A high concentration of inorganic phosphate (above 25 mM), which was suboptimal for vegetative growth in the minimal production medium, suppressed cephalosporin C (CPC) production in Cephalosporium acremonium. Results from the determination of intracellular concentrations of ATP, ADP and AMP with phosphate-starved resting cells indicated that phosphate exerted its effect indirectly by regulating the ratio of adenylated nucleotides, the so-called adenylated energy charge. It was also found that the type of phosphate regulation of CPC biosynthesis was not a repression effect but an inhibition effect.
A kinetic model incorporating cell morphology in cephalosporin C biosynthesis by Cephalosporium amemoniurn was developed. The double-substrate Double-substrate kinetic model was used to describe cell growth. Methionine controlled the rate of growth while glucose ultimately controlled the extent of growth. The changes in specific product formation rate were associated with morphologenesis, especially cell differentiation. To increase the productivity of cephalosporin C, the proposed model equations were applied to a fed-batch culture. The algorithm to optimize the fed-batch culture consists of two steps; cell growth was maximized in the growth phase and then cephalosporin C production was maximized in the production phase. The increase of about 33% in the cephalosporin C titre was obtained by the optimal feeding scheduling in comparison with that of batch culture.
Production of alkaline carboxymethyl cellulase (CMCase) and xylanase by batch and fed-batch cultures of alkalophilic Cephalosporium sp. RYM-202 was investigated. Of carbon sources tested, wheat bran gave the highest production of those enzymes. The high levels of CMCase on carboxymethyl cellulose and xylanase on birchwood xylan suggest that the biosynthesis of CMCase and xylanase in Cephalosporium sp. RYM-202 is regulated separately at the level of enzyme induction. The temperature and pH for maximal production of those enzymes was $20^{\circ}C$ and 9.0, respectively. High concentration of wheat bran in batch fermentation resulted in the lower and delayed production of the enzymes by catabolite repression. In fed-batch fermentation with controlled feeding of 5% final wheat bran concentration, the highest activities of CMCase and xylanase were 0.39 and 9.2 units/ml, respectively, and 1.22 and 1.36 times higher respectively than those in batch fermentation on 5% wheat bran.
A DL-seleno-methionine resistant mutant, Cephalosporium acremonium MS-92 showed increased activities of sulfate and L-methionine uptake than the parent strain, and accumulated excess methionine and S-adenosylmethionine (SAM) intracellularly. And the sulfate uptake system was severely inhibited by L-cysteine. In crude enzyme extracts, the mutant MS-92 showed lower L-serine sulfhydrylase (identical with cystathionine $\beta$-synthase) activity than the parent. Also, cysteine desulfhydrylase activity, an index of intracellular L-cysteine concentration, of the mutant MS-92 was decreased by about 50% as com-pared with that of the parent. Thus, it was supposed that the mutant MS-92 should have n lower level of L-cysteine than the parent. In C. acremonium like A. nidulans, the enzymes related to the biosynthesis of methionine might be regulated by L-cysteine, but not by methionine or SAM.
An autonomous replication sequence (ARS) derived from Cephalosporium acremonium ATCC 20339 was cloned in Sarchuromyces cerevisiae SHY 3 using YIp5 as a cloning vector. A new recombinant plasmid, designated pCY-2, which contained a 3.7 kb BamHI fragment of C. acrenzonium DNA showed the highest stability among the 40 recombinant plasmids composed of the YIp5 2nd ARS of C. ucremoniztm. Also, Southern hybridization and transformation of E, cull with DNA purified from yeast transformants verified that pCY-2 autonomously replicates in yeasts. Transformation efficiency and plasmid stability of pCY-2 in yeast were higher than those ol YRp 7 containing ARS which originated from yeast. Detailed studies by subcloning revealed that two ARSs existed within 2.6 kb of the insert, which is a novel discovery. However, it was concluded that these two ARSs were ligated during the gene manipulation in vitro.
Kim Jong Chae;Lim Jung Soo;Kim Jung Mo;Kim Chongyoup;Kim Seung Wook
Korea-Australia Rheology Journal
/
v.17
no.1
/
pp.15-20
/
2005
In this study, the relationship between morphology and viscosity of the main culture broth of Cephalosporium acremonium M25 was investigated in a 2.5 L bioreactor. The differentiation of C. acremonium M25 showed a complex pattern during the main culture. The morphological changes of C. acremonium M25 were related to the rheological properties of the culture broth and it was well agreed with the power law model. As a result of rheology study, it was found that rheological properties of the main culture broths of C. acremonium M25 in bioreactor were closely related to morphological changes. Also, fractal dimension fairly predicted morphological and rheological changes in the main culture broth.
A transformation system mediated by Agrobacterium tumefaciens is routinely used for the genetic engineering of plants. Here, we report an efficient and stable method for transformation of heterogeneous genes into an industrial Cephalosporium acremonium by using a similar transformation system established in plants. Both the phleomycin-resistant gene and vgb gene were used as screening markers to confirm the success of transformation by either Southern hybridization or PCR amplification. It was found that acetosyringone (AS) was necessary only for protoplast transformation and the heterogeneous genes transferred were integrated into the genome of C. acremonium. The transformation efficiency obtained with this system was much higher than the conventional techniques used for transformation of C. acremonium.
An alkalophilic Cephalosporium sp. RYM-202 capable of producing cellulase components was isolated from soil. This organism grew best at an initial pH 9.0 and produced cellulase maximal at an initial pH 9.5-10.0. Three carboxymethyl cellulases(CMCases), P-I-I, P-I-II and P-II-I, were partially purified by DEAE-Sephadex A-50 ion exchange column followed by Sephadex G-150 gel filtration. The optimum pH values for activity were 7.5 for P-I-I, 8.0-9.5 for P-I-II and 7.5-10.0 for P-II-I. All CMCases were stable between pH 4.5 and 12.0. Temperature optima for activity ranged between 40 and $60^{\circ}C$ and more than 50% of the maximum activity was observed at $20^{\circ}C$ for both of P-I-I and P-II-I. The activity of CMCases was significantly stable in the presence of various laundry components, such as, surfactants, chelating agents and alkaline proteinases.
Using cephalosporium acremonium ATCC 14553, we studied on the important factors in fermentation. Those factors were :carbon and nitrogen sources, methionine effect, absorbent effect, fermentation variables in a batch fermentation variables in a batch fermentation, effect of reuse of its cellular biomass as a reusable nutrient, and 2, 4-dinitrophenol effect on cephalosprin C production.
The hydrolysis products formed from birchwood xylan by the action of an alkaline xylanase (CX-III) from alkalophilic Cephaloxporium sp. RYM-202 were xylobiose and xylooligosaccharides polymerized with more than 4 sugar molecules. This enzyme was not active on xylobiose but readily attacked xylotriose accumulating xylobiose as a major product. The predominant end-products from xylotetraose by CX-III were xylobiose and xylotriose. These results indicate that the enzyme is typically endo-type xylanase possessing transglycosidase activity. Chemical modification of CX-III with N-bromosuccinimide revealed that two tryptophan residues per molecule of CX-III were essential for its catalytic activity on xylan. On the other hand, iodoacetamide and diethylpyrocarbonate did not influence the activity of the enzyme, suggesting that cysteine and histidine residues are not involved in the active site of this alkaline xylanase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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