The study was conducted to evaluate the effects of carboxymethyl chitosan (CMC) on proliferation, migration, and lipopolysaccharide (LPS)-induced inflammatory response in canine bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BMSCs). The proliferation and migration of BMSCs were examined after treatment with CMC. The effect of CMC on the mRNA expression of inflammatory cytokines, such as interleukin (IL)-1β, IL-6, tumor necrosis factor (TNF)-α, IL-10, and transforming growth factor (TGF)-β, was also evaluated by reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR). In the proliferation assay, no significant changes were found at all CMC concentrations compared with controls. The migration assay showed that CMC dose-dependently stimulated the migration of BMSCs in normal and LPS-treated conditions. RT-PCR showed that TNF-α and IL-10 expressions were suppressed in the BMSCs after CMC treatment. However, other genes were not affected. Taken together, CMC promoted BMSC migration and inhibited TNF-α and IL-10. Therefore, CMC may be possible to regulate wound healing when mesenchymal stem cells are applied in inflammatory diseases.
With the progress of regenerative medicine, mesenchymal stem cells (MSCs) have received attention as a way to restore ovarian function. It has been reported that MSCs derived from bone marrow, adipose, umbilical cord blood, menstrual blood, and amniotic fluid improved ovarian function. In light of previous studies and advances in this field, there are increased expectations regarding the utilization of MSCs to restore ovarian function. This review summarizes recent research into potential applications of MSCs in women with infertility or primary ovarian insufficiency, including cases where these conditions are induced by anticancer therapy.
Kang, In Sook;Suh, Joowon;Lee, Mi-Ni;Lee, Chaeyoung;Jin, Jing;Lee, Changjin;Yang, Young Il;Jang, Yangsoo;Oh, Goo Taeg
BMB Reports
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v.53
no.2
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pp.118-123
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2020
Cardiac regeneration with adult stem-cell (ASC) therapy is a promising field to address advanced cardiovascular diseases. In addition, extracellular vesicles (EVs) from ASCs have been implicated in acting as paracrine factors to improve cardiac functions in ASC therapy. In our work, we isolated human cardiac mesenchymal stromal cells (h-CMSCs) by means of three-dimensional organ culture (3D culture) during ex vivo expansion of cardiac tissue, to compare the functional efficacy with human bone-marrow derived mesenchymal stem cells (h-BM-MSCs), one of the actively studied ASCs. We characterized the h-CMSCs as CD90low, c-kitnegative, CD105positive phenotype and these cells express NANOG, SOX2, and GATA4. To identify the more effective type of EVs for angiogenesis among the different sources of ASCs, we isolated EVs which were derived from CMSCs with either normoxic or hypoxic condition and BM-MSCs. Our in vitro tube-formation results demonstrated that the angiogenic effects of EVs from hypoxia-treated CMSCs (CMSC-Hpx EVs) were greater than the well-known effects of EVs from BM-MSCs (BM-MSC EVs), and these were even comparable to human vascular endothelial growth factor (hVEGF), a potent angiogenic factor. Therefore, we present here that CD90lowc-kitnegativeCD105positive CMSCs under hypoxic conditions secrete functionally superior EVs for in vitro angiogenesis. Our findings will allow more insights on understanding myocardial repair.
Background and Objectives : Cartilage reconstruction is one of medical issue in otolaryngology. Tissue engineering is presently being utilized in part of cartilage repair. Sources of cells for tissue engineering are chondrocyte from mature cartilage and bone marrow mesenchymal stem cells that are able to differentiate into chondrocyte. Recent studies have shown that adipose tissue have mesenchymal stem cells which can differentiate into adipogenic, chondrogenic myogenic osteogenic cells and neural cell in vitro. In this study, we have examined chondrogenic potential of the canine adipose tissue-derived mesenchymal stem cell(ATSC). Materials and Methods : We harvested canine adipose tissue from inguinal area. ATSCs were enzymatically released from canine adipose tissue. Under appropriate culture conditions, ATSCs were induced to differentiate into the chondrocyte lineages using micromass culture technique. We used immunostain to type II collagen and toluidine blue stain to confirm chondrogenic differentiation of ATSCs. Results : We could isolate ATSCs from canine adipose tissue. ATSCs expressed CD29 and CD44 which are specific surface markers of mesenchymal stem cell. ATSCs differentiated into micromass that has positive response to immunostain of type II collagen and toluidine blue stain. Conclusion : In vitro, ATSCs differentiated into cells that have characteristic cartilage matrix molecules in the presence of lineage-specific induction factors. Adipose tissue may represent an alternative source to bone marrow-derived MSCs.
