Homology-specific transcriptional and post-transcriptional silencing, an intrinsic mechanism of gene regulation in most eukaryotes, can be induced by anti-sense, co-suppression, or hairpin-based double-stranded RNA. Hairpin-based RNA interference (RNAi) has been applied to analyze gene function and genetically modify crops. However, RNAi vector construction usually requires high-cost cloning steps and large amounts of time, or involves methods that are protected by intellectual property rights. We describe a more effective method for generating intron-spliced RNAi constructs. To produce intron-spliced hairpin RNA, an RNAi cassette was ligated with the first intron and splicing sequences of the Brassica rapa ssp. pekinensis histone deacetylase 1 gene. This method requires a single ligation of the PCR-amplified target gene to SpeI-NcoI and SacI-BglII enzyme sites to create a gene-specific silencing construct. We named the resulting binary vector system pKHi and verified its functionality by constructing a vector to silence DIHYDROFLAVONOL 4-REDUCTASE (DFR), transforming it into tobacco plants, and confirming DFR gene-silencing via PCR, RT-qPCR, and analysis of the accumulation of small interfering RNAs. Reduction of anthocyanin biosynthesis was also confirmed by analyzing flower color of the transgenic tobacco plants. This study demonstrates that small interfering RNAs generated through the pKHi vector system can efficiently silence target genes and could be used in developing genetically modified crops.
Plants can respond and adapt to cold stress through regulation of gene expression in various biochemical and physiological processes. Cold stress triggers decreased rates of metabolism, modification of cell walls, and loss of membrane function. Hence, this study was conducted to construct coexpression networks for time-based expression pattern analysis of genes related to cold stress in Chinese cabbage (Brassica rapa ssp. pekinensis). B. rapa cold stress networks were constructed with 2,030 nodes, 20,235 edges, and 34 connected components. The analysis suggests that similar genes responding to cold stress may also regulate development of Chinese cabbage. Using this network model, it is surmised that cold tolerance is strongly related to activation of chitinase antifreeze proteins by WRKY transcription factors and salicylic acid signaling, and to regulation of stomatal movement and starch metabolic processes for systemic acquired resistance in Chinese cabbage. Moreover, within 48 h, cold stress triggered transition from vegetative to reproductive phase and meristematic phase transition. In this study, we demonstrated that this network model could be used to precisely predict the functions of cold resistance genes in Chinese cabbage.
This study examined the total glucosinolate (GSL) and isothiocyanate (ITC) contents according to different processing conditions; fresh Kimchi cabbage (Brassica rapa L. ssp. pekinensis), salted Kimchi cabbage and kimchi (storage temperature $4^{\circ}C$ and $20^{\circ}C$) using two different cultivars (Bomatnorang and Chunkwang). Four GSL peaks representing gluconapin, glucobrassicanapin, glucobrassicin and 4-methoxyglucobrassicin were detected in Kimchi cabbage by HPLC and HPLC/MS analysis. The total GSL contents of fresh Kimchi cabbage of Bomatnorang and Chunkwang were $21.37{\pm}1.06{\mu}g/g$ dry weight (DW) and $20.96{\pm}3.33{\mu}g/g$ DW, respectively. After salting, the total GSL contents of salted Kimchi cabbage decreased by 39% and 52% in Bomatnorang and Chunkwang, respectively. Finally, the total GSL contents of kimchi after storage at $20^{\circ}C$ decreased by 83% and 56% in Bomatnorang and Chunkwang, respectively. The extracted ITC contents were analyzed by GC/MS. Three ITC peaks were detected in Kimchi cabbage representing 2-phenylethyl ITC, 3-butenyl ITC and 4-pentenyl ITC. The 2-phenylethyl ITC levels increased during the salting process but this generally fell during storage at $20^{\circ}C$ as kimchi. The 3-butenyl ITC levels of Kimchi cabbage according to processing decreased rapidly due to salting and then decreased slowly during storage as kimchi. The 4-pentenyl ITC of Kimchi cabbage was lost during the salting process. The results for the change in GSL and ITC contents during the kimchi making process will be used in the food industry.
