The purpose of this study is to develop a badge-type passive sampler for the measurement of short-term nitrogen dioxide and to evaluate its performance. The principle of the method is a colorimetric reaction of nitrogen dioxide with sulfanilic acid, N-1-naphthylethylendiamine, and phosphoric acid. First, it has been shown that the filter paper should be rinsed with ultrapure water and ultrasound, and then dried in a vacuumed desiccator. The concentration and volume of absorption reagent (triethanolamine) were $20\%$ and 100 ${\mu}L$, respectively. The extraction time was determined as 60 min. Second, duplicate measurements (n= 116) were carried out for evaluating the precision of the passive sampler. The relative error and the correlation coefficient between duplicates are $3.4\pm 3.0\%$ and 0.994, respectively. In addition, the $95\%$ confidence interval of intraclass correlation coefficient and the estimated value are 0.992$\sim$0.996 and 0.994, respectively. Third, a paired t-test was carried out for evaluating the accuracy of the passive sampler (n=40). In the result of the test, the $95\%$ confidence interval of the difference was -1.710 ppb <$\gamma$< 0.788 ppb. Finally, the average concentration of blanks, measurement detection limit, limit of detection, and limit of quantification are $2.4\pm 0.4$ ppb, 104 ppb, 3.8 ppb, and 7.0 ppb, respectively.
본 연구에서는, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA)와 면역크로마토그래픽 기법을 결합하여 Staphylococcus aureus 검출을 위한 면역스트립을 제작하였다. 면역스트립은 4개의 서로 다른 기능을 가진 멤브레인을 이용하여 만들어졌다. 니트로셀룰로오스 멤브레인은 항체와의 결합력이 높기 때문에, 포획항체를 고정화하였고, 다공성 멤브레인들을 통하여 모세관 현상으로 인해 시료흐름을 유도하였다. 효소반응에 의해 생성된 발색신호는 디지털카메라와 자체 제작된 소프트웨어를 이용하여 정성, 정량분석 하였다. 최적의 분석조건 하에서 30 min 이내에 $2.7{\times}10^4{\sim}2.7{\times}10^7CFU/mL$ 범위의 S. aureus 농도를 측정할 수 있었다.
The increasing number of analytes in concern and the alarming health and environmental consequences have required effective means of monitoring for safety control. Biosensors offer advantages as alternatives to conventional analytical methods because of their inherent specificity, simplicity, and quick response. Colorimetric biosensor, one of biosensor group, is one of the easiest and the most convenient methods because detection can be done using naked eye. Recently, a novel method for rapid detection and read-out of specific immunoassays with naked eye using polydiacetylene (PDA) was developed. Polydiacetylene has recently been in the limelight as a transducing materials because of its special features that allow optical transduction of sensory signals and inherent simplicity and ease of use in supramolecular chemistry. Various forms of PDA are used as a sensor platform for detection of various biological analytes such as viruses, DNA, proteins, bacteria and hazardous molecules.
Rhodamine B Hydrazide as a novel fluorescent and colorimetric probe exhibiting remarkably selective fluorescence enhancement toward Hg2+ ion over other 16 metal ions is herein introduced. The probe reacts with Hg2+ ion followed by its spirolactam ring-opening to give a remarkable enhancement of absorption maximum at 550 nm as well as an enhanced fluorescence intensity at 580 nm in aqueous media. Upon titration with Hg2+ ion in various concentration of 10~200 uM, we found that the probe shows a marked color change from colorless to pink, enabling naked-eye detection toward mercury ion. In addition, in the presence of Hg2+ ion, the probe gave rise to change from non-florescence to strong orange fluorescence (Off-On) with a good linearity of R2=0.97. This preliminary results demonstrate that the fluorescent chemosensor we herein introduced can open a new strategy for marked selective and sensitive detection of mercury ions in contaminated soil containing various metal ions.
