In order to investigate the diversity of bacterial community in the mud flat of Sunchon Bay, Chunnam province, diversity of amplified 16S rDNA was examined. Total DNA was extracted from sediment soils and 16S rDNAs were amplified using PCR primers based on the universally conserved sequences in bacteria. Clonal libraries were constructed and 111 clones were examined by amplified rDNA restriction analysis (ARDRA) using HaeIII. Clones were clustered based on restriction patterns using computer program, GelCompar II. One hundred different RFLP types were detected from 111 clones. The 20 clones were selected and sequenced according to dendrograms derived from ARDRA, to cover most of the bacterial diversity in the clone libraries. None of the clones were identical to any representatives in the Ribosomal Database Project small subunit RNA databases and GenBank. All sequences showed between 77 and 96.8% similarity to the known 16s rRNA sequence from cultured organisms. The 20 clones sequenced fell into seven major lineages of the domain Bacteria: alpha-, delta-, gamma-Proteobacteria, low G+C Gram positive bacteria, high G+C Gram positive bacteria, Sphingobacteria (Cytophaga) and Cyanobacteria (chloroplast). Among the clones, the Proteobacteria were dominant.
A liguleless mutant, which showed complete loss of lamina joint region at the junction between leaf blade and leaf sheath, was isolated from a Ds insertional mutants derived from the source cultivar, Dongjin. This mutant could not affect other developmental patterns like phyllotaxis. Southern blot analysis, using GUS as a probe, revealed that the liguleless mutant contained three Ds copies transposed in the rice genome. Among the four genomic sequences flanking the Ds, one was mapped in the intergenic region (31661640 - 31661759), and the other two predicted a protein kinase domain (12098980 - 12098667) as an original insertion site within a starter line used for massive production of Ds insertional mutant lines. Another predicted and inserted in first exon of liguleless 1 protein (OsLG1) that was mapped in coding region (LOC_Os04g56170) of chromosome 4. RT-PCR revealed that the OsLG1 gene was not expressed liguleless mutants. Structure analysis of OsLG1 protein revealed that it predicted transcription factor with a highly conserved SBP domain consisting of 79 amino acids that overlapped a nuclear localization signal (NLS). RT-PCR revealed that OsLG1 is mainly expressed in vegetative organs.
Analysis of phylogenetic relationship was performed among Phellinus species based on 18S ribosomal subunit sequence data. Twenty-five strains of 19 Phellinus species including P. linteus were examined in this study. Regions of 18S ribosomal subunit were very conserved, but some variable regions between Phellinus species were observed. The species-specific detection primers, modified by 2 or 3 nucleotides in sense primer were designed based on 18S ribosomal DNA(rDNA) sequence data. The 210 by PCR bands were detected with annealing temperature $48^{\circ}C$. The 18S 2F-18S 4R detection primer set distinguished P. linteus from various Phellinus species but some species like P. baumii, P. weirianius, P. rhabarberinus and P. pomaceus also had weak reactivity on this primer set. The 18S 3F-18S 4R primer set distinguished only P. linteus from various Phellinus species, although sensitivity with this primer set was lower than that of 18S 2F-18 4R primer set. These primer sets would be useful for the detection of only P. linteus among unknown Phellinus species rapidly.
Shin, Jun-Hye;Jeong, Dong-Hoon;Park, Min Chul;An, Gynheung
Molecules and Cells
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v.20
no.2
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pp.210-218
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2005
The rice genome contains at least 28 EXPA (${\alpha}$-expansin) genes. We have obtained near full-length cDNAs from the previously uncharacterized genes. Analysis of these newly identified clones together with the 12 identified earlier showed that the EXPA genes contain up to two introns and encode proteins of 240 to 291 amino acid residues. The EXPA proteins contain three conserved motifs: eight cysteine residues at the N-terminus, four tryptophan residues at the C-terminus, and a histidine-phenylalanine-aspartate motif in the central region. EXPA proteins could be divided into six groups based on their sequence similarity. Most were strongly induced in two-day-old seedlings and in the roots of one-week-old plants. However, only 14 genes were expressed in the aboveground organs, and their patterns were quite diverse. Transcript levels of EXPA7, 14, 15, 18, 21, and 29 were greater in stems, while EXPA2, 4, 5, 6, and 16 were highly expressed in both stem and sheath but not in leaf blade. EXPA1 is leaf blade-preferential, and EXP9 is leaf sheath-preferential. Most of the root-expressed genes were more strongly expressed in the dividing zone. However, the Group 2 EXPA genes were also strongly expressed in both mature and dividing zones, while EXPA9 was preferentially expressed in the elongation zone. Fourteen EXPA genes were expressed in developing panicles, with some being expressed during most developmental stages, others only as the panicles matured. These diverse expression patterns of EXPA genes suggest that in general they have distinct roles in plant growth and development.
