16S rRNA short amplicon sequencing-based microbiota profiling has been thought of and suggested as a feasible method to assess food safety. However, even if a comprehensive microbial information can be obtained by microbiota profiling, it would not be necessarily sufficient for all circumstances. To prove this, the feasibility of the most widely used V3-V4 amplicon sequencing method for food safety assessment was examined here. We designed a pathogen (Vibrio parahaemolyticus) contamination and/or V. parahaemolyticus-specific phage treatment model of raw oysters under improper storage temperature and monitored their microbial structure changes. The samples stored at refrigerator temperature (negative control, NC) and those that were stored at room temperature without any treatment (no treatment, NT) were included as control groups. The profiling results revealed that no statistical difference exists between the NT group and the pathogen spiked- and/or phage treated-groups even when the bacterial composition was compared at the possible lowest-rank taxa, family/genus level. In the beta-diversity analysis, all the samples except the NC group formed one distinct cluster. Notably, the samples with pathogen and/or phage addition did not form each cluster even though the enumerated number of V. parahaemolyticus in those samples were extremely different. These discrepant results indicate that the feasibility of 16S rRNA short amplicon sequencing should not be overgeneralized in microbiological safety assessment of food samples, such as raw oyster.
Studies based on microbial community analyses have increased in the recent decade since the development of next generation sequencing technology. Associations of gut microbiota with host's health are one of the major outcomes of microbial ecology filed. The major approach for microbial community analysis includes the sequencing of variable regions of 16S rRNA genes, which does not provide the information of bacterial activities. Here, we conducted RNA-based microbial community analysis and compared results obtained from DNA- and its cDNA-based microbial community analyses. Our results indicated that these two approaches differed in the ratio of Firmicutes and Bacteroidetes, known as an obesity indicator, as well as abundance of some key bacteria in gut metabolisms such as butyrate producers and probiotics strains. Therefore, cDNA-based microbial community may provide different insights regarding roles of gut microbiota compared to the previous studies where DNA-based microbial community analyses were performed.
Wang, Siran;Li, Junfeng;Zhao, Jie;Dong, Zhihao;Shao, Tao
Animal Bioscience
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v.35
no.8
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pp.1162-1173
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2022
Objective: This study aimed to investigate the fermentation profiles, bacterial community and predicted metabolic characteristics of Sudangrass (Sorghum sudanense Stapf.) during ensiling. Methods: First-cutting Sudangrass was harvested at the vegetative stage and ensiled in laboratory-scale silos (1 L capacity). Triplicate silos were sampled after 1, 3, 7, 15, 30, and 60 days of ensiling, respectively. The bacterial communities on day 3 and 60 were assessed through high-throughput sequencing technology, and 16S rRNA-gene predicted functional profiles were analyzed according to the Kyoto encyclopedia of genes and genomes using Tax4Fun. Results: The Sudangrass silages showed good fermentation quality, indicated by higher lactic acid contents, and lower pH, butyric acid and ammonia nitrogen contents. The dominant genus Lactococcus on day 3 was replaced by Lactobacillus on day 60. The metabolism of amino acid, energy, cofactors and vitamins was restricted, and metabolism of nucleotide and carbohydrate was promoted after ensiling. The 1-phosphofructokinase and pyruvate kinase of bacterial community seemed to play important roles in stimulating the lactic acid fermentation, and the promotion of arginine deiminase could help lactic acid bacteria to tolerate the acidic environment. Conclusion: High-throughput sequencing technology combined with 16S rRNA gene-predicted functional analyses revealed the differences during the early and late stages of Sudangrass ensiling not only for distinct bacterial community but also for specific functional metabolites. The results could provide a comprehensive insight into bacterial community and metabolic characteristics to further improve the silage quality.
