Essential hypertension is complex disorder influenced by multiple genetic and environmental factors. Alterations of lipid metabolism in plasma have been reported to be related to an increased risk of essential hypertension. The aim of this study was to investigate the relationship between two SNPs of the human LDL receptor and CETP gene and hypertension in Korean population. There were no significant differences in allele and genotype frequencies of two SNPs in normotensives and hypertensives. With respect to Hinc II RFLP in the LDL receptor gene, pooled odds ratio value indicated the significant heterogeneity among populations studied by meta-analysis (Breslow-Day test df = 2, P<0.05). In the case of Bam HI RFLP in the CETP gene,. our study is the first report of an association between the SNP of the CETP gene and hypertension, although our result failed to demonstrate the significant association between the Bam HI RFLP of the CETP gene and hypertension in Korean population. Further work, using larger sample sizes and various ethnic groups, is required to establish the precise role of these two candidate gene polymorphisms on hypertension.
Suh, Hyung Joo;Lee, Hyunji;Min, Byung Jung;Jung, Sung Ug;Jung, Eun Young
Nutrition Research and Practice
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v.10
no.6
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pp.569-574
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2016
BACKGROUND/OBJECTIVES: We investigated the anti-osteoarthritic effects of deer bone extract on the gene expressions of matrix metalloproteinases (MMPs) and collagen type II (COL2) in interleukin-$1{\beta}$-induced osteoarthritis (OA) chondrocytes. MATERIALS/METHODS: Primary rabbit chondrocytes were treated as follows: CON (PBS treatment), NC (IL-$1{\beta}$ treatment), PC (IL-$1{\beta}+100{\mu}g/mL$ glucosamine sulphate/chondroitin sulphate mixture), and DB (IL-$1{\beta}+100{\mu}g/mL$ deer bone extract). RESULTS: The results of the cell viability assay indicated that deer bone extract at doses ranging from 100 to $500{\mu}g/mL$ inhibits cell death in chondrocytes induced by IL-$1{\beta}$. Deer bone extract was able to significantly recover the mRNA expression of COL2 that was down-regulated by IL-$1{\beta}$ (NC: 0.79 vs. DB: 0.87, P < 0.05) and significantly decrease the mRNA expression of MMP-3 (NC: 2.24 vs. DB: 1.75) and -13 (NC: 1.28 vs. DB: 0.89) in OA chondrocytes (P < 0.05).CONCLUSIONS: We concluded that deer bone extract induces accumulation of COL2 through the down-regulation of MMPs in IL-$1{\beta}$-induced OA chondrocytes. Our results suggest that deer bone extract, which contains various components related to OA, including chondroitin sulphate, may possess anti-osteoarthritic properties and be of value in inhibiting the pathogenesis of OA.
Kim, Young-Jin;Kim, Dong-Bum;Lee, Young-Hee;Choi, Soo-Young;Park, Jin-Seu;Lee, Seung-Yong;Park, Joon-Won;Kwon, Hyung-Joo
BMB Reports
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v.42
no.5
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pp.304-309
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2009
Nanoparticulate platinum (II) (nano Pt) is a powerful antioxidant that is widely used to scavenge reactive oxygen species (ROS). The antioxidant activity of nano Pt has gained attention as a potentially useful therapeutic for a variety of diseases including cancer and aging. In the present study, we prepared nanoparticulate saponin-Pt (II) (nano saponin-Pt) conjugates using the ethanol reduction method to enhance the permeability and retention effect of Pt. The nano saponin-Pt conjugates were found to restore the viability of approximately 40% of 2,4-dinitrofluorobenzene (DNFB)-treated RAW 264.7 cells. In addition, we found that nano saponin-Pt conjugates acted as a potent antioxidant that reduced the production of ROS and inhibited activation of the MAP kinase pathway and MIP-2 gene expression in response to DNFB. These results provide insight into the potential usefulness of nano saponin-Pt conjugates as a treatment for contact hypersensitivity.
Optimal regeneration conditions of ginseng transformants were studied. It has been known that Ferritin Light Heavy Chain (FLHC) gene remove the several heavy metal by combination, store and transport. To obtain the ginseng tolerant to heavy metal, binary vector was introduced in Agrobacterium by tri-parental mating and then Agrobacterium tumefaciens MP90/FLHC was selected on the AB media and MS media containing kanamycin. Explants were co-cultured with Agrobacterium tumefaciens MP90/FLHC, which contained NPT II as a selectable marker, tadpole ferritin heavy chain (FLHC) gene and human ferritin light chain gene and then a number of embryos were induced. The induced embryo transferred to shooting media consisting of MS medium supplemented with GA 10 mg/L. As a result of examination that induced the normal growth of transfomants, transformants showed the equivalent growth in both root and shoot on the media containing the 1/3 MS.