Kim, Jun-Seob;Cho, Da-Hyeong;Park, Myeongseo;Chung, Woo-Jae;Shin, Dongwoo;Ko, Kwan Soo;Kweon, Dae-Hyuk
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.2
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pp.394-401
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2016
Recently, the clustered regularly interspaced short palindromic repeats (CRISPR)-associated protein 9 (CRISPR/Cas9) system, a genome editing technology, was shown to be versatile in treating several antibiotic-resistant bacteria. In the present study, we applied the CRISPR/Cas9 technology to kill extended-spectrum beta-lactamase (ESBL)-producing Escherichia coli. ESBL bacteria are mostly multidrug resistant (MDR), and have plasmid-mediated antibiotic resistance genes that can be easily transferred to other members of the bacterial community by horizontal gene transfer. To restore sensitivity to antibiotics in these bacteria, we searched for a CRISPR/Cas9 target sequence that was conserved among >1,000 ESBL mutants. There was only one target sequence for each TEM- and SHV-type ESBL, with each of these sequences found in ~200 ESBL strains of each type. Furthermore, we showed that these target sequences can be exploited to re-sensitize MDR cells in which resistance is mediated by genes that are not the target of the CRISPR/Cas9 system, but by genes that are present on the same plasmid as target genes. We believe our Re-Sensitization to Antibiotics from Resistance (ReSAFR) technology, which enhances the practical value of the CRISPR/Cas9 system, will be an effective method of treatment against plasmid-carrying MDR bacteria.
A cold-adapted carbohydrate esterase, CEST, belonging to the carbohydrate esterase family 6, was cloned from Microbulbifer thermotolerans DAU221. CEST was composed of 307 amino acids with the first 22 serving as a secretion signal peptide. The calculated molecular mass and isoelectric point of the mature enzyme were 31,244 Da and pH 5.89, respectively. The catalytic triad consisted of residues Ser37, Glu192, and His281 in the conserved regions: GQSNMXG, QGEX(D/N), and DXXH. The three-dimensional structure of CEST revealed that CEST belongs to the ${\alpha}/{\beta}$-class of protein consisted of a central six-stranded ${\beta}$-sheet flanked by eight ${\alpha}$-helices. The recombinant CEST was purified by His-tag affinity chromatography and the characterization showed its optimal temperature and pH were $15^{\circ}C$ and 8.0, respectively. Specifically, CEST maintained up to 70% of its enzyme activity when preincubated at $50^{\circ}C$ or $60^{\circ}C$ for 6 h, and 89% of its enzyme activity when preincubated at $70^{\circ}C$ for 1 h. The results suggest CEST belongs to group 3 of the cold-adapted enzymes. The enzyme activity was increased by $Na^+$ and $Mg^{2+}$ ions but was strongly inhibited by $Cu^+$ and $Hg^{2+}$ ions, at all ion concentrations. Using p-nitrophenyl acetate as a substrate, the enzyme had a $K_m$ of 0.278 mM and a $k_{cat}$ of $1.9s^{-1}$. Site-directed mutagenesis indicated that the catalytic triad (Ser37, Glu192, and His281) and Asp278 were essential for the enzyme activity.
