Kwang-Youn Kim;Tae-In Kim;Yeon-Ji Kim;Yun-Mi Kang;Kyungho Kim
Herbal Formula Science
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v.32
no.2
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pp.121-128
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2024
Objectives : This study aimed to investigate the protective effects of mixed extracts from Scutellaria baicalensis Georgi, Alisma orientale Juzepzuk, and Atractylodes japonica Koidzumi on interleukin (IL)-6-induced damage to tight junction (TJ) integrity in a Caco-2 cell model. Methods : We assessed the TJ integrity of Caco-2 monolayers by measuring the flux of FITC-labeled dextran and transepithelial electrical resistance (TEER). Additionally, we evaluated the expression of TJ proteins, such as ZO-1 and Occludin. Results : Treatment with IL-6 (50 ng/ml) increased TJ permeability and decreased TEER values of Caco-2 monolayers. Pretreatment with HTB (50-200 ㎍/ml) for 1 h significantly alleviated IL-6-induced TJ disruption, as evidenced by reduced TJ permeability and increased TEER values. Furthermore, HTB reversed the IL-6-induced inhibition of TJ protein expression, including ZO-1 and Occludin. Conclusions : These findings indicate that HTB protects barrier function by reversing the IL-6-induced decrease in TJ integrity and the suppression of TJ protein expression.
Kim, In-Wha;Yoo, Ho-Jung;Song, Im-Sook;Chung, Youn-Bok;Moon, Dong-Cheul;Chung, Suk-Jae;Shim, Chang-Koo
Archives of Pharmacal Research
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v.26
no.4
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pp.330-337
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2003
The effect of sixteen excipients on the transport of recombinant human epidermal growth factor (rhEGF) across Caco-2 cell monolayers was examined at $37^{\circ}C$. The apparent apical to basolateral (A-B) permeability ($P_{app}$) of 30 $\mu$ M rhEGF was $8.15\times 10^{-7}$ cm/sec, indicative of a poor level of absorption in the GI tract. The Papp was 1.7- and 6.3-fold greater than the $P_{app}$ in the basolateral to apical (B-A) direction and the A-B permeability of mannitol, respectively, and decreased dramatically to a negligible level at $4^{\circ}C$, consistent with a receptor mediated transcytosis of rhEGF. The stability of rhEGF was very poor, undergoing more than 85% degradation in 2 h in the transport medium at $37^{\circ}C$. A significant increase in the $P_{app}$ could be achieved by the addition of certain excipients, as exemplified by 23, 21, 20 and 16-fold increases, in the presence of sodium taurochenodeoxycholate (NaTCDC), sodium taurodeoxycholate (NaTDC), sodium glycodeoxycholate (NaGDC) and sodium laurylsulfate (SLS) (all at a concentration of 1 % w/v), respectively. A significant increase in stability could also be achieved by the addition of some of the excipients, as represented by 1 % SLS, which nearly completely stabilized the rhEGF. Unfortunately, however, an increase in the $P_{app}$ of rhEGF could not be achieved without a simultaneous and extensive decrease in the integrity of the cell membranes. Thus, more efficient excipients, that specifically enhance the permeation of rhEGF and do not alter the membrane integrity, should be pursued in order to safely enhance the permeation of rhEGF.
Kim, Seon-Hwa;Jung, Seo-Jeong;Um, So-Young;Na, Mi-Ae;Choi, Min-Jin;Chung, Myeon-Woo;Oh, Hye-Young
Biomolecules & Therapeutics
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v.15
no.2
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pp.102-107
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2007
Cimetidine, a substrate for P-glycoprotein (P-gp), is a well known drug interacting with a variety of drugs and results in alteration of pharmacokinetic parameters by concomitant administration. The aim of present study was to investigate whether cimetidine affects the transport of various quinolone antibiotics in human colorectal cancer cell line (Caco-2) system which has been typically used to investigate drug transport via P-gp. The apparent permeability coefficients (P$_{app}$) value of 9 quinolone antibiotics in the co-treatment with cimetidine was examined. Apical to basolateral (AP-to-BL) transport of fleroxacin in the co-treatment with cimetidine was increased to 1.5-fold (p<0.01) compared with that of fleroxacin alone, whereas basolateral to apical (BL-to-AP) transport of fleroxacin was decreased to 0.83-fold significantly (p<0.05). Ofloxacin was decreased to 0.8-fold (p<0.01) and 0.72-fold (p<0.01) significantly in AP-to-BL and BL-to-AP direction, respectively by cimetidine cotreatment. The P$_{app}$ values of gatifloxacin, moxifloxacin, ciprofloxacin and rufloxacin also were changed by cimetidine. These results have a potential that cimetidine influences on the pharmacokinetics of quinolone antibiotics. It suggests that careful drug monitoring and dosage adjustment may be necessary during the co-administration of quinolone antibiotics with cimetidine.
