The depletion of intracellular calcium stores by thapsigargin treatment evoked extracellular calcium-dependent membrane currents in Xenopus laevis oocytes. These currents have been compared to those evoked by microinjection of a calcium influx factor (CIF) purified from Jurkat T lymphocytes. The membrane currents elicited by thapsigargin treatment (peak current, $163{\pm}60$ nA) or CIF injection (peak current, $897{\pm}188$ nA) were both dependent on calcium entry, based on their eradication by the removal of extracellular calcium. The currents were, in both cases, attributed primarily to well-characterized $Ca^{2+}-dependent$$Cl^-$ currents, based on their similar reversal potentials (-24 mV vs. -28 mV) and their inhibition by niflumic acid (a $Cl^-$ channel blocker). Currents induced by either thapsigargin treatment or CIF injection exhibited an identical pattern of inhibitory sensitivity to a panel of lanthanides, suggesting that thapsigargin treatment or CIF injection evoked $Cl^-$ currents by stimulating calcium influx through pharmacologically identical calcium channels. These results indicate that CIF acts on the same calcium entry pathway activated by the depletion of calcium stores and most lanthanides are novel pharmacological tools for the study of calcium entry in Xenopus oocytes.
Highly purified high performance thin layer chromatography (HPTLC) fractions containing a putative calcium influx factor (CIF) were prepared from the Jurkat cells and Xenopus oocytes in which $Ca^{2+}$ stores were depleted by thapsigargin treatment and from the yeast in which intracellular $Ca^{2+}$ stores were also depleted by genetic means. Microinjection of the fractions has been shown to elicit $Ca^{2+}$ dependent currents in Xenopus oocytes. The nature of the membrane currents evoked by the putative CIF appeared to be carried by chloride ions since the current was blocked by the selective chloride channel blocker 1 mM niflumic acid and its reversal potential was about -24 mV. Injection of the calcium chelator 1,2-bis(2-aminophenoxy)ethane-N, N, N',N'-tetraacetic acid (BAPTA) eradicated the current activities, suggesting the current responses are entirely $Ca^2$-dependent. Moreover, the currents were sensitive to the removal of extracellular calcium, indicating the dependence on calcium entry through the plasma membrane calcium entry channels. CIF activities were insensitive to protease, heat, and acid treatments and to Dische-reaction whereas the activities were sensitive to nucleotide pyrophosphatase and hydrazynolysis. The fraction might have a sugar because it was sensitive to Molisch test and Seliwaniff's resorcinol reaction. From the above results, CIF as a small and stable molecule seems to have pyrimidine, pyrophosphate, and a sugar moiety.oiety.
Han, Bong-Deok;Lee, Sang-Lyul;Park, Moon-Hwan;Chae, Quae
BMB Reports
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v.28
no.6
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pp.499-503
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1995
In our previous studies (Chae et al., 1990; Chae et a1., 1993), we found that a phytochrome signal was clearly connected with the change in cytosolic free $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) in oat cells. It was determined that the $[Ca^{2+}]_i$ change occured both by mobilization out of the intracellular $Ca^{2+}$ store and by influx from the medium. The specific aim of this work is to elucidate the processes connecting $Ca^{2+}$ mobilization and influx. The cells treated with thapsigargin (increasing $[Ca^{2+}]_i$ by inhibition of the $Ca^{2+}$-ATPase in the calcium pool) in the presence of external $Ca^{2+}$ showed the same increasing pattern (sustained increasing shape) of $[Ca^{2+}]_i$ as that measured in animal cells. Red light irradiation after thapsigargin treatment did not increase $[Ca^{2+}]_i$ These results suggest that thapsigargin also acts specifically in the processes of mobilization and influx of $Ca^{2+}$ in oat cells. When the cells were treated with TEA ($K^+$ channel blocker), changes in $[Ca^{2+}]_i$ were drastically reduced in comparison with that measured in the absence of TEA. The results suggest that the change in $[Ca^{2+}]_i$ due to red light irradiation is somehow related with $K^+$ channel opening to change membrane potential. The membrane potential change due to $K^+$ influx might be the critical factor in opening a voltage-dependent calcium channel for $Ca^{2+}$ influx.
Eum, Jin Hee;Park, Miseon;Yoon, Jung Ah;Yoon, Sook Young
Development and Reproduction
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v.24
no.4
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pp.297-306
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2020
Repetitive changes in the intracellular calcium concentration ([Ca2+]i) triggers egg activation, including cortical granule exocytosis, resumption of second meiosis, block to polyspermy, and initiating embryonic development. [Ca2+]i oscillations that continue for several hours, are required for the early events of egg activation and possibly connected to further development to the blastocyst stage. The sources of Ca2+ ion elevation during [Ca2+]i oscillations are Ca2+ release from endoplasmic reticulum through inositol 1,4,5 tri-phosphate receptor and Ca2+ ion influx through Ca2+ channel on the plasma membrane. Ca2+ channels have been characterized into voltage-dependent Ca2+ channels (VDCCs), ligand-gated Ca2+ channel, and leak-channel. VDCCs expressed on muscle cell or neuron is specified into L, T, N, P, Q, and R type VDCs by their activation threshold or their sensitivity to peptide toxins isolated from cone snails and spiders. The present study was aimed to investigate the localization pattern of N and P/Q type voltage-dependent calcium channels in mouse eggs and the role in fertilization. [Ca2+]i oscillation was observed in a Ca2+ contained medium with sperm factor or adenophostin A injection but disappeared in Ca2+ free medium. Ca2+ influx was decreased by Lat A. N-VDCC specific inhibitor, ω-Conotoxin CVIIA induced abnormal [Ca2+]i oscillation profiles in SrCl2 treatment. N or P/Q type VDC were distributed on the plasma membrane in cortical cluster form, not in the cytoplasm. Ca2+ influx is essential for [Ca2+]i oscillation during mammalian fertilization. This Ca2+ influx might be controlled through the N or P/Q type VDCCs. Abnormal VDCCs expression of eggs could be tested in fertilization failure or low fertilization eggs in subfertility women.