Brassica rape is an important species used as a vegetable, oil, and fodder worldwide. It is related phylogenically to Arabidopsis thaliana, which has already been fully sequenced as a model plant. The 'Multinational Brassica Genome Project (MBGP)'was launched by the international Brassica community with the aim of sequencing the whole genome of B. rapa in 2003 on account of its value and the fact that it has the smallest genome among the diploid Brassica. The genome study was carried out not only to know the structure of genome but also to understand the function and the evolution of the genes comprehensively. There are two mapping populations, over 1,000 molecular markers and a genetic map, 2 BAC libraries, physical map, a 22 cDHA libraries as suitable genomic materials for examining the genome of B. rapa ssp. pekinensis Chinese cabbage. As the first step for whole genome analysis, 220,000 BAC-end sequences of the KBrH and KBrB BAC library are achieved by cooperation of six countries. The results of BAC-end sequence analysis will provide a clue in understanding the structure of the genome of Brassica rapa by analyzing the gene sequence, annotation and abundant repetitive DHA. The second stage involves sequencing of the genetically mapped seed BACs and identifying the overlapping BACs for complete genome sequencing. Currently, the second stage is comprises of process genetic anchoring using communal populations and maps to identify more than 1,000 seed BACs based on a BAC-to-BAC strategy. For the initial sequencing, 629 seed BACs corresponding to the minimum tiling path onto Arabidopsis genome were selected and fully sequenced. These BACs are now anchoring to the genetic map using the development of SSR markers. This information will be useful for identifying near BAC clones with the seed BAC on a genome map. From the BAC sequences, it is revealed that the Brassica rapa genome has extensive triplication of the DNA segment coupled with variable gene losses and rearrangements within the segments. This article introduces the current status and prospective of Korea Brassica Genome Project and the bioinformatics tools possessed in each national team. In the near future, data of the genome will contribute to improving Brassicas for their economic use as well as in understanding the evolutional process.
The objective of this study is to identify cold-tolerance genes in Brassica rapa. In order to acheive this goal, we analyzed a KBGP-24K oligo chip data [BrEMD (B. rapa EST and Microarray Database)] using B. rapa ssp. pekinensis inbred line 'Chiifu' under cold stress condition ($4^{\circ}C$). Among 23,929 unigenes of B. rapa, 417 genes (1.7%) were primarily identified as cold responsive genes that were expressed over 5-fold higher than those of wild type control, and then a gene which has unknown function and has full length sequence was selected. It was named BrCSR (B. rapa Cold Stress Resistance). BrCSR was transformed using expression vector pSL101 to confirm whether BrCSR can enhance cold tolerance in tobacco plants. $T_1$ transgenic tobacco plants expressing BrCSR were selected by PCR and Southern hybridization analyses, and the function of BrCSR was characterized by expression level analysis and phenotype observation under cold stress condition. The expression level of BrCSR in transgenic tobacco plants increased up to about two folds in quantitative real-time RT-PCR assay and this was very similar to Northern blot hybridization analysis. Analysis of phenotypic characteristics clearly elucidated that transgenic tobaccos expressing BrCSR were more cold tolerant than wild type control under $4^{\circ}C$ treatment. Based on these results, we conclude that the over-expression of BrCSR might be closely related to the enhancement of cold tolerance.
Non-heading Chinese cabbage (Brassica rapa L. ssp. chinensis) is a popular vegetable in Asian countries. The diamondback moth (DBM), Plutella xylostella (L.), an insect with worldwide distribution, is a main pest of Brassicaceae crops and causes enormous crop losses. Transfer of the anti-insect gene into the plant genome by transgenic technology and subsequent breeding of insect-resistant varieties will be an effective approach to reducing the damage caused by this pest. We have produced transgenic non-heading Chinese cabbage plants expressing the potato proteinase inhibitor II gene (pinII) and tested the pest resistance of these transgenic plants. Non-heading Chinese cabbages grown for 45 days on which buds had formed were used as experimental materials for Agrobacterium-mediated vacuum infiltration transformation. Forty-one resistant plants were selected from 1166 g of seed harvested from the infiltrated plants based on the resistance of the young seedlings to the herbicide Basta. The transgenic traits were further confirmed by the Chlorophenol red test, PCR, and genomic Southern blotting. The results showed that the bar and pinII genes were co-integrated into the resistant plant genome. A bioassay of insect resistance in the second generation of individual lines of the transgenic plants showed that DBM larvae fed on transgenic leaves were severely stunted and had a higher mortality than those fed on the wild-type leaves.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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