많은 세포와 조직에서 분화 조절물질로 알려져 있는 비타민 A의 대사산물인 rectinoic acid(RA)가 배양 계배 근원세포의 성장과 분화에 미치는 영향을 조사하였다. RA가 처리된 세포는 그 농도가 증가함에 따라 융합 억제 효과도 증가함을 보였고, 배양액으로부터 RA를 제거해 주면 근원세포의 융합이 재개되는 것으로 보아, RA는 근원세포의 융합을 가역적으로 억제함을 알 수 있었다. 그러나 이미 최종 분화 단계에 들어선 세포에서는 융합 억제 효과를 보이지 않아, RA의 효과는 분화 단계에 따라 특이적으로 작용함을 보여준다. 융합 억제 효과에도 불구하고, RA는 근원세포의 융합 전단계인 방추형으로 신장하는 것과 그들이 가상의 축을 따라 배열하는 데는 영향을 주지 않았다. 또한 세포의 증식과 creatine kimase, tropomyosin과 같은 근특이 단백질의 축적에도 큰 영향을 주지 않았다. 한편, 근원세포는 융합하기 전에 필수적으로 fibronectin의 감소를 억제함을 알 수 있었다. 이상의 결과로 RA는 배양 근원세포의 융합만을 특이하게 억제하는 물질이며, 그 작용은 fibronectin의 감소를 방해하는 것과 밀접한 관계가 있는 것으로 사료된다.
In the present study, the localization of myosin and the pathway of myofibrilogenesis of skeletal muscle cells in culture were investigated by immunocytochemical methods including immunoelectron microscopy and hybridoma formation. There were manly free ribosomes in the cytosol of the myoblast. At 48 hr of the culture, the myofilaments started to form and at 72 hr began to assemble to form myoabrils. At this time the Z band appeared, but the sarcomeres did not link together. Aker 96 hr of culture, adjacent sarcomeres linked together and shotved the typical striation of the skeletal muscle fiber. Myosin was synthesized in free ribosomes at 24 hr of culture and localized at many myofilaments at 48 hr and assembled mvoabrils at 72 hr and at 120 hr of the culture, myosin was localized at thick filaments of the A band.
배양한 계배 근원세포의 융합기작을 밝혀보기 위해서 분화과정에 있는 근세포를 lactoperoxidase를 촉매로 써서 막표면단백질을 iodination하여 본 결과, 융합의 과정에서 막표면단백질의 정성적 및 정량적 변화를 볼 수 있었다. 융합전의 세포에서 12개의 주요단백질을 검출할 수 있었는데, 융합시의 세포에서는 165K와 93K의 단백질이 새롭게 나타났으며 동시에 245K 단백질의 감소와 저분자 단백질의 증가를 볼 수 있었다. 이 고분자 단백질의 감소는 세포주기와 관계가 있는 것으로 생각되고 있는 세포내 cAMP 수준은 융합에 앞서서 현저한 일시적인 증가를 보였는데, 이와같은 결과는 cAMP의 증가가 세포의 융합의 유발과 관계가 있음을 보여 주는 것이었으며, 분화하는 근원세포에서는 고도의 동조성이 보였다. 아울러, 근세포의 융합과정에서 적어도 4 가지의 iodination된 저분자 단백질을 배양액에서 발견할 수 있었는데, 이들은 막단백질의 가수분해산물로 생각되었고, 역시 세포의 융합과정과 유관할 것으로 추정되었다. 세포막 표면단백질의 변화, 분화과정 중에 배양액 속으로 방출되는 단백질, 융합과 유관한 cAMP의 증가 및 융합과 관련되는 외적 요인의 가능성에 관해서 논의하였다.
배양 계배 근세포의 분호과정에서 fibronectin양의 변화를 immunoblotting법을 써서 정량해 본 결과 근세포의 분화에 따라 감소함을 알 수 있었다. 이처럼 근분화과정에서 fibronectin의 수준이 변하는 이유를 알아보기 위해서 fibronectin의 28,000 dalton(28 kDa)의 amino terminal fragment와 85,000 dalton (85kDa)의 cell binding fragment의 근원세포와의 상호작용에 관해 조사하여 보았다. 125 l-28 kDa fragment가 근원세포와 특이하게 결합하는 양상은 시간 경과에 따라 변하여 60분이내에 최대 수준에 도달하였다. 아울러 28 kDa fragment는 125 I-28 kDa fragment의 결합을 억제하였으나, 85 kDa fragment의 결합은 억제하지 않았다. 이러한 사실은 28 kDa fragment fibronectin수용체와 결합하고 cell adhesion수용체와는 결합하지 않음을 암시하는 것이다. 따라서 fibronectin수준의 감소는 근원세포에 존재하는 fibronectin수용체의 감소와 연관되는 현상으로 추정할 수 있었다.