We studied the effects of phytolaccosides, saponins from Phytolacca americana, on the intestinal absorption of heparin in vitro and in vivo. The absorption enhancing activity of these compounds (phytolaccosides B, $D_2$, E, F, G and I) was determined by changes in transepithelial electrical resistance (TEER) and the transport amount of heparin disaccharide, the major repeating unit of heparin, across Caco-2 cell monolayers. With the exception of phytolaccoside G, all of them decreased TEER values and increased the permeability in a dose-dependent and time-dependent manner. In vitro, phytolaccosides B,$D_2$, and E showed significant absorption enhancing activities, while effects by phytolaccoside F and I were mild. In vivo, phytolaccoside E increased the activated partial thromboplastin time (APTT) and thrombin time, indicating that phytolaccoside E modulated the transport of heparin in intestinal route. Our results suggest that a series of phytolaccosides from Phytolacca americana can be applied as pharmaceutical excipients to improve the permeability of macromolecules and hydrophilic drugs having difficulty in absorption across the intestinal epithelium.
We investigated the absorption enhancing effect of BuOH extract of the root of Aralia elata (BERAE) in Caco-2 cell monolayers and rats. At the concentration of both 0.04% and 0.08% (w/v). BERAE decreased the transepithelial electrical resistance (TEER) values and increased the permeability of intact chondroitin sulfate (CS) and its digestion products as hydrophilic macromolecules in a dose dependent manner. We also evaluated the cytotoxicity of BERAE for the determination of a proper concentration as an absorption enhancer. (omitted)
Park, Hyeon-Woo;Chung, Suk-Jae;Lee, Myung-Gull;Shim, Chang-Koo
Archives of Pharmacal Research
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v.24
no.6
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pp.584-589
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2001
Isopropryl 2-(1-3-dithiethane-2-ylidene)-2 [N-(4-methyl-thiazole-2-yl) carbamoyl] acetate (YH439) is currently under phase ll clinical trials by the Yuhan Research Center for use as a hepatoprotective agent. Unfortunately, the oral bioavailbility of YH439, which is sparingly soluble in water (i.e., $0.3{\;}\mu\textrm{g}/ml{\;}or{\;}0.91{$\mu}M$ at room temperature), reportedly, is negligibleregardless of the dose administered to rats in the 10-300 mg/kg range. The bioavailability of the compound increased up to 24%, when administered in the form of a micellar solution ($700{\;}\mu\textrm{g}/ml$or 2.1 mM for YH439) at a dose of 10 mg/kg, suggesting that its limited solubility is associated with its negligible bioavailability. In order to obtain additional informmation concerning the bioavailability of YH439, the mechanism(s) involved in gastrointestinal (Gl) absorption were investigated in the present study. For this purpose, the transport of YH430 across a Caco-2 cell monolayer was measured in a $Transwell^{\circledR}$. A permeability of $4.07{\times}10^{-5}{\;}cm/s$ was obtained for the absorptive (i.e., apical to basolateral direction) transport of $0.42{\mu}M$ YH439, implicating that the in vivo Cl absorption is nearly complete. The absorptive transport exhibited a slight concentration-dependency with an intrinsic clearance ($CL_{i}$) of $0.38{\mu}L/{\textrm{cm}^2}/sec$, which accounted for 28.1% of the total intrinsic clearance (i.e., $CL_i$ plus the intrinsic clearance for the linear component) of the transport. Thus, saturation of the absorption process appears to be a minor factor in limiting the bioavailability of the compound. The apparent permeability of YH439 from the basolateral to the apical direction (i.e., efflux, $6.67{\times}10^{-5}{\;}cm/s$) was comparable to that for absorptive transport, but, interestingly, a more distinct concentration-dependency was observed for this transport. However, the efflux does not appear to influence the bioavailability of the compound, as evidenced by the sufficiently high permeability in the absorption direction. Rather, a reportedly extensive first-pass hepatic metabolism appears to be a principal factor in limiting the bioavailability. In this respect, reducing the first-pass metabolism by some means would lead to a higher bioavailability of the compound. Thus, elevation of the absorption rate of YH439 becomes a necessity. From a practical point of view, increasing the concentration of YH439 in the Cl fluid appears to be a feasible way to increase the absorption rate, because the compound is primarily absorbed via a linear mechanism. In summary, the solubilization of YH439, as previously demonstrated for a micellar solution of the compound, appears to be a practical way to increase the oral bioavailability of YH439.
