Porcine circovirus type 2 (PCV2) is the causative agent of postweaning multisystemic wasting syndrome (PMWS) in pigs. Replicase (Rep) proteins are considered essential for viral replication. Capsid (Cap) protein is the primary immunogenic protein that induces protective immunity. Little is known about comparison on the immunogenicity of PCV2 Rep and Cap fusion protein and Cap protein. In the present study, recombinant baculoviruses expressing the Rep-Cap fusion protein (Bac-Rep-Cap) and the Cap protein (Bac-Cap) of PCV2 were constructed and confirmed with western blot and indirect fluorescence assay. Immunogenicities of the two recombinant proteins were tested in mice. The titers of antibodies were determined with a PCV2-specific enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) and a serum neutralization assay. The $IFN-{\gamma}$ response of immunized mice was measured by ELISA. The mice immunized with the Bac-Rep-Cap and Bac-Cap successfully produced Cap-specific immunoreaction. The mice immunized with the Bac-Cap developed higher PCV2-specific neutralizing antibody titers than mice injected with the Bac-Rep-Cap. $IFN-{\gamma}$ in the Bac-Rep-Cap group was increased compared to those in the Bac-Cap group. Vaccination of mice with the Bac-Rep-Cap showed significantly decreased protective efficacy compared to the Bac-Cap. Our findings will indubitably not only lead to a better understanding of the immunogenicity of PCV2, but also improved vaccines.
Chun, Jungmin;Cho, Yeondong;Park, Ki Hoon;Choi, Hanul;Cho, Hansam;Lee, Hee-Jung;Jang, Hyun;Kim, Kyung Hyun;Oh, Yu-Kyoung;Kim, Young Bong
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.5
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pp.813-819
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2019
Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) induces severe respiratory impairment with a reported mortality rate of ~36% in humans. The absence of clinically available MERS-CoV vaccines and treatments to date has resulted in uncontrolled incidence and propagation of the virus. In vaccine design, fusion with the IgG Fc domain is reported to increase the immunogenicity of various vaccine antigens. However, limited reports have documented the potential negative effects of Fc fusion on vaccine antigens. To determine whether Fc fusion affects the immunogenicity of MERS-CoV antigen, we constructed a Fcassociated MERS-CoV spike protein (eS770-Fc, 110 kDa), whereby human IgG4 Fc domain was fused to MERS-CoV spike protein (eS770) via a Gly/Pro linker using baculovirus as the expression system. For comparative analyses, two eS770 proteins lacking the IgG4 Fc domain were generated using the IdeS protease ($eS770-{\Delta}Fc$) or His tag attachment (eS770-His) and the immunogenicity of the above constructs were examined following intramuscular immunization in mice. Contrary to expectations, non-Fc spike proteins ($eS770-{\Delta}Fc$, eS770-His; 90 kDa) showed higher immunogenicity than the Fc fusion protein (eS770-Fc). Moreover, unlike non-Fc spike proteins, eS770-Fc immunization did not elicit neutralizing antibodies against MERS-CoV. The lower immunogenicity of Fc-fused eS770 was related to alterations in the structural conformation of the spike protein. Taken together, our results indicate that IgG Fc fusion reduces the immunogenicity of eS770 by interfering with the proper folding structure.
Kim, Yonggyun;Kim, Gilho;Ahmed, Shabbir;Roy, Miltan Chandra;Choi, Dooyeol
Korean journal of applied entomology
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v.59
no.4
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pp.451-454
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2020
Sericulture is a main insect industry in Sangju (Kyungpook, Korea). This study reports an occurrence of a viral disease in the sericulture farms in 2020. More than 20% silkworm larvae (Bombyx mori) suffered diarrhea and melted tissues with pathogenic lethality at 4th or 5th instars. PCR diagnosis showed a positive response against B. mori nucleopolyhedrosis virus (BmNPV) infection. Tissue extract of the infected larvae was applied to healthy larvae by a leaf-dipping method and exhibited the same viral symptoms. The viral extract was used to be overlaid on Sf9 cells. The infected Sf9 cells showed polyhedra in the cytoplasm. These results indicate that the silkworm larvae reared in the sericulture farms in Sangju were infected with BmNPV.