Park, Sang-Dai;Lee, Suck-Hwe;Choe, Soo-Young;Ha, Doo-Bong
한국동물학회지
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제25권2호
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pp.55-62
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1982
발생 12일째의 계배근세포를 약 7일간 배양하면서 자외선에 의한 절제회복, 광재활성 및 DNA 복제억제율을 조사하여 다음과 같은 결과를 얻었다. 자외선에 의한 절제회복은 계배근세포의 분화정도가 진행됨에 따라 감소하였으며, 이는 특히 자외선의 선량이 높을수록 뚜렷하였다. DNA 합성율은 분화가 진행된 세포일수록 현저히 감소하는 경향이었으며 각 분화단계에 따른 DNA 복제억제 현상은 배양 초기 세포인 경우 자외선 조사후 30분에서 1시간반 사이에서 가장 심하게 나타났고, 배양후기의 세포에서는 이러한 억제현상이 뚜렷하지 않았다. 또 배양 1일째 세포에서 광재활성에 의한 피리미딘 이량체의 감소율은 자외선 조사직후에 현저하였다가 그후 시간의 경과에 따른 차이는 보이지 않았다. 그러나, 절제회복만에 의한 이량체의 감소는 조사후 시간이 지남에 따라 서서히 감소하여 광재활성에 의한 이량체의 감소량과 비슷한 수준으로 접근하였다.
In the short-term treahent of 12-0-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) or platelet-derived growth factor (PDGF), the'Wh and PDGF induced the Protein Kinase C (PKC) activation and migration from the cytoplasm to the peripheral nulcear membrane. And the activated PKC which was directly or indirectly stimulated by TPA or PDGF Phosphorylated many kinds of PKC's targeting proteins and induces various biological responses. Especially, the cytoplasmic PKC was phosphorylated within 1 hr and 10 min by TPA-and PDGF-treahent respectivelv. In the long-term treatment of TPA or PDGF, both of them induced the down-regulation and translocation of PKC in the mvoblasts. The down-regulation of PKC isozyrnes, the pattern of PKC I and ll was similar to the PKC 111 isozpnes in the cytoplasm. But in the nucleolus, the TPA did not induce and down-regulation or the inhibition of the immunoreactivity of PKC III antibody. This investigation indicates that each isozvmes of PKC mal be performed the different effects to the down-regulation of the cytoplasm or nucleolus. And douvn-regulated myoblasts contained low immunoreactivity of PKC antibodies.
Calpain은 $Ca^2$+-의존성 단백질 분해요소로서, 세포 골격단백질이나 근수축성 단백질을 분해하는 것으로 알려져있다. 한편, 배양 근원세포의 분화는 세포융합이라는 뚜렷한 형태적인 변화를 겪는데, 이때 근원세포의 세포막과 세포골격에 많은 변화가 일어난다고 알려져 있다. 본 실험에서는 근원세포 융합과정에서의 calpain의 역할을 알아보기 위하여 배양근원세포의 융합에 따른 calpain의 활성과 양적 변화를 조사하였다. 배양시간이 경과할 수록 calpain의 활성은 증가하여 세포융합이 왕성히 일어나고 있는 배양 60시간에 최대치를 이루었다. 또한, 닭골격근으로 부터 순수분리된 calpain에 대한 항체를 만들어서 배양 근원세포의 분화에 따른 calpain의 양적 변화를 immunoblot으로 조사하여 본 결과, calpain은 배양 24시간에서 48시간 사이에 그 양이 급격히 증가하여, 세포융합이 시작되는 배양 48시간 사이에 최다량으로 존재하는 것으로 나타났다. 이러한 결과는 calpain의 단백질 분해활성이 세포 융합과정에 관련된 있음을 암시해준다.