Process surveillance within agricultural biogas plants (BGPs) was concurrently studied by high-throughput 16S rRNA gene amplicon sequencing and an optimized quantitative microscopic fingerprinting (QMF) technique. In contrast to 16S rRNA gene amplicons, digitalized microscopy is a rapid and cost-effective method that facilitates enumeration and morphological differentiation of the most significant groups of methanogens regarding their shape and characteristic autofluorescent factor 420. Moreover, the fluorescence signal mirrors cell vitality. In this study, four different BGPs were investigated. The results indicated stable process performance in the mesophilic BGPs and in the thermophilic reactor. Bacterial subcommunity characterization revealed significant differences between the four BGPs. Most remarkably, the genera Defluviitoga and Halocella dominated the thermophilic bacterial subcommunity, whereas members of another taxon, Syntrophaceticus, were found to be abundant in the mesophilic BGP. The domain Archaea was dominated by the genus Methanoculleus in all four BGPs, followed by Methanosaeta in BGP1 and BGP3. In contrast, Methanothermobacter members were highly abundant in the thermophilic BGP4. Furthermore, a high consistency between the sequencing approach and the QMF method was shown, especially for the thermophilic BGP. The differences elucidated that using this biphasic approach for mesophilic BGPs provided novel insights regarding disaggregated single cells of Methanosarcina and Methanosaeta species. Both dominated the archaeal subcommunity and replaced coccoid Methanoculleus members belonging to the same group of Methanomicrobiales that have been frequently observed in similar BGPs. This work demonstrates that combining QMF and 16S rRNA gene amplicon sequencing is a complementary strategy to describe archaeal community structures within biogas processes.
Choi, Soo Yeon;Kim, Nam Goo;Kim, Sang-Min;Lee, Bong Choon
Research in Plant Disease
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v.28
no.1
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pp.54-56
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2022
A peanut plant showing wilt and browned symptom was found in the field of Gochang, Korea, in July 2021. The symptomatic peanut plant was collected from the field and isolation of the pathogen caused the wilt symptom was performed using the collected sample on TZC media. The dominated colony on media was isolated colony on media was isolated and subcultured of purification. The pure cultured bacteria was identified as Ralstonia solanacearum by sequencing of 16S rRNA gene. Multiplex polymerase chain reaction using phylotype-specific primer set identified isolate as phylotype I (R. pseudosolanacearum). Phylogenetic tree was constructed based on 16S rRNA sequence and it was closed with R. pseudosolanacearum. Pathogenicity of the isolates was assessed by soil drenching inoculation on 4-week-old peanut plant. The wilt symptom was successfully reproduced by inoculation of the isolates after 14 days. This is first report of bacterial wilt caused by R. pseudosolanacearum on peanut in Korea.
The community structure of cultivable bacteria associated with the marine sponge, Petrosia corticata, collected from Jeju Island in summer (September) of 2012 and winter (January) of 2013, were compared by the PCR-ARDRA method. Bacterial strains were cultured for 4 days at $26^{\circ}C$ on Zobell medium and marine agar medium. After PCR amplification of 16S rRNA gene of individual strains, the restriction enzymes MspI and HaeIII were used to make restriction patterns. As a result, 24 ARDRA patterns from the summer sponge and 20 ARDRA patterns from the winter sponge were obtained. The sequencing result of 1-3 selected strains from each pattern showed over 98% similarities with the known sequences from the public database. At the phylum level, the bacterial community structures of both sponges (summer and winter) were identical qualitatively and composed of 4 phyla : Proteobacteria, Actinobacteria, Bacteroidetes, and Firmicutes. Alphaproteobacteria accounted for 42.5% of total in summer sponge and 25.2% in winter, decreasing in the winter sample. Gammaproteobacteria accounted for 27.5% of total in summer sponge and 35.2% in winter, increasing in the winter sample. At the genus and species level, summer sponge had more diverse bacterial communities than winter sponge. Actinobacteria, Bacteroidetes, and Firmicutes increased in the winter sample.
Bacterial diversity was determined by amplification and sequencing of 16S rDNA at Tancheon and Jungrang in Han river. Twenty-seven clones constructed were divided 7 groups using RFLP. Fifteen clones were classified 4 groups in Tancheon and the group (HT-1 clone) including many clones was affiliated a high similarity with Aerobacter cryaerophilus (the class Proteobacteria including members of the delta subdivisions). The other two groups (HT-6 and HT-9 clone) including several clones were classified with the class Cytophagales in Tancheon. Twelve clones were classified 3 groups in Jungrang and the group (HJ-1 clone) including many clones was affiliated a high similarity with Sphingomonas sp. (the class Proteobacteria including members of the alpha subdivisions). As a whole results, the class Proteobacteria (alpha, beta and delta subdivision), the order Cytophagales, and the order Actinomycetales were detected.
