Our group had isolated Bifidobacterium breve strain BS2-PB3 from human breast milk. In this study, we sequenced the whole genome of B. breve BS2-PB3, and with a focus on its safety profile, various probiotic characteristics (presence of antibiotic resistance genes, virulence factors, and mobile elements) were then determined through bioinformatic analyses. The antibiotic resistance profile of B. breve BS2-PB3 was also evaluated. The whole genome of B. breve BS2-PB3 consisted of 2,268,931 base pairs with a G-C content of 58.89% and 2,108 coding regions. The average nucleotide identity and whole-genome phylogenetic analyses supported the classification of B. breve BS2-PB3. According to our in silico assessment, B. breve BS2-PB3 possesses antioxidant and immunomodulation properties in addition to various genes related to the probiotic properties of heat, cold, and acid stress, bile tolerance, and adhesion. Antibiotic susceptibility was evaluated using the Kirby-Bauer disk-diffusion test, in which the minimum inhibitory concentrations for selected antibiotics were subsequently tested using the Epsilometer test. B. breve BS2-PB3 only exhibited selected resistance phenotypes, i.e., to mupirocin (minimum inhibitory concentration/MIC >1,024 ㎍/ml), sulfamethoxazole (MIC>1,024 ㎍/ml), and oxacillin (MIC >3 ㎍/ml). The resistance genes against those antibiotics, i.e., ileS, mupB, sul4, mecC and ramA, were detected within its genome as well. While no virulence factor was detected, four insertion sequences were identified within the genome but were located away from the identified antibiotic resistance genes. In conclusion, B. breve BS2-PB3 demonstrated a sufficient safety profile, making it a promising candidate for further development as a potential functional food.
The purpose of this study was to investigate probiotic characteristics and immune enhancing effects of Bifidobacterium (B.) longum KBB1-26 and BIF-4, B. breve KBB5-22 isolated from human intestine for probiotic use in humans and animals. We measured acid, bile and heat tolerance, antimicrobial activity against pathogenic bacteria, Escherichia (E.) coli, Salmonella (S.) Enteritidis, Staphylococcus (S.) aureus, and Listeria (L.) monocytogenes. Immune enhancing effects of B. longum and B. breve were investigated by measuring nitric oxide (NO), nuclear factor ($NF-{\kappa}b$), $interleukin-1{\beta}$ ($IL-1{\beta}$), interleukin-6 (IL-6), interleukin-12 (IL-12) and tumor necrosis $factor-{\alpha}$ ($TNF-{\alpha}$) in RAW 264.7 cells or RAW BLUE cells. B. longum KBB1-26 was survived at pH 2.0. B. longum KBB1-26 and BIF-4, B. breve KBB5-22 also showed tolerance to 0.3% of oxgall bile salt. B. longum KBB1-26 was able to survive at $70^{\circ}C$ and $80^{\circ}C$ for 20 min. KBB1-26 showed the antimicrobial inhibition zone to pathogenic bacteria such as E. coli (12 mm), S. Enteritidis (14 mm), S. aureus (14 mm) and L. monocytogenes (41 mm). The production of NO ($4.5{\pm}0.00{\mu}M/mL$) and $IL-1{\beta}$ ($39.7{\pm}0.55pg/mL$) of KBB1-26 significantly higher than BIF-4 and KBB5-22, respectively. In addition, KBB1-26 and KBB5-22 induce the production of high level of $TNF-{\alpha}$ and IL-6 in macrophages. Collectively, B. longum KBB1-26 have acid, bile, heat tolerance, antimicrobial activity and immune enhancing effects. These results suggest that KBB1-26 can be used as probiotics for humans and animals.
Sodium alginate was used to immobilize Bifidobacterium breve ATCC 15700 cells. The ability of the Ca-alginate beads to protect the B. breve ATCC 15700 was evaluated under different conditions including alginate concentration, bead size, pH, hydrogen peroxide, and storage period. The survival of the B. Breve ATCC 15700 was estimated in pasteurized yogurt, containing either the immobilized or free cells, throughout the storage period. The survival cells in bead after exposure to acidic solution (pH 3.0) increased with increase of both the alginate gel concentration and bead size. Also, immobilized cells in alginate bead were more resistant than the free cells to hydrogen peroxide, storage period, and the environment inside yogur. When retreated beads with skim milk and nonretreated beads were tested in acidified pH 3.0 TPY media including acetic and lactic acid, the number of viable cells in the retreated bead was approximately 10-fold higher than that of nonretreated beads. This suggests that the skim milk operated as a material decreasing the diffusion of acid and hydrogen perosicde into alginate gels. From this research, it was found that yogurt itself supported immobilized cells with an improved protection from the extreme acidity in yogurt.
