Park, Sung-Baek;Kim, Ji-Chul;Park, Kee-Sang;Lee, Taek-Hoo;Chun, Sang-Sik;Song, Hai-Bum
한국발생생물학회:학술대회논문집
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한국발생생물학회 2003년도 제3회 국제심포지움 및 학술대회
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pp.118-118
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2003
The aim of this study was to investigate the effect of glucose on embryonic development of mouse embryos. Two cell embryos were recovered from ICR female mice(3-4weeks) at 46~50 hrs after hCG 5 IU injection (mated just after hCG injection) and cultured in 50 $\mu m$ DMEM droplets supplemented with nothing (control: n=46), glucose 0.5mM (Group A; n=46) or glucose 3.15 mM(Group B; n=46) under mineral oil. All experimental media were supplemented with 20% human follicular fluid. Total blastocyst formation rates was lower (NS) in glucose groups (group A: 52.2% : B. 47.8%) than control group (60.9%). ZiB rates was the highest (P<0.05) in control (47.8%) than those in group A (21.7%) and B (28.3%). ZeB rates were the highest (NS) in group A (30.4%) than those in control (13.0%) and group B (19.6%). Blastocysts, cultured in group B (50.5), had the highest (NS) mean cell number compared with the others (control: 39.2 ; group A: (45.6). The ICM proportion (% ICM of total cells) in blastocysts cultured in group A (20.6%) was the highest (NS) than those of other tested groups (control: 15.2 ; group B: 13.9%). This study shows that a low dose of glucose added to culture medium increases the ICM proportion of blastocysts in mice.
The effect of several potential antioxidants and amino acids were examined as a means of increasing the development of in vitro matured and in vitro fertilized oocytes into morulae or blastocysts. Bovine embryos developed to the 2~8 cell stage after in vitro fertilization were cultured for 5 to 6 days at 39$^{\circ}C$ in CR1aa containing varing concentraton of the antioxidants and amino acid in a gas phase consisting of 5% CO2, high humidified air. At 5~6 days, embryo developments were reduced, and embryos were fixed and stained with Hochest 33342 DNA stain to facilitate counting of cells. In experiment 1, the proportion of embryos developed to morulae and blastocysts in CR1aa containing 1mM, 2.5mM taurine (22.6% and 20.4%) was slightly higher than those of 0, 5 and 10mM Taurine (5.7, 5.7 and 3.9%, P<0.05). In experiment 2, addition of glutathione did not improve blastocyst development (P>0.05). In experiment 3, concentations of superoxide dismutase(SOD) ranging from 300 to 1,000 U did not affect the propotion of embryos developing into blastocysts (P>0.05). In experiment 4, addition of 250 U catalase(38.5%) was slighty higher than those of 0, 500 and 1,000U. In experiment 5, the proportion of embryo developed beyond morula stage in CR1aa with taurine plus EDTA was slighty higher than other treatments(15.7, 26.0 and 29.2%), there were no significantly increases in cell number among treatments(P>0.05). These results are indicating that antioxidants and amino acids can increase the proportion of embryos that develop into morulae and blastocysts, but did not increas in cell number of blastocysts.
Hyeonyeong Shin;Soyeon Kim;Myungyoun Kim;Jaeeun Lee;Dongil Jin
Journal of Animal Science and Technology
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제65권4호
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pp.767-778
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2023
The aim of the research is to identify that porcine oocytes can function as recipients for interspecies cloning and have the ability to develop to blastocysts. Furthermore each mitochondrial DNA (mtDNA) in interspecises cloned embryos was analyzed. For the study, mouse-porcine and porcine-porcine cloned embryos were produced with mouse fetal fibroblasts (MFF) and porcine fetal fibroblasts (PFF), respectively, introduced as donor cells into enucleated porcine oocytes. The developmental rate and cell numbers of blastocysts between intraspecies porcine-porcine and interspecies mouse-porcine cloned embryos were compared and real-time polymerase chain reaction (PCR) was performed for the estimate of mouse and porcine mtDNA copy number in mouse-porcine cloned embryos at different stages.There was no significant difference in the developmental rate or total blastocyst number between mouse-porcine cloned embryos and porcine-porcine cloned embryos (11.1 ± 0.9%, 25 ± 3.5 vs. 10.1 ± 1.2%, 24 ± 6.3). In mouse-porcine reconstructed embryos, the copy numbers of mouse somatic cell-derived mtDNA decreased between the 1-cell and blastocyst stages, whereas the copy number of porcine oocyte-derived mtDNA significantly increased during this period, as assessed by real-time PCR analysis. In our real-time PCR analysis, we improved the standard curve construction-based method to analyze the level of mtDNA between mouse donor cells and porcine oocytes using the copy number of mouse beta-actin DNA as a standard. Our findings suggest that mouse-porcine cloned embryos have the ability to develop to blastocysts in vitro and exhibit mitochondrial heteroplasmy from the 1-cell to blastocyst stages and the mouse-derived mitochondria can be gradually replaced with those of the porcine oocyte in the early developmental stages of mouse-porcine cloned embryos.