Bone marrow-derived mesenchymal stem cells (BM-MSC) are a multipotent cell population that can differentiate into neuron-like cells. Previously it has been reported that murine BM-MSC can differentiate into neuron-like cells by co-treatment with a Rho-associated kinase (ROCK) inhibitor -Y27632 and $CoCl_2$. In this study, we compared several ROCK inhibitors for the ability to induce human BM-MSCs to differentiate into neuron-like cells in the presence of $CoCl_2$. Y27632 with high specificity for ROCK at 1-30 ${\mu}M$ was best at inducing neuronal differentiation of MSCs. Compared to HA1077 and H1152, which also effectively induced morphological change into neuron-like cells, Y27632 showed less toxicity even at 100 ${\mu}M$, and resulted in longer multiple branching processes at a wide range of concentrations at 6 h and 72 h post-induction. H89, however, which has less specificity by inhibition of protein kinase A, S6 kinase 1 and MSK1 with similar or greater potency, was less effective at inducing neuronal differentiation of MSCs. Simvastatin, which can inhibit Rho, Ras, and Rac by blocking the synthesis of isoprenoid intermediates, showed little activity for inducing morphological changes of MSCs into neuron-like cells. Accordingly, the expression patterns for neuronal cell markers,including ${\beta}$-tubulin III, neuron-specific enolase, neurofilament, and microtubule-associated protein, were consistent with the pattern of the morphological changes. The data suggest that the ROCK inhibitors with higher specificity are more effective at inducing neuronal differentiation of MSCs.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have been considered an alternative source of neuronal lineage cells, which are difficult to isolate from brain and expand in vitro. Previous studies have reported that MSCs expressing Nestin ($Nestin^+$ MSCs), a neuronal stem/progenitor cell marker, exhibit increased transcriptional levels of neural development-related genes, indicating that $Nestin^+$ MSCs may exert potential with neurogenic differentiation. Accordingly, we investigated the effects of the presence of $Nestin^+$ MSCs in bone-marrow-derived primary cells (BMPCs) on enhanced neurogenic differentiation of BMPCs by identifying the presence of $Nestin^+$ MSCs in uncultured and cultured BMPCs. The percentage of $Nestin^+$ MSCs in BMPCs was measured per passage by double staining with Nestin and CD90, an MSC marker. The efficiency of neurogenic differentiation was compared among passages, revealing the highest and lowest yields of $Nestin^+$ MSCs. The presence of $Nestin^+$ MSCs was identified in BMPCs before in vitro culture, and the highest and lowest percentages of $Nestin^+$ MSCs in BMPCs was observed at the third (P3) and fifth passages (P5). Moreover, significantly the higher efficiency of differentiation into neurons, oligodendrocyte precursor cells and astrocytes was detected in BMPCs at P3, compared with P5. In conclusion, these results demonstrate that neurogenic differentiation can be enhanced by increasing the proportion of $Nestin^+$ MSCs in cultured BMPCs.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have ability to differentiate into multi-lineage cells, which confer a great promise for regenerative medicine to the cells. The aim of this study was to establish a method for isolation and characterization of adipose tissue-derived MSC (pAD-MSC) and bone marrow-derived MSC (pBM-MSC) in pigs. Isolated cells from all tissues were positive for CD29, CD44, CD90 and CD105, but negative for hematopoietic stem cell associated markers, CD45. In addition, the cells expressed the transcription factors, such as Oct4, Sox2, and Nanog by RT-PCR. pAD-MSC and pBM-MSC at early passage successfully differentiated into chondrocytes, osteocytes and adipocytes. Collectively, pig AD-MSC and BM-MSC with multipotency were optimized in our study.
