The presence of sialoglycoproteins (SGPs) in the membranes from goat (Capra aegagrus hircus), buffalo (Bubalus bubalis bubalis) and pig (Sus scrofa domestica) erythrocytes was investigated by partial purification with a chloroform-methanol extraction method followed by Sodium dodecyl sulphate - Polyacrylamide gel electrophoresis in comparison to human (Homo sapiens) erythrocytes. The results show that mammalian erythrocytes possess clear differences in the SGPs numbers and molecular weights although all animals studied in this experiment are from the same class i.e. mammalia. The SGPs number in human, goat, buffalo and pig are four (PAS-1 to PAS-4), ten (PAS-GI to PAS-GX), seven (PAS-BI to PAS-BVII) and four (PAS-PI to PAS-IV) respectively as indicated by staining the polyacrylamide gel with sialoglycoprotein-specific Periodic acid-Schiff's (PAS) stain. The new SGPs could be observed only after the partial purification of membrane fractions named as PAS-HI with molecular weight (Mr) 190 kDa and PAS-HII 150 kDa in human, PAS-BIA in buffalo and PAS-PIA and PAS-PIVA in pig. The gels were also stained with Coomassie brilliant blue (CBB) and Silver stain to check the contamination of other membrane proteins in the purified fractions. The quantitative distribution of SGPs was also determined by densitometry. Present study indicates that there are some basic differences in mammalian erythrocyte membrane SGPs, especially with respect to their number and molecular weights indicating major structural variations.
Lee, Won Ju;Cho, Seong-Woo;Tsujimoto, Hisashi;Roy, Swapan Kumar;Kim, Hong-Sig;Woo, Sun Hee
Proceedings of the Korean Society of Crop Science Conference
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2017.06a
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pp.122-122
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2017
Wheat wild relatives that have never been domesticated contained useful genetic resources such as the resistance to abiotic and biotic stresses. Leymus racemosus is one of the wild species. It can grow in a harsh environment like seaside and distribute by healthy rhizomes. Also, it has a useful genetic resource such as salt tolerance and different diseases resistance. Wheat (Triticum aestivum L. cv. Chinese Spring; CS) was crossed with L. racemosus. Wheat-L. racemosus disomic addition lines were produced. The purpose of this study is to identify protein expression in each disomic addition line compared to CS. We performed two-dimensional electrophoresis. Two-dimensional gels stained with coomassie brilliant blue (CBB), a total of 1566 differentially expressed proteins were identified by Progenesis Same Spots software from the cultivars. However, a total of 90 protein spots were identified to be either present or absent or showing significantly differential expression when the difference threshold was set to more than 1.5 fold. However, out of the 90 differentially protein spots, a total of 74 spots were sorted for mass spectrometry analysis. The identified proteins may provide important clues for better understanding the molecular changes in the chromosomes carrying Leymus racemosus.
Kim, Sung Woo;Lee, Jae-Yeong;Kim, Chan-Lan;Ko, Yeong Gyu;Kim, Bongki
Journal of Animal Reproduction and Biotechnology
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v.37
no.1
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pp.55-61
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2022
The acrosome cap allows sperm to penetrate the egg membrane and produce male pronuclei within female chicken eggs, facilitating successful fertilization. Given this, it is important to establish practical methods for evaluating the integrity of the acrosome cap and thus the quality of the rooster's sperm. There are several established methods for evaluating the acrosomes of mammalian sperm, but none of these methods are suitable for evaluating the acrosome status of rooster spermatozoa. Therefore, a simplified method for evaluating the rooster acrosome is needed. Here we evaluated the usefulness of CBB (coomassie brilliant blue) staining of the acrosome at concentrations of 0.04%, 0.08%, and 0.3% CBB solutions. Our data revealed a clear staining pattern for intact acrosome caps at 0.04% and 0.08% CBB but not at 0.3% CBB. This protocol revealed differences in acrosome integrity between fresh and frozen rooster sperm smears suggesting that CBB staining may facilitate easier semen evaluation in roosters. This protocol allows for the accurate differential staining of acrosome cap in rooster spermatozoa.
