Thiazolidinediones (TZDs) act as potent activators of the adipose differentiation program in established preadipose cell lines. TZD's have also been investigated in diabetic patients and reported to act as PPAR-${\gamma}$ ligands. In this report, the effects of TZDs on the differentiation pathway of myoblasts have been investigated. C2C12 mouse myoblasts were grown in Dulbecco's Modified Eagles medium for 4-5 days until they reached almost 100% confluency. Post-confluent cells (day 0) were further exposed to adipogenic induction medium along with TZDs for 48 hours. Thereafter, cells were exposed only to TZDs every 48 h until day 10. The control was provided with differentiation medium without any treatment. Alterations in the cells during the differentiation programme were analyzed on the basis of fusion index, oil-red-o staining, adipocyte index, adipocyte stain uptake measurement, immuno-histochemistry and western blotting. Exposure of C2C12 mouse myoblasts to TZDs prevented the expression of myosin heavy chain with parallel increase in the expression of C/EBP-${\alpha}$ and PPAR-${\gamma}$ and acquisition of adipocyte morphology, thus abolishing the formation of multinucleated myotubes. TZDs exert their adipogenic effects only in non-terminally differentiated myoblasts; myotubes were insensitive to the compound. Continuous exposure (at least 4-5 doses) to inducers after the growth arrest was essential to provide a sustained environment to the cells converting to fully matured adipoctyes. The results indicate that TZDs specifically converted the differentiation pathway of myoblasts into that of adipoblasts.
$Ca^{2+}$ influx appears to be important for triggering myoblast fusion. It remains, however, unclear how $Ca^{2+}$ influx rises prior to myoblast fusion. Recently, several studies suggested that NMDA receptors may be involved in $Ca^{2+}$ mobilization of muscle, and that $Ca^{2+}$ influx is mediated by NMDA receptors in C2C12 myoblasts. Here, we report that other types of ionotropic glutamate receptors, non-NMDA receptors (AMPA and KA receptors), are also involved in $Ca^{2+}$ influx in myoblasts. To explore which subtypes of non-NMDA receptors are expressed in C2C12 myogenic cells, RT-PCR was performed, and the results revealed that KA receptor subunits were expressed in both myoblasts and myotubes. However, AMPA receptor was not detected in myoblasts but expressed in myotubes. Using a $Ca^{2+}$ imaging system, $Ca^{2+}$ influx mediated by these receptors was directly measured in a single myoblast cell. Intracellular $Ca^{2+}$ level was increased by KA, but not by AMPA. These results were consistent with RT-PCR data. In addition, KA-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase was completely suppressed by treatment of nifedifine, a L-type $Ca^{2+}$ channel blocker. Furthermore, KA stimulated myoblast fusion in a dose-dependent manner. CNQX inhibited not only KA-induced myoblast fusion but also spontaneous myoblast fusion. Therefore, these results suggest that KA receptors are involved in intracellular $Ca^{2+}$ increase in myoblasts and then may play an important role in myoblast fusion.
Myelophycus caespitosus, a brown alga belonging to genus Myelophycus, has been traditionally used as a food and medicinal resource in Northeastern Asia. However, few studies have been conducted on its pharmacological activity. In this study, we evaluated whether methanol extract of M. caespitosus (MEMC) could protect against oxidative damage caused by hydrogen peroxide (H2O2) in C2C12 murine myoblasts. Our results revealed that MEMC could suppress H2O2-induced growth inhibition and DNA damage while blocking the production of reactive oxygen species. In H2O2-treated cells, cell cycle progression was halted at the G2/M phase, accompanied by changes in expression of key cell cycle regulators. However, these effects were attenuated by MEMC. In addition, we found that MEMC protected cells from induction of apoptosis associated with mitochondrial impairment caused by H2O2 treatment. Furthermore, MEMC enhanced the phosphorylation of nuclear factor-erythroid-2 related factor 2 (Nrf2) and expression and activity of heme oxygenase-1 (HO-1) in H2O2-treaetd C2C12 myoblasts. However, such anti-apoptotic and cytoprotective effects of MEMC were greatly abolished by HO-1 inhibitor, suggesting that MEMC could increase Nrf2-mediated activity of HO-1 to protect C2C12 myoblasts from oxidative stress.