Salmonella, a major contributor to foodborne infections, typically causes self-limiting gastroenteritis. However, it is frequently invasive and disseminates across the intestinal epithelium, leading to deadly bacteremia. Although the genus is subdivided into >2,600 serotypes based on their antigenic determinants, only few serotypes are responsible for most human infections. In this study, a rapid dot-blot immunoassay was developed to diagnose multiple Salmonella enterica serotypes with high incidence rates in humans. The feasibility of 10 commercial antibodies (four polyclonal and six monoclonal antibodies) was tested using the 18 serotypes associated with 67.5% Salmonella infection cases in the United States of America (U.S.A) in 2016. Ab 3 (polyclonal; eight of 18 serotypes), Ab 8 (monoclonal; 13 of 18 serotypes), and Ab 9 (monoclonal; 10 of 18 serotypes) antibodies exhibited high detection rates in western blotting and combinations of two antibodies (Ab 3+8, Ab 3+9, and Ab 8+9) were applied to dot-blot assays. The combination of Ab 3+8 identified 15 of the tested 18 serotypes in 3 h, i.e., S. Enteritidis, S. Typhimurium, S. Javiana, S. I 4,[5],12:i:-, S. Infantis, S. Montevideo, S. Braenderup, S. Thompson, S. Saintpaul, S. Heidelberg, S. Oranienburg, S. Bareilly, S. Berta, S. Agona, and S. Anatum, which were responsible for 53.7% Salmonella infections in the U.S. in 2016. This cost-effective and rapid method can be utilized as an on-site colorimetric method for Salmonella detection.
Park, Ji-Hoon;Kim, Hye-Ryung;Chae, Ha-Kyung;Park, Jonghyun;Jeon, Bo-Young;Lyoo, Young S.;Park, Choi-Kyu
한국동물위생학회지
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제45권1호
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pp.19-30
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2022
In this study, a simple loop-mediated isothermal amplification (LAMP) combined with visual detection method (vLAMP) assay was developed for the rapid and specific detection of African swine fever virus (ASFV), overcoming the shortcomings of previously described LAMP assays that require additional detection steps or pose a cross-contamination risk. The assay results can be directly detected by the naked eye using hydroxynaphthol blue after incubation for 40 min at 62℃. The assay specifically amplified ASFV DNA and no other viral nucleic acids. The limit of detection of the assay was <50 DNA copies/reaction, which was ten times more sensitive than conventional polymerase chain reaction (cPCR) and comparable to real-time PCR (qPCR). For clinical evaluation, the ASFV detection rate of vLAMP was higher than cPCR and comparable to OIE-recommended qPCR, showing 100% concordance, with a κ value (95% confidence interval) of 1 (1.00~1.00). Considering the advantages of high sensitivity and specificity, no possibility for cross-contamination, and being able to be used as low-cost equipment, the developed vLAMP assay will be a valuable tool for detecting ASFV from clinical samples, even in resource-limited laboratories.
Bovine viral diarrhea (BVD) is a single-stranded, positive-sense ribonucleic acid (RNA) virus belonging to the genus Pestivirus of the Flaviviridae family. BVD frequently causes economic losses to farmers. Among bovine viral diarrhea virus (BVDV) strains, BVDV-1b is predominant and widespread in Hanwoo calves. Reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) is an essential method for diagnosing BVDV-1b and has become the gold standard for diagnosis in the Republic of Korea. However, this diagnostic method is time-consuming and requires expensive equipment. Therefore, Clustered regularly interspaced short palindromic repeats-Cas (CRISPR-Cas) systems have been used for point-of-care (POC) testing of viruses. Developing a sensitive and specific method for POC testing of BVDV-1b would be advantageous for controlling the spread of infection. Thus, this study aimed to develop a novel nucleic acid detection method using the CRISPR-Cas13 system for POC testing of BVDV-1b. The sequence of the BVD virus was extracted from National Center for Biotechnology Information (NC_001461.1), and the 5' untranslated region, commonly used for detection, was selected. CRISPR RNA (crRNA) was designed using the Cas13 design program and optimized for the expression and purification of the LwCas13a protein. Madin Darby bovine kidney (MDBK) cells were infected with BVDV-1b, incubated, and the viral RNA was extracted. To enable POC viral detection, the compatibility of the CRISPR-Cas13 system was verified with a paper-based strip through collateral cleavage activity. Finally, a colorimetric assay was used to evaluate the detection of BVDV-1b by combining the previously obtained crRNA and Cas13a protein on a paper strip. In conclusion, the CRISPR-Cas13 system is highly sensitive, specific, and capable of nucleic acid detection, making it an optimal system for the early point-of-care testing of BVDV-1b.