We determined the effects of follicular fluid fractions in the maturation medium on bovine oocyte maturation, fertilization and subsequent development, as well as on number of cells in blastocysts following culture. Follicular fluid and oocytes from bovine follicles less than 5 mm in diameter were collected from the ovaries of slaughtered cows. Follicular fluid was separated into different molecular weight fractions by untrafiltration through a membrane using a centrifuge at 500$\times$g, for 2h. For the maturation medium, follicular fluid fractions (30%, v/v), whole fluid (30%) or PVP(3mg/ml) were added to TCM 199(0.1$\mu\textrm{g}$/ml estradiol-17$\beta$, 100IU hCG). After maturation for 24h, oocytes were fertilized in vitro with bull frozen-thawed spermatozoa and cultured on a monolayer of granulosa cells for 9 days after fertilization. There were no differences in maturation rates or fertilization rates among any maturation conditions. The rates of development to >2-cell stage of the oocytes were significantly decreased when fraction of follicular fluid below 10,000 MW were added into maturation medium, compared with control and fraction above 10,000 MW(26.0% vs 40.8% to 64.0%, respectveily. p<0.01). Likewise, the rates of development to blastocysts of fertilized oocytes were significantly decreased in maturation medium containing fraction of follicular fluid (<10,000 MW). The average cell number of blastocysts derived from oocytes that matured in the fraction(>10,000 MW) of follicular fluid was 154.7$\pm$13.7. These embryos contained more cells than those matured in whole follicular fluid, or the fraction(<10, 000 MW) of follicular fluid or control(107.0$\pm$8.4, 91.8$\pm$11.8 and 95.8$\pm$6.2, respectively). In conclusion, we found that fractions of follicular fluid contained factors stimulating or inhibiting oocyte cytoplasmic matruation. These suggest that a factor(s) inducing cytoplasmic maturation of oocytes may exist in >10,000 MW fraction of follicular fluid.
The main purpose of this study was to improve the efficiency and quality of in vitro embryo production in Korean Native Cows (KNC). We examined the effects of ovarian morphologies (Experiment 1) and the culture vessel (Experiment 2) on in vitro maturation (IVM). We measured the subsequent development rates and cell numbers of blastocysts. In Experiment 1, the ovaries of KNC were divided into six groups, based on follicle and corpus luteum (CL) morphology. The development rates to the 2- and 8-cell stages were similar among the six groups. The development rates to blastocyst stages were significantly higher in the group without a CL or follicle (WOCL/F) than in the groups with follicular cysts (FCs), regressive CLs (RCLs) or cystic CLs (CCLs) (p<0.05). The cell number of the inner cell mass (ICM) of blastocysts in the FCs and RCLs groups, and the number of cells in the trophectoderm (TE) in the WOCL/F group, FCs, growing CLs (GCLs) and RCLs were significantly higher than in other groups (p<0.05). The total cell number (TCN) in the WOCL/F, FC and RCL groups was also significantly higher than in other groups (p<0.05). The ICM cell number/TCN ratio was significantly higher in the FC and RCL groups than in the GCL and DF groups (p<0.05). In Experiment 2, oocyte IVM was carried out in culture dishes, in 0.25- or 0.5-ml straws used for freezing sperm. The development rate to the 2-cell stage was significantly higher in the 0.5-ml straw group than in the 0.25-ml straw group. The development rates to the blastocyst stage were similar in the dish and the two straw groups. There were no differences in the cell numbers of ICM, TE or TCN or ICM cell number/TCN ratios between groups.
