The monoclonal antibody to chloramphenicol(CAP) was produced to develop an enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) for residual CAP. An immunogen(CAP-BSA) was prepared by immunogen, antibody titer was measured by indirect ELISA. Spleen cells form the immunized mouse were fused with SP2/OAg14 myeloma cells. Among hybridomas selected in HAT media, 6 clones shown high antibody titer to CAP were subjected to cloning by limit dilution, and all of the monoclonal antibodies(MCA1, 2, 3, 4, 5, 7 and 9) produced by each clone were identified as IgG1 by ELISA isotyping analysis. Competitive ELISA condition was established by using the purified monoclonal antibody MCA1 as primary antibody and CAP-HSA conjugate as coating antigen. Standard curve of CAP(n=28) showed that the lowest detection limit of CAP is 20ng/ml level. The cross-reactivities of the 6 monoclonal antibodies showed that CAP sodium succinate. CAP base, P-nitrophenol, and p-nitrobenzyl alcohol were 89∼178, 0.050∼2.237, 0.056∼0.794 and 0.013∼7.939%, respectively. No cross-reactivities were observed with phenylalanine, tyrosine, glutamine, thiamphenicol, neomycin, streptomycin, gentamicin, sulfamethazine, sulfathiazole, chlortetracycline and p-aminobenzoic acid.
Hot water soluble extract was prepared from Hericium erinaceus and its neuritogenic activity on PC12h cells was analyzed, which is a clone originating from a rat pheochromocytomon. The moisture content of freeze dried hot water extract was 12.08%. The extract was mainly composed of carbohydrate (51.24%) followed by crude protein (24.04%), crude fat (0.26%), dietary fiber (5.09), and ash (12.18%). Fatty acids, glucan and inorganic constituents were found as minor components. The neuritogenic activity of hot water extract was evaluated under microscopic observation of neurite outgrowth in PC12h cells and by measuring the neurite length of induvidual cell. The extract exhibited strong effect of neurite outgrowth in a dose-dependent manner from 0.01 mg/mL to 1 mg/mL, in which longer neurite outgrowth was observed as the treatment dose increased.
We have cloned an LTP gene (PoLTP1) from poplar (Populus alba ${\times}$ P. tremula var. glandulosa) suspension cells and examined changes in its expression levels in response to various stresses and ABA treatment. The full-length PoLTP1 cDNA clone encodes a polypeptide of 116 amino acids with typical characteristics of LTPs, notably a conserved arrangement of cysteine residues. Southern blot analysis indicate that two or three copies of the PoLTP1 are present in the genome of the investigated hybrid poplar. In addition, northern analysis of samples from soil-grown plants indicate that PoLTP1 is tissue-specifically expressed in the leaves and flowers. The gene is significantly up-regulated by treatment with mannitol, NaCl and ABA, but not by either cold or wounding. These results indicate that PoLTP1 is involved in osmotic stress responses in poplar plants and suspension cells.
For the molecular genetic study of cold tolerance mechanism in plants, a cDNA encoding fatty acid desaturase (fad3), converting linoleic acid (18:2, $\omega$-6) to linolenic acid (18:3, $\omega$-3), was isolated from $\lambda$ZAPII Arabidopsis thaliana cDNA expression library by plaque hybridization using fad3 cDNA probe derived from Brassica napus. A 1.8 kb-EcoRI fragment from a lambda clone showing a strong positive hybridization signal was subcloned into pGEM7 and analyzed for its nucleotide sequence. From deduced amino acid sequences, the fad3 gene was revealed to have an open reading frame(ORF) consisting of 386 amino acids with a molecular mass of 44,075 Da. The fad3 gene was compared to chloroplast $\omega$-3 fatty acid desaturase (fad7) and endoplasmic reticulum Δ12 fatty acid desaturase (fad2) to show 70% and 58% amino acid sequence homology, respectively, Especially, amino acids of internal (82 to 151) and carboxy terminal (276 to 333) regions were highly conserved, implying their requisite role for enzymatic functioning of fatty acid desaturases. IPTG-induced fad3 cDNA expression in E. coli cells was suggested to be toxic to bacterial growth.
Employing the approach to isolate the genes expressed preferentially in cytolytic T cell (CTL) but not in other types of cell, 3 CTL-specific cDNAs were recently cloned. To characterize these cDNA clones in relation to CTL activation, their expression pattern after T cell antigen receptor (TCR) or interleukin 2 (IL-2) stimulation were investigated by RNA blot analysis of cloned CTL L3 cells. Transcripts level of two cDNA clones were markedly elevated by TCR stimulation but not by IL-2. In addition, transcripts expression of both clones were abrogated by cyclosporin A treatment. These results indicated that gene activation mediated by TCR is distinct from that mediated by IL-2 and imply that those two unidentified cDNA clones are related to TCR-mediated, IL-2-independent but cyclosporin A-sensitive pathway for CTL activation.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.24
no.2
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pp.49-55
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2012
We previously isolated 9 clones that show stronger signal compared to B. mori cytoplasmic actin gene (BmA3) by using a dot blot hybridization. In this study, we focused on one clone among these clones which has high amino acid homology with elongation factor ${\alpha}$ gene of B. mori. This clone, named $bEF1{\alpha}$ (B. mori elongation factor ${\alpha}$) was ubiquitously expressed in all tissues and developmental stage of B. mori. As result of promoter assay using dual luciferase assay system, we found the highest transcription activity region (-702/+38) in the 5'-flanking region of $bEF1{\alpha}$ gene, which has about 20 fold more intensive promoter activity than BmA3 promoter. Moreover, the $bEF1{\alpha}$ promoter was normally regulated in Bm5, Sf9, and S2 cells. Therefore, we suggest that $bEF1{\alpha}$ promoter may be used more powerful and effectively for transgene expression in various insects containing B. mori as a universal promoter.