Porphyromonas gingivalis (P. gingivalis) is a major bacterial pathogen that causes periodontitis, a chronic inflammatory disease of tissues around the teeth. Periodontitis is known to be related to other diseases, such as oral cancer, Alzheimer's disease, and rheumatism. Thus, a precise and sensitive test to detect P. gingivalis is necessary for the early diagnosis of periodontitis. The objective of this study was to optimize a rapid visual detection system for P. gingivalis. First, we performed a visual membrane immunoassay using 3,3',5,5'-tetramethylbenzidine (TMB; blue) and coating and detection antibodies that could bind to the host laboratory strain, ATCC 33277. Antibodies against the P. gingivalis surface adhesion molecules RgpB (arginine proteinase) and Kgp (lysine proteinase) were determined to be the most specific coating and detection antibodies, respectively. Using these two selected antibodies, the streptavidin-horseradish peroxidase (HRP) reaction was performed using a nitrocellulose membrane and visualized with a detection range of 103-105 bacterial cells/ml following incubation for 15 min. These selected conditions were applied to test other oral bacteria, and the results showed that P. gingivalis could be detected without cross-reactivity to other bacteria, including Streptococcus mutans and Escherichia fergusonii. Furthermore, three clinical strains of P. gingivalis, KCOM 2880, KCOM 2803, and KCOM 3190, were also recognized using this optimized enzyme immunoassay (EIA) system. To conclude, we established optimized conditions for P. gingivalis detection with specificity, accuracy, and sensitivity. These results could be utilized to manufacture economical and rapid detection kits for P. gingivalis.
본 연구에서는 인플루엔자 바이러스 표면에 존재하는 neuraminidase 효소의 활성을 평가 할 수있는 종이칩 기반의 분석 시스템을 구축하였다. 종이칩의 장점을 살려 분석 전문가와 장비 없이 현장 진단(Point-of-care)이 가능하도록 X-Neu5Ac 기질을 이용한 비색분석법을 통해 시료 내 neuraminidase 효소의 존재를 정량적으로 확인 할 수 있도록 설계 및 제작하였다. Neuraminidase 효소의 활성을 확인할 수 있는 종이칩 센서(Paper-based neuraminidase assay sensor; PNAS) 성능 실험 결과 neuraminidase를 0.004 U/mL 농도부터 검출 가능하였으며, 인간 혈청에 각기 다른 농도로 존재하는 neuraminidase 효소의 양을 활성 평가를 통해 정량적으로 검출할 수 있음을 입증하였다($R^2$ > 0.99). 또한, 보관기간에 따른 종이칩의 안정성 평가 결과 빛이 차단 된 $4^{\circ}C$ 환경에서 보관 시 70일까지 초기 성능이 안정하게 유지됨을 확인하였다. 마지막으로, PNAS 상에서 효소 반응의 신뢰성 평가를 위해 미카엘리스-멘텐 동역학 (Michaelis-Menten kinetics)을 적용하여 X-Neu5Ac 기질에 대한 neuraminidase의 동역학 분석 결과 $K_m$ 값은 $8.327{\times}10^{-3}M$으로 확인되었으며, 이 값은 용액상에서의 효소 반응 속도 계산으로부터 산출된 값과($K_m=8.327{\times}10^{-3}M$) 근사한 수치임을 확인하였다. 본 연구로부터 개발된 종이칩 기반의 neuraminidase 효소 활성 평가 시스템은 인플루엔자 바이러스의 신속하고 안전한 검출에 다양하게 응용 될 수 있을 것으로 생각된다.
Kim, Sam-Hwan;Choi, Ju-Chan;Lee, June-Kyoo;Kong, Seong-Ho
센서학회지
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제20권6호
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pp.368-374
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2011
A microfluidic device for real-time monitoring of residual free chlorine and pH in water based on optical absorption is proposed. The device consists of a serpentine micromixer for mixing samples with a reagent, and a photodiode and light emitting diode(LED) for the detection of light absorbance at specific wavelengths, determined for specific reagent combinations. Spectral analyses of the samples mixed with N, N'-diethyl-p-phenylenediamine(DPD) reagent for chlorine determination and bromothymol blue(BTB) for pH measurement are performed, and the wavelengths providing the most useful linear changes in absorbance with chlorine concentration and pH are determined and used to select the combination of LED and photodiode wavelengths for each analyte. In tests using standard solutions, the device is shown to give highly reproducible results, demonstrating the feasibility of the device for the inexpensive and continuous monitoring of water quality parameters with very low reagent consumption.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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