10%) and sodium phosphate (15%), CGTase partitioned to the denser salt phase at an yield of 95.5%. In order to recover CGTase using an aqueous two-phase system, the PEG/salt system proved to be more efficient than the PEG/dextran system in terms of yield and cost.
An alkalophilic microorganism for overproduction of cyclodextrin glucanotransferase (CGTase) was newly isolated from hot-water spring soil, and identified as Bacillus firmus var. alkalophilus H609. The strain maintained stability during preservation and cultivation for the enzyme production, and produced significant amount of CGTase corresponding to the volumetric activity of 75 units/mL at 37C, initial pH of 11.2, and after 40 hours. The strain excreted several different proteins showing CGTase activity that catalyzed the formation of mainly beta-and Gamma-type cyclodextrin (ratio of 7:1) from soluble starch without accumulation of alpha-type. Other enzymatic properties were also investigated.
Cyclodextrin glucanotransferase(CGTase) derived from Bacillus macerans was immobilized by (1) covalent linkage on chitosan and chitin with glutaraldehyde, (2) adsorption on DEAE-cellulose and Amberite IRA 900 after succinylation, and (3) entrapment on alginate and polyacrylamide by cross linking. Adsorption on Amberite IRA 900 and covalent linking on chitosan were identified to be the most suitable immobilization methods considering the yield of activity and stability of immobilized CGTase. The enzymatic properties of immobilized CGTase were investigated and compared with those of the soluble CGTase. Thermal stability of CGTase immobilized on chitosan was increased from 50 to $55^{\circ}C$, and the optimum temperature of CGTase immobilized on Amberite IRA 900 was shifted from 55 to $50^{\circ}C$. The effect of molecular size of soluble starch (substrate) on immobilized CGTase investigated using partially liquefied substrates with different dextrose equivalent(DE). Cyclodextrin(CD) conversion yield augmented according to the increase of DE level for immobilized CGTase on Amberite IRA 900. CD conversion yield of partially cyclized starch with soluble CGTase was higher compared with liquefied one with ${\alpha}-amylase$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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