Nonylphenol (NP), an well known aquatic contaminant, has been known to induce abnormalities in various aquatic animals. In an effort to develop proteome in the study of aquatic contamination of NP and its impact on the amphibia, protein changes in liver tissues of Korean red bellied frog, Bombina orientalis was investigated following the NP exposure. NP was administered intraperitoneally to male B. orientalis at 10 mg/kg body weight. At 48 and 96h after the treatment, the frog livers were sampled, and the protein fraction was separated using two dimensional gel electrophoresis (2D/E) and visualized with Coomassie brilluant blue staining. The 2D/E Images of the tissue from the animals treated with NP showed marked changes of protein spots (about 20% of total protein spots). Analysis of the 50-60 separated spots allowed identification of the major protein changes in the overall pattern for the stressor (NP) by time (0,48 and 96 h). At 48h after treatment, 8 spots were increased and 12 spots were reduced. Then, at 96h after treatment, 10 spots were increased and 8 spots were reduced. In total, approximately 29% of liver proteins showed the altered expression following the NP treatment. It is suggested that protein expression was repressed by blocking of certain metabolisms at 48 hand induced by the synthesis of new proteins for adaptation at 96 h following NP exposure. This application for 2D/E analysis may show promise in searching biomarkers for environmental proteomics in amphibians.
Analysis of siR isolates of Trichemenes veginalis was carried out with sodium dodecyl sulfate- polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and enzyme-linked immunoelectrotransfer blot (EITB). Trichloroacetic acid-treated antigens of the 6 isolates revealed 25 protein profiles ranging 12~170 kDa of molecular weight in SDS-PAGE. In EITB, the specific immunogenic bands were visualized at 51 kDa and 96 kDa when HY-1 antigen was probed with difFerent mice sera immunized with 6 isolates of T. vaginalis. The banding patterns with different sera showed isolate-to-isolate variability. In EITB, homologous antigen (HY-1) did not show any enhanced response in reacting to homologous antiserum(HY-1) when 6 isolates of T. vaginalis were probed with a single serum (HY-1). It is assumed that the different banding patterns of six isolates show isolate-to-isolate variability and immunogenic common bands in 41, 47, 74 and 9:k kDa on EITB may connote the important significance on immune response in T. vaginalis infection.
In this experiment, oocytes were collected from goat ovaries available in slaughterhouse by follicle puncture method. Morphologically culturable type of oocytes which having compact, multilayered cumulus granulosa cell complex and evenly granulated cytoplasm, was separated under a stereozoom microscope. Oocytes were washed thoroughly in maturation medium containing TCM-199, $1{\mu}g/ml$ estradiol-$17{\beta}$, 0.5 ${\mu}g/ml$ FSH, $100{\mu}g/ml$ LH, 3 mg/ml BSA and 10% estrus goat serum. Washed oocytes were cultured into maturation medium on granulosa cell monolayer. Culture plate was then kept into $CO_2$ incubator at $38{\pm}1^{\circ}C$, maximum humidity and 5% $CO_2$ for 18 h. After maturation the oocytes were washed thoroughly with maturation medium containing polyvinyl alcohol (PVA) without serum and BSA and further cultured for 12 h for secretory proteins of oocytes. PVA medium was collected, pooled and concentrated by 5000 cut off centrisart. Secretory proteins were separated on 12.5% SDS-PAGE. A total number of 3.41 oocytes per ovary were obtained and 2.17 culturable oocytes per ovary were cultured into maturation medium. After 18 h of maturation, 4,567 oocytes (1.82 oocytes per ovary) were further cultured into serum and BSA free PVA medium for its secretory proteins. Four secretory proteins of oocytes with approximately molecular weight of 45, 55, 65 and 95 kDa were obtained on SDS-PAGE in silver staining and three proteins with approximately molecular weight of 45, 55 and 65 kDa in Coomassie brilliant blue staining. In conclusion, four secretory proteins with approximately molecular weight of 45, 55, 65 and 95 kDa was obtained from in vitro cultured oocytes of goats.
Kim, Hong-Rye;Han, Rong-Xun;Kim, Myung-Youn;Diao, Yunfei;Park, Chang-Sik;Jin, Dong-Il
Reproductive and Developmental Biology
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v.33
no.4
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pp.237-242
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2009
Pregnancy is a unique event in which a fetus develops in the uterus despite being genetically and immunologically different from the mother, and the underlying mechanisms remain poorly understood. To analyze the differential gene expression profiles in nonpregnant and 7 days post coitus (dpc) pregnant uterus of mice, we performed a global proteomic study by 2-D gel electrophoresis (2-DE) and MALDI-TOF-MS. The uterine proteins were separated using 2-DE, Approximately 1,000 spots were detected on staining with Coomassie brilliant blue. An image analysis using Melanie III (Swiss Institute for Bioinformatics) was performed to detect variations in protein spots between pregnant and nonpregnant uterus. Twenty-one spots were identified as differentially expressed proteins, of which 10 were up-regulated proteins such as alpha-fetoprotein, chloride intracellular channel 1, transgelin, heat-shock protein beta-1, and carbonic anhydrase II, while 11 were down-regulated proteins such as X-box binding protein, glutathione S-transferase omega 1, olfactory receptor Olfr204, and metalloproteinase-disintegrin domain containing protein TECADAM. Most of the identified proteins appeared to be related with catabolism, cell growth, metabolism, regulation, cell protection, protein repair, or protection. Our results uncovered key proteins of mouse uterus involved in pregnancy.