Astrocytes play a critical role in normal brain functions and maintaining the brain microenvironment, and defects in astrocytogenesis during neurodevelopment could give rise to severe mental illness and psychiatric disorders. During neuro-embryogenesis, astrocytogenesis involves astrocytic differentiation of neural precursor cells (NPCs) induced by signals from ciliary neurotrophic factor (CNTF) or pituitary adenylate cyclase-activating peptide (PACAP). However, in contrast to the CNTF signaling pathway, the exact mechanism underlying astrocytic differentiation induced by PACAP is unknown. In the present study, we aimed to verify a signaling pathway specific to PACAP-induced astrocytogenesis, using exchange protein directly activated by cAMP2 (Epac2)-knockout mice. We found that PACAP could trigger astrocytic differentiation of NPCs via Epac2 activation and an increase in the intracellular calcium concentration via a calcium ion influx. Taken together, we concluded that astrocytogenesis stimulated by PACAP occurs through a novel signaling pathway independent from CNTF-JAK/STAT signaling, that is the well-known pathway of astrocytogenesis.
Background: Ginsenoside Rg3 (G-Rg3) is the major bioactive ingredient of Panax ginseng and has many pharmacological effects, including antiadipogenic, antiviral, and anticancer effects. However, the effect of G-Rg3 on mast cell-mediated allergic inflammation has not been investigated. Method: The antiallergic effects of G-Rg3 on allergic inflammation were evaluated using the human and rat mast cell lines HMC-1 and RBL-2H3. Antiallergic effects of G-Rg3 were detected by measuring cyclic adenosine monophosphate (cAMP), detecting calcium influx, and using real-time reverse transcription polymerase chain reaction, enzyme-linked immunosorbent assay, Western blotting, and in vivo experiments. Results: G-Rg3 decreased histamine release from activated mast cells by enhancing cAMP levels and calcium influx. Proinflammatory cytokine production was suppressed by G-Rg3 treatment via regulation of the mitogen-activated protein kinases/nuclear factor-kappa B and receptor-interacting protein kinase 2 (RIP2)/caspase-1 signaling pathway in mast cells. Moreover, G-Rg3 protected mice against the IgE-mediated passive cutaneous anaphylaxis reaction and compound 48/80-induced anaphylactic shock. Conclusion: G-Rg3 may serve as an alternative therapeutic agent for improving allergic inflammatory disorders.
Park, Jung-Gyu;Jo, Young-Ah;Kim, Yun-Taik;Yoo, Young-Sook
BMB Reports
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v.31
no.5
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pp.468-474
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1998
Membrane depolarization in PC12 cells induces calcium influx via an L-type voltage-sensitive calcium channel (L-VSCC) and increases intracellular free calcium, which leads to tyrosine phosphorylation of epidermal growth factor (EGF) receptor and the associated adaptor protein, She. This activated EGF receptor complex then can activate mitogen-activated protein (MAP) kinase, as in nerve growth factor (NGF) receptor activation. In the present study, we investigated the role of EGF receptor in the signaling pathway initiated by membrane depolarization of PC12 cells. Prolonged membrane depolarization induced phosphorylation of extracellular signal-regulated kinase (ERK) within 1 min in undifferentiated PC12 cells. Pretreatment of PC12 cells with the calcium chelator EGTA abolished depolarization-stimulated ERK phosphorylation, but NGF-induced phosphorylation of ERK was not affected. The chronic treatment of phorbol ester, which down-regulated the activity of protein kinase C (PKC), did not affect the phosphorylation of ERK upon depolarization. In the presence of an inhibitor of EGF receptor, neither depolarization nor calcium ionophore increased the level of ERK phosphorylation. These data imply that the EGF receptor is functionally necessary to activate ERK and neurite outgrowth in response to the prolonged depolarization in PC12 cells, and also that PKC is apparently not involved in this signaling pathway.
