Bowman-Birk type protease inhibitors of soybeans were purified with gel filtration on Sephadex G-75. Significant differences were found in the content and in the electrophoretic patterns of the purified protease inhibitors. Ten among fourteen electrophoretic bands appeared as protease inhibitors. The chymotrypsin and trypsin inhibiting activities in soybeans showed three and four fold variation respectively. And the cultivars with higher chymotrypsin inhibiting activities seemed to have higher cysteine contents.
Eight(I through VII) of Bowman-Birk proteinase inhibitor have been isolated from soybean with DEAE-Sephadex A-50. Inhibitor VII was a typical BBTI, showing high cysteine content(17%/mole) ud low trypsin to chymotrypsin inhibiting activity(TIA/CIA= 1.0) with the independent reactive site to each enzyme. Dissociation constant of trypsin-BBTI and chymotrypsin-BBTl complexes were $9.17{\times}10^{-9}M$ and $5.14{\times}10^{-8}M$, respectively. Inhibitor Vll was extremely heat stable. Six hours heat treatment at $100^{\circ}C$ caused only 50% decrease in it's original inhibiting activity. Except inhibitor III,6 other isoinhibitors differed from a typical BBTI in TIA/CIA, values, ranging from 3 to 29.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.25
no.1
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pp.115-121
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2012
The bumblebee Bombus terrestris is widely used in greenhouses to pollinate crops. Here, we report the molecular cloning and characterization of chymotrypsin inhibitor and chitin-binding protein homologs from B. terrestris. Two cDNAs encoding chymotrypsin inhibitor (Bt-CI) and chitin-binding protein (Bt-CBP) homologs were cloned from B. terrestris. Gene sequence analysis showed that Bt-CI gene consists of three exons encoding 75 amino acids, including a predicted 20-amino acid signal peptide, while Bt-CBP consists of two exons encoding 78 amino acids, including a predicted 26-amino acid signal peptide. The mature Bt-CI and Bt-CBP peptides contain ten and six conserved cysteine residues, respectively. Database searches using the deduced sequences of Bt-CI and Bt-CBP showed similarity to those from B. impatiens (96% peptide sequence identities). Bt-CI and Bt-CBP were expressed in both the venom gland and fat body of B. terrestris worker bees. The recombinant Bt-CI and Bt-CBP peptides were expressed in baculovirus-infected insect cells. Taken together, our findings describe the molecular characterization of Bt-CI and Bt-CBP from B. terrestris.
The objectives of the current studies were to establish the optimal conditions for the production of extracellular protease inhibitor in a strain of Streptomyces fradiae. As results, it was found that cell specific growth rate was very critical for the production of protease inhibitor and the optimum specific growth rate was found to be 0.05 h$^{-1}$ . Dissolved oxygen tension and pH were also important to regulate the inhibitor production. The inhibitory mode of the purified inhibitor to .alpha.-chymotrypsin was found to be competitive (K$_{i}$=5.5*10$^{-7}$ M). One mole of inhibitor could bind two moles of .alpha.-chymotrypsin and the complex has very low dissociation constant.t.
Kim, Sung-Ran;Shon, Dong-Hwa;Kim, Su-Il;Hong, Hee-Do
Applied Biological Chemistry
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v.42
no.4
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pp.310-316
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1999
BBPI contents in domestic soybean and soybean products were investigated by the measurement of chymotrypsin inhibiting activity(C.I.A) and competitive ELISA method. In order to produce polyclonal antibody, BBPI was purified from soybean trypsin-chymotrypsin inhibitor by ion exchange chromatography and electrophoretic gel slicing. Rabbit anti-BBPI polyclonal antibody was produced with the purified BBPI as immunogen. This antibody showed relatively specific binding to BBPI and then used for the establishment of competitive ELISA method to measure BBPI contents in extracts of soybean and soybean products. The standard curve for the measurement of BBPI in soybean extracts was drawn up within the range 0.03 to $30\;{\mu}g/ml$ of BBPI. The C.I.A. and BBPI contents of 12 soybean cultivars were $8,462{\sim}12,428\;U/g$ and $482{\sim}692\;mg%$, respectively. The C.I.A. and BBPI contents were not detected in most of soybean products except soybean sprouts, which contained $10,695{\sim}13,249\;U/g$ of C.I.A. and $529{\sim}803\;mg%$ of BBPI.