Blastocyst formation, consisting of the inner cell mass (ICM) and trophectoderm (TE), is the first differentiation process during embryonic development in mammals. It has been hypothesized that the proportion of ICM to TE in the blastocyst may be crucial for subsequent developmental competence of early embryos, which it may be expressed as a sensitive indicator for evaluating in vitro systems. In this study ICM/total cell ratio of nuclear transfer (NT) embryos was compared with IVF-derived and in vivo embryos. Somatic cell nuclei obtained from a fetus at Day 40 of gestation were transferred into the enucleated oocyte and then cultured in NCSU 23 medium for 6 days as previously described (Koo et al., Biol. Reprod. 2000; 63:986-992). ICM and TE cells of blastocysts were determined by using a differential staining method (Han et al., Biol. Reprod. 1999; 60:1110-1113). Development rate (9.8$\pm$2.5%, 23/225) to the blastocyst stage of NT embryos was lower than IVF embryos (23.8$\pm$2.7%, 53/223). Thus, a difference was detected in the in vitro developmental rate to blastocyst stage between NT and IVF-derived embryos (P<0.05). In the next experiment, we investigated ICM and TE nuclei to assess the quality of blastocysts that produced by NT, IVF and in vivo, respectively. NT blastocysts (27.6$\pm$8.3) showed a smaller total cell number than IVF-derived (42.6$\pm$17.4) and in vivo embryos (283.9$\pm$103.5) (P<0.05). Ratios of ICM/total cells in NT, IVF and in vivo blastocysts were 15.1$\pm$ 18.6% (n=56), 12.3$\pm$9.2% (n=57) and 30.4$\pm$6.8% (n=40), respectively. Individual blastocysts for the ratio of ICM/total cells were assigned to 3 groups (I; <20%, II; 20 to 40% and III;>40%). As the results, most in vivo blastocysts (97.5%, 39/40) were distributed into group II while most NT (78.6%, 44/56) and IVF-derived blastocysts (82.5%, 47/57) were allocated to group I. Thus, our data show that NT or IVF-derived embryos have aberrant morphology during early development in vitro systems, suggesting that these anomalies may result in developmental failures of the NT embryos to term.
The present study compared the developmental potential, telomerase activity and transcript levels of X-linked genes (ANT3, HPRT, MeCP2, RPS4X, XIAP, XIST and ZFX) in the bovine somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos derived from different age and cell cycle of female donor nucleus. In experiment 1, the fusion rate, cleavage rate to 2-cell stage, developmental rate to blastocyst stage, and the mean number of total and ICM cells was slightly increased in embryos cloned with fetal fibroblasts compared to those with adult fibroblasts, but there was no significantly (p<0.05) differences. Telomerase activity was also similar in blastocysts cloned with fetal and adult fibroblasts. Up-regulated RPS4X and down-regulated MeCP2, XIAP, and XIST transcript level were observed in blastocysts cloned with adult fibroblasts, compared to those with fetal fibroblasts. In experiment 2, the fusion rate, cleavage rate to 2-cell stage, developmental rate to blastocyst stage, and the mean number of total and ICM cells was significantly (p<0.05) increased in embryos cloned with fetal fibroblasts at early G1 phase of the cell cycle, compared to those of fetal fibroblasts at late G1 phase. DNMT1 transcript was observed to significantly (p<0.05) increased in the fetal fibroblasts at 3 hrs after trypsin treatment of confluent culture. Further, level of telomerase activity and transcribed X-linked genes was also significantly (p<0.05) higher in the early G1 SCNT blastocysts than those of late G1. The results imply that fetal fibroblasts at early G1 phase induces the enhanced developmental potential and up-regulated telomerase activity and X-linked gene, but aberrant transcript pattern of X-linked genes may be displayed in the SCNT embryos.
본 연구는 한우 수정란의 체외생산에 있어서 효율과 품질의 향상을 위해서, 미성숙 난포란을 회수하는 난소의 형태와 배양 용기로서 straw의 효과를 검토하였다. 난소의 형태에 따른 수정율은 전 군에서 70.3∼84.1%로서 비슷한 경향이었다. 8세포기 및 배반포기 발달율은 황체와 난포가 모두 존재하지 않는 대조군이 가장 높았다. 배반포의 inner cell mass(ICM), trophectoderm(TE), total cell number(TCN) 및 ICM/TCN 비율은 낭종군과 퇴행황체군이 다른군에 비하여 높은 경향이었다. 체외성숙에 이용하는 배양용기에 따른 수정율은 0.5 ㎖ straw 군이, 8세포기 발달율은 대조군이 가장 높았으나, 배반포기 발달율은 23.1∼30.7%로서 각 군 간에 비슷한 경향이었다. 한편 각각의 배양 용기에서 유래된 배반포의 ICM, TE, TCN 및 ICM/TCN 비율은 유사한 경향이었다.