The present study was undertaken to clarify the role of calcium ion as a factor for the maturation of follicle-enclosed mouse oocytes. Follicles were isolated with two sharp needles under a stereomicroscope from mouse(ICR) ovaries which were treated PMSG 5 IU 45 hours previously. Isolated follicles were cultured for 14-16 hours in an organ culture system at $37^{\circ}C$, 5% $CO_2$ in air and in a 100% humidified incubator by treatment of hCG, EDTA and $^{45}Ca^{++}$. Culture medium was Modified Hank's Balanced Salt Sol. (MHBS) and addition of hCG (human chorionic gonadotropin) was made into two doses level 0.4 IU and 0.8IU from the stock sol. and also $^{45}Ca^{++}$ was treated in the culture medium. To explain the role of calcium, calcium chelating agent EDTA was treated to the culture of the mouse follicle-enclosed oocytes. Two observations were made in the present study; nucleus phase and $^{45}Ca^{++}$ uptake into the oocyte. HCG induced oocyte maturation in the follicle about two folds as much as the control group, whereas there is no difference in oocyte maturation between 0.4 IU and 0.8 IU of hCG. Optimum level of hCG seems to be 0.4 IU/ml in the mouse follicle culture. HCG stimulated $^{45}Ca^{++}$ uptake into the oocyte of the follicles by two folds. $^{45}Ca^{++}$ uptake in the control group is about 2.5 folds in comparison of the EDTA(1.71mM) treated group. However, calcium uptake in the EDTA treated groups tends to increase depending on the decrease of EDTA concentration. These observations suggest that firstly, hCG stimulates maturation of the oocyte of the follicle, secondly, $Ca^{++}$ influx is induced by hCG and thirdly, $Ca^{++}$ influx by the treatment of EDTA decreases as a dosage-dependent process. This $Ca^{++}$ uptake may take place by the changes of permeability which was induced by hCG treatment. That is, $Ca^{++}$ influx may trigger the resumption of oocyte maturation. It is further necessary in the future study how this $Ca^{++}$ uptake is induced by hCG and increases permeability of the follicle and oocyte.
Cell death of trophoblast, particularly by abnormal release of physiological nitric oxide (NO) has been known to be a causative factor of pre-eclampsia. In the present study, effects of intracellular calcium increase enhancing the activity of NO synthases (neuronal NO synthase, nNOS in this trophoblast cells) on the cell death were examined in a human placental full-term cell line (HT-1). Furthermore, we analyzed the possible mechanisms underlying the augmentation of $Ca^{++}$-mediated NOS activity mediated by protein kinases like PKC, PKA, or CaM-KII. In experiments for cell toxicity, a calcium ionophore (ionomycin $10{\mu}M$) enhanced cell death confirmed by MTT assay, and increased significantly nNOS activity determined with a hemoglobin oxidation assay. This cell death was partially protected by pre-treatment of 7-nitroindazole (7-NI, $10{\mu}M$ and $100{\mu}M$), a nNOS-specific inhibitor. Additionally, $Ca^{++}$-ionophore -induced increase of nNOS activity also was partially normalized by pre-treatment of specific inhibitors of protein kinases, PKC, PKA or CaM-KII. Therefore, we suggest that an increase of calcium influx, leading to the activation of nNOS activity, which in turn may result in the death of trophoblast cells by involvement of signaling mechanisms of protein kinases.
Kim, Mi Seong;Kim, So Hui;Yang, Sei-Hoon;Kim, Min Seuk
Tuberculosis and Respiratory Diseases
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v.85
no.2
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pp.147-154
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2022
Background: The expression of calcium signaling pathway molecules is altered in various carcinomas, which are related to the proliferation and altered characteristics of cancer cells. However, changes in calcium signaling in anti-cancer drug-resistant cells (bearing a T790M mutation in epidermal growth factor receptor [EGFR]) remain unclear. Methods: Afatinib-mediated changes in the level of store-operated Ca2+ entry (SOCE)-related proteins and intracellular Ca2+ level in non-small cell lung cancer cells with T790M mutation in the EGFR gene were analyzed using western blot and ratiometric assays, respectively. Afatinib-mediated autophagic flux was evaluated by measuring the cleavage of LC3B-II. Flow cytometry and cell proliferation assays were conducted to assess cell apoptosis and proliferation. Results: The levels of SOCE-mediating proteins (ORAI calcium release-activated calcium modulator 1 [ORAI1], stromal interaction molecule 1 [STIM1], and sarco/endoplasmic reticulum Ca2+ ATPase [SERCA2]) decreased after afatinib treatment in non-small cell lung cancer cells, whereas the levels of SOCE-related proteins did not change in gefitinib-resistant non-small cell lung cancer cells (PC-9/GR; bearing a T790M mutation in EGFR). Notably, the expression level of SOCE-related proteins in PC-9/GR cells was reduced also responding to afatinib in the absence of extracellular Ca2+. Moreover, extracellular Ca2+ influx through the SOCE was significantly reduced in PC-9 cells pre-treated with afatinib than in the control group. Additionally, afatinib was found to decrease the level of SOCE-related proteins through autophagic degradation, and the proliferation of PC-9GR cells was significantly inhibited by a lack of extracellular Ca2+. Conclusion: Extracellular Ca2+ plays important role in afatinib-mediated autophagic degradation of SOCE-related proteins in cells with T790M mutation in the EGFR gene and extracellular Ca2+ is essential for determining anti-cancer drug efficacy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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