Objective: Caspase-mediated apoptosis plays a crucial role in the regulation of endometrial and placental function in females. Caspase activity is tightly controlled by members of the inhibitors of apoptosis proteins (IAPs) family. However, the expression and regulation of IAPs at the maternal-conceptus interface has not been studied in pigs. Therefore, we determined the expression of IAP family members baculovirus IAP repeat-containing 1 (BIRC1) to BIRC6 at the maternal-conceptus interface in pigs. Methods: We obtained endometrial tissues from pigs at various stages of the estrous cycle and pregnancy, conceptus tissues during early pregnancy, and chorioallantoic tissues during mid- to late pregnancy and analyzed the expression of IAPs. Furthermore, we determined the effects of the steroid hormones estradiol-17β (E2) and progesterone on the expression of IAPs in endometrial explant tissue cultures. Results: During the estrous cycle, BIRC2 and BIRC5 expression varied cyclically, and during pregnancy, endometrial BIRC1, BIRC2, BIRC3, BIRC4, and BIRC5 expression varied in a stage-specific manner. Conceptus and chorioallantoic tissues also expressed IAPs during pregnancy. The BIRC2 and BIR3 mRNAs were localized to luminal epithelial cells, and BIRC4 proteins to glandular epithelial cells in the endometrium. Exposure of endometrial tissues to E2 increased the expression of BIRC6, while progesterone increased the expression of BIRC1, BIRC4, and BIRC6 in a dose-dependent manner. Conclusion: These results indicated that IAPs were expressed in the endometrium during the estrous cycle and at the maternal-conceptus interface during pregnancy in a stage-specific manner. In addition, steroid hormones were found to be responsible for the expression of some IAPs in pigs. Together, the results suggested that IAPs may play important roles in endometrial and placental functions by regulating caspase action and apoptosis at the maternal-conceptus interface.
In order to obtain high-level production of recombinant human thrombopoietin (rhTPO) in insect cell line, HTI-TN-5B1-4 (TN5), conditions for optimal rhTPO expression such as multiplicity of infection (MOI), the cell density at infection, harvesting time and type of culture method as well as growth media were determined. When TN5 cells were cultured as anchorage-dependent state in 60-mm dish, cell density $2\times^6$ cells,MOI of 10 and Garvesting the culture media at 72 hr post-infection wrere the cinditions for highest rh TPO production. High production of rhTPO was also achieved by using EXPRESS FIVE serum free media rather than SF900II serum free media-1. Anchorage-dependent TN5 cells were adapted as a suspension culture when they were grown in the presence of heparin. TN5 cells were successfully cultured at 0.2 L scale in suspension culture without having aggregation. When TN5 cells were cultured as suspension state, cell density of $0.6\times10^6$ cells/mL, MOI of 1 and harvesting the culture media at 72 hr post-infection, gave the highest yield of rhTPO.
Expression of the baculovirus major envelope glycoprotein gene(gp64) is regulated by transcription from botha early and late promoters. To develop a transient expression vector under the control of gp64 gene promoter, the gp64 gene of Bombyx mori nucleopolyhedrovirus-K1(BmNPV-K1) was characterized. The gp64 gene was local-ized at EcoR I-Pst I 7.38-kb fragment of the BmNPV-K1 genome. The EcorR 1-Pst I 7.38-kb fragment was cloned and the nucleotide sequence of 2,277 bases including the coding region of gp64 gene was determined. Based on these results, transient expression vector using gp64 gene promoter was constructed and named as pBm64. E.coli lacZ gene was introduced onto pBm64 as a reporter gene and expressed transiently in B. mori 5(Bm 5) cells. The expression vector transfected into the cells was maintained stably for 1 to 5 days. In order to confirm the expression of the reporter gene by gp64 promoter, recombinant virus was constructed. The recombinant virus has two independent transcription units in opposite orientations with two promoters; gp64 and polyhedrin gene promoters each initiating transcription of $\beta$-galactosidase and polyhedrin, respectively. Polyhedra formation and expression of $\beta$-galactosidase in Bm5 cells infected with the recombinant virus were observed with phase contrast microscope and in situ staining.