The potato proteinase inhibitor II (PI-II) protein contains chymotrypsin and trypsin inhibitory site. Among several PI-II genes isolated from genomic library, amino acid sequence deduced from PI-IIT gene has 84% identity with that of the polypeptide chymotrypsin inhibitor (PCI). Therefore a gene fragment having homology with the PCI was cloned into a vector using polymerase chain reaction(PCR) from the potato proteinase inhibitor IIT gene. Two different primers were utilized for cloning; primer A contains NdeI restriction site and 30 nucleotides, which has AUG N-terminal methionine codon, primer B contains BclI restriction site and 28 nucleotides, which has TAG translation stop codon. After PCR, about 160 bp-long DNA fragment was cloned into pRT146, derivative of pUC118, and sequenced. The sequenced NdeI/BclI fragment was moved to pET3a, containing bacteriophage T7 promoter and terminator. The expressed proteins in E. coli BL2l(DE3) were determined on a polyacrylamide gel containing sodium dodecyl sulfate. The expected size of protein deduced from the sequenced gene fragment is about 6,500 dalton whose size was similar to the IPTG-induced protein (6,000 dalton) on a gel. However the expression level was much lower than expected.
An elastase inhibitor, SMFEI02, was isolated from culture broth of Streptomyces lavendulae SMF11. The inhibitor was purified by ultrafiltration followed by XAD-7 column and Dowex-1 anion-exchange chromatographies, and preparative HPLC. The molecular formula was determined to be $C_{14}H_{16}N_2O_2$ (MW244) by HRFAB-MS analysis. The inhibitor was identified to be a diketopiperazine cyclo(S-Phe-S-Pro) by the optical rotation value and MNR spectral data, and showed inhibitory activities for trypsin, chymotrypsin, cathepsin B, and papain as well as elastase with the Ki values ranging from 1.78mM to $2.86{\;}\mu\textrm{m}$. The inhibition showed a competitive mode for elastase, chymotrypsin, and cathepsin B, whereas it showed a noncompetitive mode for trypsin and papain.
Background : Eosinophilic leukocytes are prominent cellular participants in the pathogenesis of allergic disease and asthma. Chemotaxis is still a very useful method in evaluating the response of human eosinophil to novel modulators. Degranulated mast cells and activated T lymphocytes are responsible for the pathophysiology of asthma and tryptase is one of most important proteases released after activation of mast cells. The purpose of this study was to investigate the actions of trypsin and chymotrypsin on eosinophils in terms of chemotaxis and activation. Method : Eosinophils were isolated by negative immunoselection from the peripheral blood of atopic donors. Chemotaxis was studied by using micro-Boyden chambers and ECP release was assayed by fluoroimmunoassay. Results : Eosinophil showed a chemotactic response to trypsin. Maximal chemotactic response was with $1000{\mu}g/ml$ trypsin ($56.52{\pm}14.50$/HPF) which was comparable to PAP. But chymotrypsin showed no significant chemotactic response to eosinophils. Trypsin at the concentration of 10, 100, $1000{\mu}g/ml$ induced secretion of ECP, which at the concentration of $10{\mu}g/ml$ represented about 2.7 times of the spontaneous rate of release. Soybean protease inhibitor reduced trypsin induced ECP release. Conclusion : Trypsin can induce chemotactic response to eosinophils and activation of eosinophils that can induce secretion of ECP. On the contrary, chymotrypsin showed no direct effect on eosinophils. We propose a role of trypsin on the chemotaxis and activation of eosinophils.
Protease inhibitor of 72.6 kDa was successively purified from chum salmon (Oncorhynchus keta) eggs by ion exchange, gel permeation, and affinity chromatographies. Protease inhibitor was purified with yield and purification fold of 1.50% and 58.11, respectively. SDS-PAGE results showed purified protease inhibitor consisted of two protein subunits of 54.0 and 18.6 kDa. Chum salmon inhibitor exhibited stability between 20 and $40^{\circ}C$ in weak acid environment (PH 6), and inhibited papain and cathepsin, members of cysteine protease, but not chymotrypsin. The protein inhibited cathepsin more effectively than did egg white protease inhibitor, whereas the reverse was true for papain. These results indicate chum salmon egg inhibitor is heterodimer, thus the inhibitor was classified as cysteine protease inhibitor.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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