The intake of probiotic lactic acid bacteria not only promotes digestion through the microbiome regulated host intestinal metabolism but also improves diseases such as irritable bowel syndrome and inflammatory bowel disease, and suppresses pathogenic harmful bacteria. This investigation aimed to evaluate the immunomodulatory effects in intestinal epithelial cells and to study the clinical efficacy of the selected the Bifidobacterium breve and Bifidobacterium longum groups. The physiological and biochemical properties were characterized, and immunomodulatory activity was measured against pathogenic bacteria. In order to find out the mechanism of inflammatory action of the eight viable and sonicated Bifidobacterium spp., we tried to confirm the changes in the pro-inflammatory cytokines (TNF-α, interleukin (IL)-6, IL-12) and anti-inflammatory cytokine (IL-10), and chemokines, (monocyte chemoattractant protein-1, IL-8) and inflammatory enzymatic mediator (nitric oxide) against Enterococcus faecalis ATCC 29212 infection in Caco-2 cells and RAW 264.7 cells. The clinical efficacy of the selected B. breve and B. longum group was studied as a probiotic adjuvant for acute diarrhea in children by oral administration. The results showed significant immunomodulatory effects on the expression levels of TNF-α, IL-6, IL-12, MCP-1, IL-8 and NO, in sonicated Bifidobacterium extracts and viable bifidobacteria. Moreover, each of the Bifidobacterium strains was found to react more specifically to different cytokines. However, treatment with sonicated Bifidobacterium extracts showed a more significant effect compared to treatment with the viable bacteria. We suggest that probiotics functions should be subdivided according to individual characteristics, and that personalized probiotics should be designed to address individual applications.
Song Yoon-Seok;Kang Seong-Woo;Oh Deok-kun;Rho Yong-Taik;Hong Suk-In;Kim Seung-Wook
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.10
no.4
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pp.357-361
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2005
The bioconversion of linoleic acid (LA) to conjugated linoleic acid (CLA) was investigated to examine LA-adaptation of Bifidobacterium breve KCTC 3461 to additions of 1 to 5 mg/mL of LA overtime. To induce LA-adaptation, B. breve KCTC 3461 was treated with LA, according to three schemes. For LA-adapted B. breve the maximum concentration of CLA, $300\~350{\mu}g/mL$, was obtained in cys-MRS medium containing 1 mg/mL of LA. The CLA production significantly increased with increasing LA concentration, from 1 to 4 mg/mL, but the conversion of LA to CLA gradually decreased. The CLA production capability of B. breve, and its tolerance, improved significantly with LA-adaptation. The addition of LA (1 mg/mL) into the culture broth after 24 h of cultivation in a 100-mL media bottle was most effective at promoting CLA production. In a 2.5-L stirred-tank bioreactor, the observed conversion and productivity of $56.6\%\;and\;35.4{\mu}gmL^{-1}h^{-1}$, respectively, by LA-adapted B. breve were approximately 6.6 and 9.8 times higher than those of LA-unadapted B. breve.
The effects of pH and L-cysteine HCI on the growth and stability of Biofidobacterium breve were studied. Significantly higher population was obtained by culturing at pH $6.0{\sim}6.5$ than at any other pH. The cultures that had been grown at pH $5.5{\sim}6.0$ were more stable during storage than those grown at other pH. The number of B. breve that had been grown at pH 5.5 and 6.0 remained as $2.4{\times}10^6ml/\;and\;1.4{\times}10^6ml,$ respectively, after 25 days of storage at $4^{\circ}C$. The ${\beta}$-galactosidase activity of B. breve grown at pH 5.5 and 6.0 was reduced only to $78{\sim}85%$ of the control after the same storage condition, whereas the culture grown at pH 7.0 exhibited a signficant decline in population and ${\beta}$-galactosidase activity during $4^{\circ}C$. The growth of B. breve was promoted by 0.05% L-cysteine HCI, and cells grown in MRS with $0.05{\sim}0.10%$ L-cysteine HCI were more resistant to hydrogen peroxide. With respect to the effect to the effect of osmoprotectants on the survival of B. breve subjected to freeze-drying, addition of 2 mM betaine of 2 mM trehalose increased the growth rate of cells grown under osmotic stress and also made the organism more osmotolerant. Furthermore, the betaine or trehalose increased the survivability of the cells after freeze-drying.