Park, Hye-Gyeong;Park, Young-Chul;Lee, Chung-Choo;Ha, Doo-Bong
한국동물학회지
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제29권4호
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pp.294-306
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1986
鷄胚 筋原細胞를 배양하면서 筋原細胞로부터 培養液으로 방출되는 물질을 분석함으로써 筋原細胞가 細胞融合 촉진물질을 분비하는지의 여부를 조사하였다. 근원세포의 배양에 한번 쓰인 배양액(muscle-conditioned medium, MCM)은 세포 융합 촉진효과를 가지고 있는 것으로 보아 근원세포로부터 세포용합 촉진물질이 배양액 내로 방출되는 것으로 보인다. 이 MCM의 단백질을 분석한 결과 분자량 약 175,000인 단백질이 배양액 내에서 분자량 약 145,000인 단백질로 분해되고, 이 분해된 단백질이 세포 융합 촉진 효과를 나타내는 것으로 생각된다.
Using the protein A-gold complex, the mvoabrillogenesis and actin localization of cultured myoblast were invastisated. In the superstructural changes of mvogenic cell during differentiation, pectoral myoblasts contained large nucleus and numerous ribosomes but no myofibrils during the first 24 hr of cultures. Mvoblast initiated to differentiate at 3-day of culture contained the primitive myofibrillar structure. At 96 hr of culture, the mvofibrillar structure showed reletively discernable Z band but pools defined A, H and M bands. The feature of sarcomeric structure showed more defined form at cultur 5 day. In the aspect of actin localization, actin wvas diffusely detected throughout the cytoplasm of myogenic cell and nucleus during the proliferating stage. At 72 hr of culture, with the appearantc oi primitive mvofibrils, gold particles were observed in surrounding of myofibrils but still presented in overall of cytoplasm, especially in the surface and lumen of endoplasmic reticulum. With the gradual increase of culture time, local distribution of actin was readily detected within cytoplasm. In the 5-day specimen of cultures, gold particles precisely indicate the sites of actin localifation within the sarcomere. These results indicate the time of onset of myofibrill appearance and the biosynthetic and incorporation pathway of actin molecules into sarcomeric structure during myofibrillogenesis. Thus, in the present study, the first mvoabrillar structure was detected at culture 3 day, and the initiation of assembly into a typical sarcmeric structure was observed at culture 5 day. It seems, however, that the course of events on myofibrillogenesis of cultured myoblasts can be changed with great dependence of culture conditions including the number and groluth rate of mononucleated mvoblasts after seeding although the fundamental process shows identical appearances.
심근세포는 골격근 세포와 더불어 세포의 분화기작을 이해하기 위한 좋은 모델이라 할 수 있다. 본 연구에서는 심근세포의 배양중에 일어나는 심근 근원섬유형성과정에 대한 이해를 위하여 SDS- 및 two-dimensional gel electrophoresis와 immunofluorescent 및 immunoelectron microscopy를 수단으로 이를 검토하였다. 배양과정에서 나타나는 주요한 단백질 중에서 SDS-PAGE에 의해 209 kDa와 53 kDa 및 46 kDa band가 각각 막분획 및 세포질 분획 단백질에서 배양과정동안에 가장 현저한 양상을 보였다. 특히 배양 3일과 4일의 양상에서 뚜렷한 변화를 나타내어 이들의 OD 격은 배양 96시간에서의 막분획에서 0.38(209 kDa)와 0.52(53 kDa) 및 배양 72시간에서의 세포질 분획에서 0.34(46 kDa)로 각각 최고치를 나타내었다. 또한 이차원 전기영동상의 양상에서도 세포질 및 막분획 단백질의 전반적인 전개양상이 배양 96시간에서 가장 두드러짐으로써 결국 배양 72시간 및 96시간대에서 심근 모세포의 분화와 관련된 일련의 단백질 합성과정이 가장 활발하다는 것을 알 수 있었다. 배양중에 발현되는 actin에 대한 형광현미경적 분석에 의해, actin은 세포내에서 불균등하게 분포하였고 근원섬유가 형성되는 시기인 배양 96시간에 세포외곽부에서 나타나는 다소 강한 염색성을 관찰할 수 있었다. 심근세포의 근원섬유는 전자현미경 관찰에 의해 primitive forms로 배양 96시간에 출현함을 알 수 있었으며 이 시기의 근원섬유의 형태는 여러 구성대(A, H and M bands)가 미약하나 1대는 비교적 뚜렷하였다. 따라서 심근세포의 T근원섬유형성과정에서 관찰되는 뚜렷한 단백질양상의 변화와 근원섬유의 출현시기 및 구성과정간에는 중요한 관련성이 있으며 이러한 과정에서 actin은 세포질내에서 불균등한 분포를 나타낸다는 것을 알 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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