Aim of the study: An alternative source of adult stem cells that could be obtained in large quantities, under local anesthesia, with minimal discomfort would be advantageous. Adipose tissue could be processed to obtain a fibroblast-like population of cells or adipose tissue-derived stromal cells (ATSCs). This study was performed to confirm the availability of ATSCs in bone tissue engineering. Materials amp; Methods: In this study, adipose tissue-derived mesenchymal stem cell was extracted from the liposuctioned abdominal fat of 24-old human and cultivated, and the stem cell surface markers of CD 105 and SCF-R were confirmed by immunofluorescent staining. The proliferation of bone marrow mesenchymal stem cell and ATSCs were compared, and evaluated the osteogenic differentiation of ATSCs in a specific osteogenic induction medium. Osteogenic differentiation was assessed by von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific BMP-2, ALP, Cbfa-1, Osteopontin and osteocalcin were confirmed by RT-PCR. With differentiation of ATSCs, calcium concentration was assayed, and osteocalcin was evaluated by ELISA (Enzyme-linked immunosorbant assay). The bone formation by 5-week implantation of HA/TCP block loaded with bone marrow mesenchymal stem cells and ATSCs in the subcutaneous pocket of nude mouse was evaluated by histologic analysis. Results: ATSCs incubated in the osteogenic medium were stained positively for von Kossa and alkaline phosphatase staining. Expression of osteocyte specific genes was also detected. ATSCs could be easily identified through fluorescence microscopy, and bone formation in vivo was confirmed by using ATSC-loaded HA/TCP scaffold. Conclusions: The present results show that ATSCs have an ability to differentiate into osteoblasts and formed bone in vitro and in vivo. So ATSCs may be an ideal source for further experiments on stem cell biology and bone tissue engineering.
Tumor necrosis $factor-{\alpha}\;(TNF-{\alpha})$ has been implicated in skeletal diseases by promoting bone loss in inflammatory bone diseases. In the present study, we examined the effects of $TNF-{\alpha}$ on osteoblastic differentiation of human bone marrow-derived mesenchymal stem cells (hBMSCs). $TNF-{\alpha}$ dose-dependently promoted matrix mineralization of hBMSCs with a maximal stimulation at 2ng/ml. $TNF-{\alpha}$ increased expression of alkaline phosphatase, which plays a crucial role for the matrix deposition. The $TNF-{\alpha}-stimulated$ osteoblastic differentiation was not affected by $NF_kB$ inhibitors, BAY and SN50. However, a JNK-specific inhibitor, SP600125 completely abolished the $TNF-{\alpha}-stimulated$ matrix mineralization and expression of alkaline phosphatase. These results suggest that $TNF-{\alpha}$ enhances osteoblastic differentiation of hBMSCs through JNK-dependent pathway.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have been widely used as cellular therapeutic agents. They have their own characteristic stemness, and thus, they can be used in the treatment of many chronic diseases and in anticancer therapy. MSC therapy has many advantages over chemical therapy. MSC therapy is based on self or homogeneous origin; as such, it is expected to be effective in the treatment of various diseases. In addition, microRNAs in particular have been studied for their structure and function, and they are also expected to prove effective for use as therapeutic agents in cancer or chronic diseases. MicroRNAs are largely associated with metabolism and homeostasis. Therefore, over- or under-expression of microRNAs leads to chronic diseases. Conversely, effective control of the expression of specific microRNAs reduces the risk of many chronic diseases. However, there have been no reports thus far on the synergistic effects of MSCs and microRNAs. Therefore, in this study, we examined the relationship between MSCs and microRNAs using placenta-derived MSCs (PDSCs), bone marrow-derived MSCs (BM-MSCs), and fibroblast (WI-38) cells. We studied the expression of some microRNAs in MSCs and compared the expression in each cell line and cell passage. As a result, we found that the expression of microRNA-34a was higher in PDSCs than in BM-MSCs and that the expression of microRNA-27a, 33a, 33b, and 211 was higher in BM-MSCs than in PDSCs. Therefore, we expect that each MSC line will be used as cell therapy, considering its expressed functional microRNA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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