The inhibitory activity of fifty Bifidobacteria toward the infectivity of a rotavirus, which is the predominant cause of sporadic diarrhea in infants and young children, was investigated, and Bifidobacterium breve K-110 was found to have the most potent inhibitory activity. Accordingly, the rotavirus infection-inhibitory protein was purified, and its molecular weight was determined to be 76 kDa by SDS-PAGE. It was heat-labile and its 50% inhibitory concentration ($IC_{50}$) was 0.045 $\mu g/ml$.
The growth of Bifidobacterium breve strain HP2 was completely inhibited by the addition of lactate higher than 4.0% but not by the addition of acetate. Two kinds of lactate-tolerant mutants were isolated by the nitrosoguanidine treatment, enrichment on a liquid medium with 5% lactate, and selection on agar plates with 5% lactate. The mutants were not only able to grow in the presence of 5% lactate but also improved in viable cell stability in the acidic pH range. In a pH-controlled fermentor, mutant N-1-5 grew at a rate slower than that of the wild type but its growth yield was higher. Notably, mutants were more halotolerant and more osmotolerant than the wild type and they were able to grow in the presence of 3% NaCl or 25% lactose at which the wild type entirely stopped the growth. The enzyme activities involved in the lactose metabolism in B. breve were measured to elucidate the biochemical basis for lactate tolerance. In the mutants, activities of several enzymes including phosphoglucomutase decreased compared to the wild-type, which may explain their lower growth rate. However, the activity of lactate dehydrogenase or its nature of inhibition by lactate was not altered.
In this paper, a rapid and reliable gene-targeted species-specific polymerase chain reaction (PCR) technique based on a two-step process was established to identify bifidobacteria in dairy products. The first step was the PCR assay for genus Bifidobacterium with genus specific primers followed by the second step, which identified the species level with species-specific primer mixtures. Ten specific primer pairs, designed from nucleotide sequences of the 16-23S rRNA region, were developed for the Bifidobacterium species including B. angulatum, B. animalis, B. bifidum, B. breve, B. catenulatum, B. infantis, B. longum, B. minimum, B. subtile, and B. thermophilum. This technique was applied to the identification of Bifidobacterium species isolated from 6 probiotic products, and four different Bifidobacterium spp. (B. bifidum, B. longum, B. infantis, and B. breve) were identified. The findings indicated that the 16S-23S rDNA gene-targeted species-specific PCR technique is a simple and reliable method for identification of bifidobacteria in probiotic products. PCR combined with Denaturing Gradient Gel Electrophoresis (DGGE) for identification of the bifidobacteria was also evaluated and compared with the gene-targeted species-specific technique. Results indicated that for fermented milk products consistency was found for both species-specific PCR and PCR-DGGE in detecting species. However, in some lyophilized products, the bands corresponding to these species were not visualized in the DGGE profile but the specific PCR gave a positive result.
Lee, Sin Ji;Bose, Shambhunath;Lee, Su-Jin;Jeong, Ji-Eun;Koo, Byung-Soo;Kim, Dong-Il;Kim, Hojun
Journal of Korean Medicine for Obesity Research
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v.13
no.2
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pp.74-83
/
2013
Objectives: This study was performed to evaluate the effects of fermented lotus extracts on the inhibition of differentiation in 3T3-L1 preadipocytes. Methods: Extracts of lotus leaf and lotus root were fermented using 4 different probiotics separately, including Lactobacillus plantarum, Lactobacillus rhamnosus, Bifidobacterium breve, and Bifidobacterium longum. Inhibition of preadipocyte differentiation was examined by Oil red O dye staining. Expressions of adipogenic transcription factors including CCAAT/enhancer binding proteins (C/$EBP{\alpha}$) and peroxisome proliferators-activated receptor ${\gamma}$ ($PPAR{\gamma}$) were analyzed by real time polymerase chain reaction and Western blotting analysis. Results: Fermented lotus extracts inhibited adipogenic transcription factors by inhibiting preadipocytes differentiation. All of the groups fermented by 4 kinds of probiotics showed reduction in Oil Red O dye staining. Bifidobacterium breve showed the most effective inhibition of C/$EBP{\alpha}$. Bifidobacterium breve and Bifidobacterium longum showed the best downregulation of $PPAR{\gamma}$ expressions compared with the control and the unfermented lotus group. Conclusions: Fermented lotus extracts showed significant effects on inhibition of preadipocyte differentiation in 3T3-L1 preadipocytes showing correlation with insulin sensitivity and lipid metabolism related with obesity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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