본 연구는 분화 전단계인 C2C12 myoblast세포에 중요한 후천적 기작의 하나인 DNA 히스톤 단백질의 아세틸화를 조절하였을 때 일어나는 변화를 살펴본 결과, 히스톤 탈아세틸화 효소를 trichostatin A로서 억제시키자 C2C12 myoblast 세포가 smooth muscle로 분화하였다. 이는 immunofluorescentstaining을 통해 smooth muscle ${\alpha}-actin$의 발현 증가를 trishostatin A로 처리한 세포에서 관찰하였으며, DAPI 염색을 통해 대조군 세포와 비교하여 세포의 증식이 많이 억제됨을 관찰하였다. 또한 real-time PCR 결과는 smooth muscle ${\alpha}$-actin과 transgelin mRNA의 발현이 trichostatin A 처리군 세포에서 현저히 증가함을 보여주었다. 이러한 결과를 바탕으로 히스톤 단백질의 탈아세틸화 억제는 C2C12 myoblast 세포의 분화에 매우 중요한 역할을 하며, 또한 C2C12 myoblast 세포를 골격근인 다핵의 myotube로 분화시키지 않고, smooth muscle로 분화시킴을 알 수 있었다. 이것은 분명히 HDAC억제제 인 trichostatin A가 DNA 히스톤 단백질의 HDAC 효소에 의한 탈아세틸화를 강력히 억제하고, 이러한 HDAC효소의 억제는 세포주기에 있어서 증식과 분화를 조절하는 유전자들의 발현을 조절하였음을 시사한다. 이를 검증하기 위해 세포주기 조절인자인 p21과 cyclin Dl mRNA의 발현을 조사한 결과 세포를 증식단계로 진행하는데 있어서 필수적인 cdk 억제제인 p21 mRNA의 발현이 trichostatin A로 처리한 세포에서 현저히 증가함을 보였으며, 세포 증식을 유도하는 cyclin Dl mRNA의 발현은 trichostatin A를 처 리 한 후 24시간 후 유의하게 감소함을 보였는데 이는 trichostatin A가 세포증식을 억제하는 초기단계에서 cyclin Dl 유전자의 발현을 조절함을 보여준다. 향후 연구에서는 또 하나의 중요한 후천적 기작인 DNA 메틸화와 히스톤 아세틸화가 유전자 발현을 조절하는데 있어서 상호작용에 대한 연구가 필요할 것으로 생각된다.
Skeletal myogenesis is essential to keep muscle mass and integrity, and impaired myogenesis is closely related to the etiology of muscle wasting. Recently, miR-141-3p has been shown to be induced under various conditions associated with muscle wasting, such as aging, oxidative stress, and mitochondrial dysfunction. However, the functional significance and mechanism of miR-141-3p in myogenic differentiation have not been explored to date. In this study, we investigated the roles of miR-141-3p on CFL2 expression, proliferation, and myogenic differentiation in C2C12 myoblasts. MiR-141-3p appeared to target the 3'UTR of CFL2 directly and suppressed the expression of CFL2, an essential factor for actin filament (F-actin) dynamics. Transfection of miR-141-3p mimic in myoblasts increased F-actin formation and augmented nuclear Yes-associated protein (YAP), a key component of mechanotransduction. Furthermore, miR-141-3p mimic increased myoblast proliferation and promoted cell cycle progression throughout the S and G2/M phases. Consequently, miR-141-3p mimic led to significant suppressions of myogenic factors expression, such as MyoD, MyoG, and MyHC, and hindered the myogenic differentiation of myoblasts. Thus, this study reveals the crucial role of miR-141-3p in myogenic differentiation via CFL2-YAP-mediated mechanotransduction and provides implications of miRNA-mediated myogenic regulation in skeletal muscle homeostasis.
Menadione induced cell death in cultured C2 myoblasts. By screening synthetic peptide libraries composed of random sequence of hexapeptides, we identified the hexa-peptides pool of(Ala/Ile)-(Ile/Met)-Val-Ile-Asp-(Met/Ser)-$NH_2$ that protected the myoblasts against menadioneinduced cell death. Pre-incubation with the hexapeptide pool reduced the number of cells detached from culture dish substrate and increased the ratio of relative viability against menadione. In addition, the peptides strongly increased the expression of Bcl-2, an anti-apoptotic protein. These results suggest that the hexapeptides might enhance the resistance to cell death against menadione by increasing the expression of Bcl-2.