Flores-Fernandez, Carol N.;Chavez-Hidalgo, Elizabeth;Santos, Marco;Zavaleta, Amparo I.;Arahal, David R.
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.47
no.3
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pp.401-411
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2019
All Idiomarina species are isolated from saline environments; microorganisms in such extreme habitats develop metabolic adaptations and can produce compounds such as proteases with an industrial potential. ARDRA and 16S rRNA gene sequencing are established methods for performing phylogenetic analysis and taxonomic identification. However, 16S-23S ITS is more variable than the 16S rRNA gene within a genus, and is therefore, used as a marker to achieve a more precise identification. In this study, ten protease producing Idiomarina strains isolated from the Peruvian salterns were characterized using biochemical and molecular methods to determine their bacterial diversity and industrial potential. In addition, comparison between the length and nucleotide sequences of a 16S-23S ITS region allowed us to assess the inter and intraspecies variability. Based on the 16S rRNA gene, two species of Idiomarina were identified (I. zobellii and I. fontislapidosi). However, biochemical tests revealed that there were differences between the strains of the same species. Moreover, it was found that the ITS contains two tRNA genes, $tRNA^{Ile(GAT)}$ and $tRNA^{Ala(TGC)}$, which are separated by an ISR of a variable size between strains of I. zobellii. In one strain of I. zobellii (PM21), we found nonconserved nucleotides that were previously not reported in the $tRNA^{Ala}$ gene sequences of Idiomarina spp. Thus, based on the biochemical and molecular characteristics, we can conclude that protease producing Idiomarina strains have industrial potential; only two I. zobellii strains (PM48 and PM72) exhibited the same properties. The differences between the other strains could be explained by the presence of subspecies.
Background: Tetracycline is an antibiotic widely used for the treatment of Helicobacter pylori infection, but its effectiveness is decreasing due to increasing bacterial resistance. The aim of this study was to investigate the occurrence of 16S rRNA mutations associated with resistance or reduced susceptibility to tetracycline ofHelicobacter pylori by real-time PCR (RT-PCR) assays from culture. Materials and Methods: Tetracycline susceptibility and minimal inhibition concentration (MIC) was determined by the Epsilometer test (Etest) method. A LightCycler assay developed to detect these mutations was applied to DNA extracted from culture. The 16S rRNA of these isolates was sequenced and resistance-associated mutations were identified. From 104 isolates of H. pylori examined, 11 showed resistance to tetracycline. Results: LightCycler assay was applied to DNA extracted from 11 tetracycline-susceptible and 11 tetracycline resistance H. pylori isolates. In our study the sequencing of the H. pylori wild types in 16 s rRNA gene were AGA 926-928 with MIC (0.016 to $0.5{\mu}g/ml$), while the sequencing and MIC for resistant were GGA and AGC, (0.75 to $1.5{\mu}g/ml$), respectively. Also we found a novel mutation in 2 strains with $84^{\circ}C$ as their melting temperatures and exhibition of an A939C mutation. Conclusions: We conclude that real-time PCR is an excellent method for determination of H. pylori tetracycline resistance related mutations that could be used directly on biopsy specimens.
Culture-independent approaches, based on 16S rDNA sequences, are extensively used in modern microbial ecology. Sequencing of the clone library generated from environmental DNA has advantages over fingerprint-based methods, such as denaturing gradient gel electrophoresis, as it provides precise identification and quantification of the phylotypes present in samples. However, to date, no method exists for comparing multiple bacterial community structures using clone library sequences. In this study, an automated method to achieve this has been developed, by applying pair wise alignment, hierarchical clustering and principle component analysis. The method has been demonstrated to be successful in comparing samples from various environments. The program, named CommCluster, was written in JAVA, and is now freely available, at http://chunlab.snu.ac.kr/commcluster/.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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