Polydnaviruses (PDVs) are a group of double-stranded DNA viruses symbiotic to some endoparasitoid wasps. Cotesia plutellae bracovirus (CpBV) is a PDV symbiotic to an endoparasitoid wasp, C. plutellae, parasitizing young larvae of Plutella xylostella. An early expressed gene, CpBV-ELP1, plays an important role in the parasitism by suppressing host cellular immunity by its cytotoxic activity against hemocytes. This study aimed to test its oral toxicity against insect pest by expressing it in a recombinant tobacco plant. A recombinant CpBV-ELP1 protein was produced using a baculovirus expression system and secreted to cell culture medium. The cell cultured media were used to purify CpBV-ELP1 by a sequential array of purification steps: ammonium sulfate fractionation, size exclusion chromatography, and ion exchange chromatography. Purified rCpBV-ELP1 exhibited a significant cytotoxicity against Spodoptera exigua hemocytes. CpBV-ELP1 was highly toxic to the fifth instar larvae of S. exigua by injection to hemocoel. It also showed a significant oral toxicity to fifth instar larvae of S. exigua by a leaf-dipping assay. CpBV-ELP1 was cloned into pBI121 vector under CaMV 35S promoter with opaline synthase terminator. Resulting recombinant vector (pBI121-ELP1) was used to transform Agrobacterium tumefaciens LBA4404. The recombinant bacteria were then used to induce callus of a tobacco (Nicotiana tabacum Xanthi) leaves and subsequent generation (T1) plants were selected. T1 generation tobacco plants expressing CpBV-ELP1 gave significant insecticidal activities against S. exigua larvae. These results suggest that CpBV-ELP1 gene can be used to control insect pests by constructing transgenic crops.
Kim, Yonggyun;Kumar, Sunil;Cheon, Wonsu;Eo, Hyunji;Kwon, Hyeok;Jeon, Yongho;Jung, Jinboo;Kim, Wook
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.59
no.1
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pp.31-36
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2016
Chlorine dioxide has been used for a disinfectant by exhibiting antimicrobial activity and is also potent to kill insect pests infesting stored grains. This study aimed to extend the usefulness of chlorine dioxide with respect to anticancer and antiviral activities. Cytotoxicity of chlorine dioxide was assessed against five different human cancer cell lines. Chlorine dioxide exhibited significant cytotoxicity against two breast cancer cell lines (MCF-7, MDA-MB-231) and three colorectal cancer cell lines (LoVo, HCT-116, SW-480). This cytotoxicity appeared to be associated with the capacity of chlorine dioxide to induce the production of reactive oxygen species (ROS). Compared to control insect cell lines, the cancer cell lines possessed much higher levels of ROS. On the other hand, a treatment of an antioxidant, vitamin E, significantly reduced the cytotoxicity, suggesting that the cytotoxicity was induced by high levels of ROS production. Chlorine dioxide exhibited antiviral activity against different viruses. A baculovirus, Autographa californica nuclear polyhedrosis virus (AcNPV), is a dsDNA insect virus and lost its viral activity to form polyhedral viral particles in response to chlorine dioxide. The antiviral activity against AcNPV was dependent on the incubation time with chlorine dioxide. Tobacco mosaic virus is a ssRNA plant virus and was reduced in its population after exposure to chlorine dioxide along with significant decrease of viral symptoms. These results indicate that chlorine dioxide possesses anticancer and antiviral activities probably due to its inducing activity of ROS production.
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