본 연구는 immunosurgery와 polynucleotide-specific 형광물질을 이용한 differential labelling기법으로 체외에서 소 수정란의 배발달을 유기하는데 효과적인 것으로 알려진 CR1배양액을 사용하여 체외생산된 소 배반포기배의 inner cell mass (ICM)와 trophectoderm(TE)의 총 세포수를 조사하고자 실시하였다. 공시 배반포기배는 체외수정 후 8일째에 얻어졌다. 체외생산된 배반포기배는 배반포강의 확대와 투명대 두께의 감소를 기준으로 초기, 중기 및 팽윤단계로 구분하였으며, 또한 같은 배발달군내의 배반포기배는 다시 두 군으로 나누어 bisbenzimide만을 처리하여 얻어진 총세포수와 immunosurgery와 two polynulceotide-specific 형광물질을 이용하여 얻어진 ICM와 TE의 총세포수를 비교하여 얻어진 결과는 다음과 같다. 1) 체외수정 후 8일째 배반포기배의 발달율은 29.3%였으며, 초기, 중기, 팽윤 및 부화단계로 구분하였을 때의 발달율은 각각 8.7, 9.9, 7.6, 3.1%였다. 2) Bisbenzimide를 이용한 배반포기배의 총 세포수는 초기, 중기 및 팽윤단게가 각각 46.9$\pm$8.6, 66.2$\pm$12.5, 122.8$\pm$14.4를 나타냈다. 이러한 결과는 CR1이 소 수정란의 발달에 적절한 배양액임을 알 수 있었다. 3) Immunosurgery와 polynucleotide-specific 형광물질을 이용한 differential labelling기법으로 배반포기배의 ICM과 TE 세포수를 초기, 중기 및 팽윤단계로 나누어 조사한 결과, ICM 세포수는 각각 12.8$\pm$5.9, 26.3$\pm$8.4, 35.5$\pm$15.0개 이었고, TE 세포수는 각각 30.5$\pm$5.0, 41.3$\pm$8.2, 81.1$\pm$13.4개로 나타나 ICM과 TE 세포수는 초기 배반포기배에서 팽윤 배반포기배로 진행됨에 따라 두배에서 세배 정도 증가되었음을 알 수 있었다. 또한, differential labelling과 bisbenzimide기법에서 얻어진 각각의 총세포수를 비교하였을 때 총세포수는 발달의 진행 정도에 따라 증가되며 그와 동시에 동일한 군 간의 세포수도 거의 유사함을 알 수 있었다. 따라서, ICM과 TE를 differential labelling하는 기법은 수정란의 quality를 평가하는데 매우 유용한 기법으로서 착상전 embryo 발달을 연구하는데 효과적으로 이용될 수 있다는 것을 시사한다.
Objective : The aim of this study was to evaluate the influence of different media on blastulation, mean cell number, percentage of inner cell mass (ICM) of total cells and ICM : trophectoderm (TE) ratio in mice. Materials and methods: A total 552 two cell embryos were retrieved from ICR female mice (4 weeks old) at 48 hr after hCG injection (mated just after hCG injection) and cultured in MEM (n=276) or TCM (n=276) supplemented with 20% hFF. The grading of blastocysts from zona-intact (ZiB) to -escape (hatching and hatched, ZeB) was performed at 72 hours after culture. Total, TE and ICM cell numbers were analyzed by differential staining of blastocyst. Statistical analysis was performed using t-test with SigmaPlot-2001. P-values < 0.05 were accepted as statistically significant. Results: The blastulation rate in MEM ($64.9{\pm}4.95%$) was significantly higher (p=0.0031) than that in TCM ($57.2{\pm}5.22%$). No differences were found in the number of ZiB and ZeB between MEM ($31.9{\pm}2.62$, $33.0{\pm}4.58%$), and TCM ($27.2{\pm}4.28$, $30.1{\pm}4.58%$). A total 314 blastocysts (MEM=166; TCM=148) were stained differentially. Mean cell number of blastocysts was significantly higher (p=0.0002) in TCM ($73.1{\pm}3.3$) than in MEM ($61.7{\pm}2.5$). Differential staining was successfully performed in 155 blastocysts (MEM=77; TCM=78). The percentage of ICM was significantly higher in MEM than in TCM ($20.9{\pm}1.3$ vs. $17.1{\pm}1.2%$, p=0.0281). The ICM : TE ratio was higher in TCM than in MEM (1 : $4.85{\pm}0.68$ vs. 1 : $3.78{\pm}0.78$, NS). Conclusion: These results show that MEM increase the blastocyst formation and percentage of ICM of total cells comparing with TCM in mice.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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