The mitogen-activated protein kinase (MAPK) pathway controls intestinal epithelial barrier permeability by regulating tight junctions (TJs) and epithelial cells damage. Heme oxygenase-1 (HO-1) and carbon monoxide (CO) protect the intestinal epithelial barrier function, but the molecular mechanism is not yet clarified. MAPK activation and barrier permeability were studied using monolayers of Caco-2 cells treated with tissue necrosis factor α (TNF-α) transfected with FUGW-HO-1 or pLKO.1-sh-HO-1 plasmid. Intestinal mucosal barrier permeability and MAPK activation were also investigated using carbon tetrachloride (CCl4) administration with CoPP (a HO-1 inducer), ZnPP (a HO-1 inhibitor), CO releasing molecule 2 (CORM-2), or inactived-CORM-2-treated wild-type mice and mice with HO-1 deficiency in intestinal epithelial cells. TNF-α increased epithelial TJ disruption and cleaved caspase-3 expression, induced ERK, p38, and JNK phosphorylation. In addition, HO-1 blocked TNF-α-induced increase in epithelial TJs disruption, cleaved caspase-3 expression, as well as ERK, p38, and JNK phosphorylation in an HO-1-dependent manner. CoPP and CORM-2 directly ameliorated intestinal mucosal injury, attenuated TJ disruption and cleaved caspase-3 expression, and inhibited epithelial ERK, p38, and JNK phosphorylation after chronic CCl4 injection. Conversely, ZnPP completely reversed these effects. Furthermore, mice with intestinal epithelial HO-1 deficient exhibited a robust increase in mucosal TJs disruption, cleaved caspase-3 expression, and MAPKs activation as compared to the control group mice. These data demonstrated that HO-1-dependent MAPK signaling inhibition preserves the intestinal mucosal barrier integrity by abrogating TJ dysregulation and epithelial cell damage. The differential targeting of gut HO-1-MAPK axis leads to improved intestinal disease therapy.
The absorption of a P-gp substrate, rhodamine 123, from a liposomal dosage form was investigated across Caco-2 cell monolayers, rat intestines and rat intestinal Peyer's patches in Ussing chamber, Rhodamine 123 was incorporated into liposomes according to the standard evaporation method, which led to a production of liposomes with a mean diameter of 71.3 nm. The permeability (Papp of rhodamine 123 from a water solution across the monolayer was $2.45{\times}10^{-6}$ cm/s for $A{\leftrightarrow}B$ (apical to basal) and $14.0{\times}10^{-6}$ cm/s for $B{\leftrightarrow}A$ (basal to apical) directions, consistent with the fact that rhodamine 123 is one of the P-gp substrates. The transport of rhodamine 123 from the liposomal dosage form was much lower for both directions compared to the solution of rhodamine 123. The transport of rhodamine 123 across the rat intestine was also significantly decreased for both directions, I.e., influx and efflux, by the liposomal incorporation of the compound. The transport of rhodamine 123 across the Peyer's patch was substantially reduced by liposomal incorporation. No difference was found in the transport between the Peyer's patch and non-Peyer's patch. These observations suggest that the contribution of transport via Peyer's patches in the uptake of liposomes may be minimal, especially for rapidly absorbed compounds like rhodamine 123. Therefore, the increased absorption of P-gp substrates does not appear to be feasible by incorporating the compounds in liposomes, due to negligible involvement of Peyer's patches in the uptake of particulate dosage forms like liposomes. Liposomes may rather represent a sustained release dosage form of incorporated compounds.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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