The gene coding for $\beta$-galactosidase of Neisseria lactamica 2118 was cloned into Escherichia coli MC 1061. The isolated 6.5 Kb EcoR I fragement and 7.2 Kb BamH I fragment of chromosomal DNA in Southern hybridization were ligated to a vector plasmid pBR322 and then transformed into Escherichia coli MC 1061 cells. Finally, I obtained three clones as $\beta$-galactosidase positive clone by colony hybridization and Southern hybridization($\beta$-galactosidase probe: lac Z gene of pMC1871). Three recombinant plasmids(pNL.13. 17 and 24) were found to contain the 7.2Kb BamH I fragment originated from Neisseria lactamica 2118 chromosomal DNA by Southern hybridization and pNL 24 was showed high homology to probe especially and also its physical map was constructed.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.20
no.2
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pp.107-114
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2010
For stable germline transformation, the promoter of Bombyx mori cytoplasmic actin gene (BmA3) has been used for ubiquitous expression of transgenes. So far, no strong promoter is available for ubiquitous expression in B. mori, excluding BmA3 promoter. To identify more powerful promoter than previously reported BmA3 promoter, we isolated 9 clones that show stronger signal compared to BmA3 by a dot blot hybridization. Among these 9 clones, we focused on one clone which has high amino acid homology (85%) with hypothetical protein 32 gene of Lonomia obliqua. This clone, named bHp32 (B. mori hypothetical protein 32) was ubiquitously expressed in all tissues and developmental stage of fifth instar B. mori larvae. As result of promoter assay using dual luciferase assay system, we found the highest transcription activity region (-1,200/+220) in the 5'-flanking region of bHp32 gene, which has 42-fold more intensive promoter activity than BmA3 promoter. Moreover, the bHp32 promoter was normally regulated in Bm5, Sf9, and S2 cells. Therefore, we suggest that bHp32 promoter may be used more powerful and effectively for transgene expression in various insects containing B. mori as a universal promoter.
To elucidate the mechanism of action of HOXA11-AS in modulating the cisplatin resistance of nasopharyngeal carcinoma (NPC) cells. HOXA11-AS and miR-454-3p expression in NPC tissue and cisplatin-resistant NPC cells were measured via quantitative reverse transcriptase polymerase chain reaction. NPC parental cells (C666-1 and HNE1) and cisplatin-resistant cells (C666-1/DDP and HNE1/DDP) were transfected and divided into different groups, after which the MTT method was used to determine the inhibitory concentration 50 (IC50) of cells treated with different concentrations of cisplatin. Additionally, a clone formation assay, flow cytometry and Western blotting were used to detect DDP-induced changes. Thereafter, xenograft mouse models were constructed to verify the in vitro results. Obviously elevated HOXA11-AS and reduced miR-454-3p were found in NPC tissue and cisplatin-resistant NPC cells. Compared to the control cells, cells in the si-HOXA11-AS group showed sharp decreases in cell viability and IC50, and these results were reversed in the miR-454-3p inhibitor group. Furthermore, HOXA11-AS targeted miR-454-3p, which further targeted c-Met. In comparison with cells in the control group, HNE1/DDP and C666-1/DDP cells in the si-HOXA11-AS group demonstrated fewer colonies, with an increase in the apoptotic rate, while the expression levels of c-Met, p-Akt/Akt and p-mTOR/mTOR decreased. Moreover, the si-HOXA11-AS-induced enhancement in sensitivity to cisplatin was abolished by miR-454-3p inhibitor transfection. The in vivo experiment showed that DDP in combination with si-HOXA11-AS treatment could inhibit the growth of xenograft tumors. Silencing HOXA11-AS can inhibit the c-Met/AKT/mTOR pathway by specifically upregulating miR-454-3p, thus promoting cell apoptosis and enhancing the sensitivity of cisplatin-resistant NPC cells to cisplatin.
Park, Min-Seon;Kim, Hong-Tae;Min, Byung-Re;Kimm, Ku-Chan;Nam, Myeong-Jin
BMB Reports
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v.33
no.2
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pp.184-187
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2000
Prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) plays an important role in the regulation of various gastric functions, and the growth-inhibitory activities on tumor cells are studied in vitro and in vivo. Although the mechanisms have attracted many researchers in the past decade, the molecular mechanisms of cell cycle arrest, or induction of apoptosis by $PGE_2$, is unclear. We investigated the effects of $PGE_2$ on the growth of the human gastric carcinoma cell line SNU1 and genes that are regulated by $PGE_2$ and isolated them using differential display RT-PCR (DD RT-PCR). FACS analysis suggested that SNU1 cells were arrested at the G1 phase by $PGE_2$ treatment. This growth inhibitory effect was in a time- and dose-dependent manner. Treatment of SNU1 cells with $10\;{\mu}g/ml$$PGE_2$, followed by DD RT-PCR analysis, revealed differently expressed bands patterns from the control. Among the differently expressed clones, we found an unidentified cDNA clone (HGP-27) overexpressed in $PGE_2$-treated cells. The full-length cDNA of HGP-27 was isolated using RACE, which consisted of a 30-nt 5'-noncoding region, a 891-nt ORF encoding the 296 amino acid protein, and a 738-nt 3'-noncoding region including a poly(a) signal. This gene was localized on the short arm of chromosome number 11. Using the Motif Finder program, a myb-DNA binding repeat signature was detected on the ORF region. The COOH-terminal half was shown to have similarity with the $NH_3$-terminal domain of thioredoxin (Trx). This relation between HGP-27 and Trx implied a potential role for HGP-27 in modulating the DNA binding function of a transcription factor, myb.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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