To examine the differential expression of proteins during the cycling (70~80% confluences) and G0/G1 (full confluences) phases in porcine fetal fibroblast cells, we used a global proteomics approach by 2-D gel electrophoresis (2-DE) and MALDI-TOF-MS. Cycling cell were harvested at approximately 70% to 80% confluent state while cells in G0/G1 phase were recovered after maintenance of a confluent state for 48 hr. Cellular proteins with isoelectric points ranging between 3.0~10.0, were analyzed by 2-DE with 2 replicates of each sample. A total of approximately 700 spots were detected by 2.D gels stained with Coomassie brilliant blue. On comparing the cell samples obtained from the cycling and G0/G1 phases, a total of 13 spots were identified as differentially expressed proteins, of which 8 spots were up-regulated in the cycling cell and 5 were up-regulated in the G0/G1 phase. Differentially expressed proteins included K3 keratin, similar to serine protease 23 precursor, protein disulfide-isomerase A3, microsomal protease ER-60, alpha-actinin-2, and heat-shock protein 90 beta. The identified proteins were grouped on the basis of their basic functions such as molecular binding, catabolic, cell growth, and transcription regulatory proteins. Our results show expression profiles of key proteins in porcine fetal fibroblast cells during different cell cycle status.
This study was to examine whether the in vitro friability, motility and intact acrosome of frozen-thawed bovine and human sperm can be improved by adding Pentoxifylline (PF) or Fertilization Promoting Peptide (FPP). Human semen was frozen ultra-rapidly using Test yolk-buffer (TYB) freezing medium. Additive (PF, FPP) effects in frozen-thawed bovine and human sperm were analyzed by microscopic count for sperm motility and coomassie brilliant blue staining method f3r sperm acrosome intact. The in vitro motility of frozen-thawed bovine sperm with 5 mM PF treatment group (50.0%) was significantly higher than that of control (34.0%) (P<0.05). In the frozen-thawed bovine sperm was examined, the intact acrosome rate of 50 nM FPP treatment (49.0%) was significantly higher than those of control (30.0%) and 25 nM FPP (38.0%) treatment groups (P<0.01). In human semen, when in vitro motility of sperm with PF addition prior to freezing was examined, the result of 5 mM treatment group (51.0%) was significantly higher than those of control and 2.5 mM treatment group (39.0, 40.0%) (P<0.01). In addition, 50 nM (75.5%) FPP adding in all treatment procedures for human semen freezing (before freezing, freezing and after thawing) was significant effect on maintenance of the sperm intact acrosome percentage (control: 45.0; 25 nM: 53.0; 100 nM: 68.0%) (P<0.01). Also, the intact acrosome rate of human sperm with FPP (65.0%) was significantly higher than that with PF (43.0%) (P<0.05), although sperm motility was slightly higher in PF treatment group. These results suggest that improved sperm motility and intact acrosome of frozen thawed bovine and human sperm can be obtained by addition of PF or FPP, and that the enhanced in vitro viability, motility and intact acrosome can be obtained by addition of FPP in all semen freezing procedures.
The early diagnosis of bovine pregnancy is an essential component of successful reproductive planning on farms, because lack of bovine pregnancy over the long term results in reproductive failure and low milk yield-the latter of which is a special concern on dairy farms. This study was designed to identify early pregnancy-specific whey proteins in bovine, by comparing milk samples collected from cattle during pregnancy (Days 30 and 50) and from non-pregnant cattle. In this study, differentially expressed proteins in five pregnant and five non-pregnant Holstein dairy cattle were investigated and compared, using proteomics analysis. The first dimension was applied to a pH $3.0{\sim}10.0$ strip, by loading a 2-mg milk protein sample. After the second-dimension separation was performed, the gels were stained with colloidal Coomassie brilliant blue. The stained gels were scanned and the images were analyzed, to detect variations in protein spots between non-pregnant and pregnant cattle milk protein spots, using ImageMaster, this was followed by analysis with MALDI TOF-MS. Analysis of the 2-DE gel image resulted in a total of approximately $500{\sim}600$ protein spots, of which 12 spots were differentially expressed, six spots were up-regulated, and four spots were down-regulated; two spots were identified as pregnancy-specific proteins. These proteins were identified as lactoferrin, NA-DH dehydrogenase subunit 2, albumin, serum albumin precursor and transferrin. Our results via 2-D PAGE analysis revealed composite profiles of several milk proteins related to early bovine pregnancy, implying the possible use of these milk proteins in the early detection of bovine pregnancy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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