Homology-specific transcriptional and post-transcriptional silencing, an intrinsic mechanism of gene regulation in most eukaryotes, can be induced by anti-sense, co-suppression, or hairpin-based double-stranded RNA. Hairpin-based RNA interference (RNAi) has been applied to analyze gene function and genetically modify crops. However, RNAi vector construction usually requires high-cost cloning steps and large amounts of time, or involves methods that are protected by intellectual property rights. We describe a more effective method for generating intron-spliced RNAi constructs. To produce intron-spliced hairpin RNA, an RNAi cassette was ligated with the first intron and splicing sequences of the Brassica rapa ssp. pekinensis histone deacetylase 1 gene. This method requires a single ligation of the PCR-amplified target gene to SpeI-NcoI and SacI-BglII enzyme sites to create a gene-specific silencing construct. We named the resulting binary vector system pKHi and verified its functionality by constructing a vector to silence DIHYDROFLAVONOL 4-REDUCTASE (DFR), transforming it into tobacco plants, and confirming DFR gene-silencing via PCR, RT-qPCR, and analysis of the accumulation of small interfering RNAs. Reduction of anthocyanin biosynthesis was also confirmed by analyzing flower color of the transgenic tobacco plants. This study demonstrates that small interfering RNAs generated through the pKHi vector system can efficiently silence target genes and could be used in developing genetically modified crops.
These studies were carried out to obtain the transformant from carrot cells by using binary vector pGA472 with NPT II gene to confer kanamycin resistance in the plant cells. The binary vector pGA472 was mobilized from E. coli MC1000 into A. tumefaciens strains isolated in the Korea, C23-1. K29-1, and disarmed Ti-plasmid PC2760, and A28l using a tri-parental mating method with E. coli HB101/pRK2013. Transconjugants, C23-1/pGA472, K29-1/pGA472, PC2 760/pGA472 and A28l/pGA472 were obtaind on the minimum AB media containing tetracycline and kanamycin, were comfirmed to hold the Ti-plasmid and pGA472 binary vector on the 0.7% agarose gel. Transformed carrot calli were initiated on the MS media supplemented with l00$\mu\textrm{g}$/ml kanamycin and 250$\mu\textrm{g}$/ml carbenicillin after co-cultivation of carrot explant and transconjugant Agrobacteria. Selected callus was grown vigouousley for subculture on the medium containing 100$\mu\textrm{g}$/ml kanamycin, thus indication that the selected callus was transformed with NPT II gene.
Kim, Hyun A.;Utomo, Setyo Dwi;Kwon, Suk Yoon;Min, Sung Ran;Kim, Jin Seog;Yoo, Han Sang;Choi, Pil Son
Plant Biotechnology Reports
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v.3
no.4
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pp.277-283
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2009
One of the limitations to conducting maize Agrobacterium-mediated transformation using explants of immature zygotic embryos routinely is the availability of the explants. To produce immature embryos routinely and continuously requires a well-equipped greenhouse and laborious artificial pollination. To overcome this limitation, an Agrobacterium-mediated transformation system using explants of type II embryogenic calli was developed. Once the type II embryogenic calli are produced, they can be subcultured and/or proliferated conveniently. The objectives of this study were to demonstrate a stable Agrobacterium-mediated transformation of maize using explants of type II embryonic calli and to evaluate the efficiency of the protocol in order to develop herbicide-resistant maize. The type II embryogenic calli were inoculated with Agrobacterium tumefaciens strain C58C1 carrying binary vector pTF102, and then were subsequently cultured on the following media: co-cultivation medium for 1 day, delay medium for 7 days, selection medium for $4{\times}14$ days, regeneration medium, and finally on germination medium. The T-DNA of the vector carried two cassettes (Ubi promoter-EPSPs ORF-nos and 35S promoter-bar ORF-nos). The EPSPs conferred resistance to glyphosate and bar conferred resistance to phosphinothricin. The confirmation of stable transformation and the efficiency of transformation was based on the resistance to phosphinothricin indicated by the growth of putative transgenic calli on selection medium amended with $4mg\;1^{-1}$ phosphinothricin, northern blot analysis of bar gene, and leaf painting assay for detection of bar gene-based herbicide resistance. Northern blot analysis and leaf painting assay confirmed the expression of bar transgenes in the $R_1$ generation. The average transformation efficiency was 0.60%. Based on northern blot analysis and leaf painting assay, line 31 was selected as an elite line of maize resistant to herbicide.