UCP2 and UCP3 are members of the uncoupling protein family, which may play roles in energy homeostasis. In order to determine the regulation of the predominant expression of UCP3 in skeletal muscle, the effects of differentiation and myogenic regulatory factors on the promoter activities of the mouse UCP2 and UCP3 genes were studied. Reporter plasmids, containing approximately 3 kb of the 5'-upstream region of the mouse UCP2 and UCP3 genes, were transfected into C2C12 myoblasts, which were then induced to differentiate. Differentiation positively induced the reporter expression about 20-fold via the UCP3 promoter, but by only 2-fold via the UCP2 promoter. C2C12 myoblasts were cotransfected with expression vectors for myogenin and/or MyoD as well as reporter constructs. The simultaneous expression of myogenin and MyoD caused an additional 20-fold increase in the reporter expression via the UCP3 promoter, but only a weak effect via the UCP2 promoter. In L6 myoblasts, only MyoD activated the UCP3 promoter, but in 3T3-L1 cells neither factor activated the UCP3 promoter, indicating that additional cofactors are required, which are present only in C2C12 myoblasts. The expression of UCP2 and UCP3 is differentially regulated during muscle differentiation due to the different responsiveness of their promoter regions to myogenin and MyoD.
Objectives : In this study, we investigated the synergistic protective effects of medicinal herbal mixture (HME) including Mori Ramulus (MR), Acanthopanacis Cortex (AC), Eucommiae Cortex (EC), and Black soybean (BS) in C2C12 cells, mouse myoblasts. Methods : Effects of HME on cell viability of C2C12 myoblasts were monitored by MTT assay. Anti-atrophic activity of HME was determined in myoblasts and myotubes under oxidative stress by H2O2. C2C12 myoblasts were differentiated into myotubes in a medium containing 2% horse serum for 6 days. After that, we measured that expression of MyoD and myogenine, the myogenic regulatory factors, to identify the mechanism of inhibiting muscle atophy after HME treatment. In addition, suppression of phosphorylation of Akt, FoxO3a and MARF-1, transcription factors of degradation proteins were analyzed via western blotting. Results : As a result of MTT, HME there was no show cytotoxicity up to a concentration of 1 mg/ml. The cytoprotective effects on oxidative stressed myoblast and myotube was better in HME extract than those of MR, AC, EU, and BS, respectively. HME treatment in Myotube induced by oxidative stress after H2O2 treatment increased Myo D, Myogenine activation, and Akt, FoxO3a phosphorylation and decreased expression of MuRF-1. As the results, HME has synergistic effects on protection against proteolysis of C2C12 myotubes through activation of the Akt signaling pathway under oxidative stress. Conclusions : These results suggest that HME may also be useful as a preventing and treating material for skeletal muscle atrophy caused by age-related diseases.
HnRNPK is a multifunctional protein that participates in chromatin remodeling, transcription, RNA splicing, mRNA stability and translation. Here, we uncovered the function of hnRNPK in regulating the proliferation and differentiation of myoblasts. hnRNPK was mutated in the C2C12 myoblast cell line using the CRISPR/Cas9 system. A decreased proliferation rate was observed in hnRNPK-mutated cells, suggesting an impaired proliferation phenotype. Furthermore, increased G2/M phase, decreased S phase and increased sub-G1 phase cells were detected in the hnRNPK-mutated cell lines. The expression analysis of key cell cycle regulators indicated mRNA of Cyclin A2 was significantly increased in the mutant myoblasts compared to the control cells, while Cyclin B1, Cdc25b and Cdc25c were decreased sharply. In addition to the myoblast proliferation defect, the mutant cells exhibited defect in myotube formation. The myotube formation marker, myosin heavy chain (MHC), was decreased sharply in hnRNPK-mutated cells compared to control myoblasts during differentiation. The deficiency in hnRNPK also resulted in the repression of Myog expression, a key myogenic regulator during differentiation. Together, our data demonstrate that hnRNPK is required for myoblast proliferation and differentiation and may be an essential regulator of myoblast function.
MicroRNAs (miRNAs) are highly conserved, short non-coding RNAs that regulate gene expression at the posttranscriptional level. Although many miRNAs are identified in muscles and muscle cells, their individual roles are still not fully understood. In the present study, we investigated a muscle highly-expressed miRNA, miR-127-3p, in C2C12 myoblasts and tissues of goats with different muscle phenotypes (Boer vs Wushan black goats). Our results demonstrated that i) miR-127-3p was extensively expressed in tissues of goats; ii) miR-127-3p was higher expressed in muscle, spleen, heart, and skin in the muscular goats (Boer goats) than the control (Wushan black goats). Then we further characterized the dynamical expression of miR-127-3p, MyoD, MyoG, Myf5, Mef2c, and Myosin in the proliferating and differentiating C2C12 myoblasts at day of 0, 1, 3, 5, and 7 in culture mediums. Especially, we found that miR-127-3p was significantly higher expressed in the proliferating than differentiating cells. Our findings suggest that miR-127-3p probably plays roles in the proliferation and differentiation of myoblasts, which further underlies regulation of muscle phenotype in goats.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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