Genetic determinants of two metallothionein isoforms (MT-A and MT-B) were isolated and characterized from the perciform species, rockbream (Oplegnathus fasciatus). Rockbream MT-A and MT-B shared a high degree of homology at amino acid levels with representative orthologs from other perciform species, especially with respect to the conserved cysteine residues. At the genomic level, both MT-A and MT-B genes represent a tripartite structure typical of vertebrate MT genes. However, rockbream MT-B showed unusually large introns (1.2 kb and 0.8 kb for intron I and II, respectively), a phenomenon that has rarely been seen in other vertebrate MT genes. MT-A and MT-B transcripts were ubiquitously detected in a wide array of tissues, wherein brain and eye showed the highest basal expression levels, and the fin exhibited the lowest expression of both isoforms. The basal expression of MT-A in most tissues was significantly higher (ranging from 4- to 10-fold) than that of MT-B. Upon heavy metal exposures to Cd, Cu or Zn at 25 ppb for 48 h, MT-A and MT-B transcripts in the liver were significantly activated by Cd and moderately by Zn. On the other hand, exposure to Cu did not result in alterations of MT-A, nor in the significant suppression of MT-B. Following bacterial challenges with Escherichia coli, Edwardsiella tarda or Streptococcus iniae, MT isoforms in the liver, kidney and spleen were highly modulated and exhibited a pattern that was dependent on the bacterial species, tissues and isoforms. These results suggest that the two MT isoforms could be taken into account as potential indicators of metal toxicity and immune perturbations of this aquaculture-relevant species.
Leaves are indeterminate organs and possess a lot of genes which is involved in establishing leaf polarities. These polarities are regulated relatively early during leaf development and defined relative to the factors intrinsic to the primordia and interactions with the shoot apical meristem (SAM). Recently, several genes that control the polarity of lateral organs have been identified. Our genetic study of deformed root and leaf1 (drl1) mutant, which produces narrow, filament‐like leaves and defective meristems, revealed that DRL1 is involved in the regulation of SAM activity and leaf polarity. The DRL1 gene was found to encode a novel protein showing homology to Elongator‐associate protein (EAP) of yeast KTI12. The amino acid sequence of DRL1 is universally conserved in prokaryotes and eukaryotes. DRL1 and the plant DRL1 homologs clearly formed a monophyletic clade, suggesting the evolutionary conservation of DRL1 homologs was maintained in the genomes of all land plants.
The bacterium Sphingomonas chungbukensis DJ77 produces the extracellular polysaccharide gellan in high yield. Gellan produced by this bacterium is widely used as a gelling agent, and the enzyme UDP-glucose pyrophosphorylase (UGP) is thought to play a key role in the gellan biosynthetic pathway. The UGP gene has been successfully cloned and over-expressed in E. coli. The expressed enzyme was purified with a molecular weight of approximately 32 kDa, as determined by a SDS-polyacrylamide gel, but the enzyme appears as ca. 63 kDa on a native gel, suggesting that the enzyme is present in a homodimer. Kinetic analysis of UDP-glucose for UGP indicates $K_m$ = 1.14 mM and $V_{max}$ = 10.09 mM/min/mg at pH 8.0, which was determined to be the optimal pH for UGP catalytic activity. Amino acid sequence alignment against other bacteria suggests that the UGP contains two conserved domains: An activator binding site and a glucose-1-phosphate binding site. Site-directed mutagenesis of Lys194, located within the glucose-1-phosphate binding site, indicates that substitution of the charge-reversible residue Asp for Lys194 dramatically impairs the UGP activity, supporting the hypothesis that Lys194 plays a critical role in the catalysis.
Protein homology detection is an important issue in comparative genomics. Because of the exponential growth of sequence databases, fast and efficient homology detection tools are urgently needed. Currently, for homology detection, sequence comparison methods using local alignment such as BLAST are generally used as they give a reasonable measure for sequence similarity. However, these methods have drawbacks in offering overall sequence similarity, especially in dealing with eukaryotic genomes that often contain many insertions and duplications on sequences. Also these methods do not provide the explicit models for speciation, thus it is difficult to interpret their similarity measure into homology detection. Here, we present a novel method based on Word Conservation Score (WCS) to address the current limitations of homology detection. Instead of counting each amino acid, we adopted the concept of 'Word' to compare sequences. WCS measures overall sequence similarity by comparing word contents, which is much faster than BLAST comparisons. Furthermore, evolutionary distance between homologous sequences could be measured by WCS. Therefore, we expect that sequence comparison with WCS is useful for the multiple-species-comparisons of large genomes. In the performance comparisons on protein structural classifications, our method showed a considerable improvement over BLAST. Our method found bigger micro-syntenic blocks which consist of orthologs with conserved gene order. By testing on various datasets, we showed that WCS gives faster and better overall similarity measure compared to BLAST.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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