We have developed a reliable and high-frequency genetic transformation and regeneration system via somatic embryogensis of Eleutherococcus sessiliflorus. Embryogenic callus obtained from seed were co- cultivated with Agrobacterium tumefaciens strain EHA101/pIG121Hm harboring genes for intron-$\beta$-glucoronidase(GUS), kanamycin and hygromycin resistance. Following co-cultivation, two types of samples(fine embrogenic calli and early globular embryo clusters) were cultivated on Murashige and Skoog(MS) medium containing 1 mg/L2.4-D for 3day in dark. Transient expression of GUS gene was found to be higher in the early globular embryo clusters than in the embryogenic calli. Also, co-cultivated period affected expression of GUS gene; the best result was obtained when globular embryo clusters were co-cultivated with Agrobacterium for 3 days. Subsequently, this callus transferred to selective MS medium containing 1mg/L2.4-D, 50mg/L kanamycin or/and 30mg/L hygromycin and 300mg/L cefortaxime. These embryogenic calls were subcultured to the same selection medium at every 2 weeks intervals. Approximately 24.5% of the early globular embryos co-cultivated with Agrobacterium for 3days produced kanamycin or/and hygromycin-resistant calli. Transgenic somatic embryos were converted into plantlets in half strength MS medium supplemented with 3mg/L GA$_3$ kanamycin and were confirmed by GUS histochemical assay and polymerase chain reaction analysis. Genomic Southem blot hybridization confirmed the incorporation of NPT II gene into the host genome.
To prepare evolved PHB depolymerase with increased activity for PHB or P(3HB-co-3HV) compared to the activity of the original PHB depolymerase from Alcaligenes faecalis T1, random mutation of the cloned PHB depolymerase gene was performed by using a DNA shuffling method. A library of mutated PHB depolymerase genes from A. faecalis T1 was fused to the ice nucleation protein (INP) gene from Pseudomonas syringae in pJHCl 1 and approximately 7,000 transformants were isolated. Using M9 minimal medium containing PHB or P(3HB-co-3HV) as the carbon source, mutants showing alteration in PHB depolymerase activity were selected from the transformants. The PHB depolymease activity of the transformants was confirmed by the formation of halo around colony and the turbidity decrease tests using culture supermatants. The catalytic activity of PHB depolymerase of the best mutant II-4 for PHB or P(3HB-co-13 mol% 3HV) was approximately 1.8-fold and 3.2-fold, respectively, higher than that of the original PHB depolymerase. DNA sequence analysis revealed that three amino acid residues (Ala209Val, Leu258Phe, and Asp263Thr) were substituted in II-4. From the mutational analysis, it was presumed that the substitution of amino acids near catalytic triad to more hydrophobic amino acids enhance the catalytic activity of PHB depolymerase from A. faecalis T1.
A practical approach was proposed to produce transgenic chimeric chickens using blastodermal cells (BCs). The chicken BCs were mechanically dissociated and transferred into the recipient eggs that had been exposed to 500 rads irradiation of$^{60}Co$ and windowed on the equatorial plane. Chimeric chickens were generated using two models: the crosses (MXL) from Black Minors (ii,EE,b/b) ♂${\times}$Barred Leghorns (ii,ee,B/-) ♀ as donors and White Leghorns (WL, II) as acceptors (Model 1), or the Black Heifengs (BH, ii,EE,bb) as donors and Hua-xing white (HW, II) as recipients (Model 2). The treated eggs were incubated in their original shells in normal conditions until hatching. Green fluorescent protein (GFP) gene was transferred into the BCs derived from MXL and BH via lipofectamine and the pEGFP-C1, and transfection efficiency into the BCs was examined under a fluorescent microscope. Potential transgenic chimeras were selected based on the proposed methods in this study. Using the fresh BCs, the best rate of phenotypic chimeras was 6.7% and 26.0% in model-1 groups, and model-2 groups, respectively. We also described the optimized conditions for transfection. Although 30% of the BCs transfected in vitro emitted green light under an inverted fluorescent microscope, no embryos injected with the transfected BCs expressed foreign GFP gene at 3-4 days.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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