An, Jeong-O;Jang, Hyeong-Uk;Lee, Hong-Won;An, Ik-Seong;Ham, Seung-Ju;Jeong, Jun-Gi
한국생물공학회:학술대회논문집
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2001.11a
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pp.367-369
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2001
Recombinant lipase gene (pYEGA ${\alpha}$ -lip) originated from Bacillus stearothermophillus Ll was overexpressed in Saccharomyces cerevisiae. The lipase gene expression level was compared by controlling a constant specifjc growth rates( ${\mu}$ = 0.03, 0.05, 0.07 and $0.1h^{-1}$. Cell g개wth was successfully controlled at the desired rates by feeding rate of glucose and the formation of by-product or accumulation of the glucose was not observed. Above the growth rate of $0.1h^{-1}$. the desired growth rate could not be achieved caused accumulation of by-products(ethanol). The lipase production increased as the specific growth rate decreased. The specific production rate at the lowest specific growth rater(${\mu}$ =0.03) was above 2- folds than the others.
To improve the quality of traditional kochujang, strains with high protease and amylase activity were isolated and identified from Sunchang traditional kochujang. Twenty-three strains strongly producing protease and 16 strains strongly producing $\alpha$- and $\beta$-amylase were isolated by using 1% isolated soy protein agar medium and 2% starch agar medium, respectively. Protease activities of the IA7, I5, and IA2 strain were 22.5, 21.2, and 20.6 unit/mL, respectively, and were higher than those of the other strains. Stains with high $\alpha$-amylase activity included K9 (967.8 unit/mL), K14 (828.3 unit/mL), K13 (662.5 unit/mL), K8 (601.5 unit/mL), and K11 (405.9 unit/mL). The $\beta$-amylase activity of the K11 strain was the highest, 34.3 unit/mL, among the isolated strains. Based on morphological, physiological properties, and API 50CHB-kit test for assimilation of 49 carbohydrates, 8 strains selected according to protease, $\alpha$-amylase, and $\beta$-amylase activities were tentatively identified as Bacillus megaterium (IA2), Bacillus subtilis (IA7, 15), Bacillus amyloliquefaciens (K8, K9, K11, and K13), and Bacillus stearothermophillus (K14). The IA7, 15, and K11 strains were finally identified as B. subtilis (99% ID) based on 16S rDNA sequencing.
Bacillus spp. isolated from mushroom medium wastes were evaluated for their biocontrol potentials on control of Sclerotinia rot of lettuce. The Bacillus isolates were more effectively obtained from waste suspension when directly added into nutrient agar(NA) medium than plating on the agar medium. Totally 42 isolates obtained from the wastes B23 and B42 showed highest antifungal activity against eight fungal pathogens such as Sclerotinia sclerotiorum, Rhizoctonia solani, Pythium ultimum, Phytophthora capsici, Fusarium oxysporum, Colletotrichum gloeosporioides, Cladosporium cucumerinum, and Botrytis cinerea and B23 and B42 were finally selected for further studies. Optimal concentration of the isolates was $10ml(10^7cfu/ml)$ to suppress the Sclerotinia rot of lettuce. Supplements such as starch, glycerol, and egg-yolk successfully maintained the bacterial population for 30 days in vitro and increased bio-control potentials against the disease. The bacterial isolate B23 alone showed 72% control value, furthermore it presented 95% control value when supplemented with 0.2% of starch, glycerol, and egg-yolk. The promising Bacillus isolates B23 and B42 were identified as Brevibacillus brevis and Bacillus stearothermophillus, respectively, based on morphological and physiological characteristics according to API database.
The objectives of this study was to decrease pollutions of bleaching effluent and was to enhanced brightness of non-chlorine bleached pulps by xylanase treatments. Xylanase cloned Esherichacoli(E. coli) capable of each of endo, exo-xylanase and acetyl-esterase were obtained from Bacillus stearothermophillus. These xylanase was maintained high activity in alkali and high temperature. Especially endo-xylanase would be more active in $60^{\circ}C$ and pH 11. Xylanase pretreatment(X) of unbleached pulp increased brightness, and decreased the degree of delignification. The degree of increase in brightness of pulp due to xylanase pretreatment was similar to non-enzyme treated pulp, regardless of the amount of enzyme added. Therefore, the addition of xylanase of 2 unit was recommended when considering costs of enzyme. The pulp bleached XO sequence had higher brightness and lower Kappa no, than O bleached pulp, while pulp bleached XP sequence had similar brightness and Kappa no. with P bleached pulp. In XOC/D, XOZ and XOP bleaching sequences, brightness and degree of delignification were improved. The C/D and Z stage bleached pulp was good effect on rate of raise in brightness and Kappa no., but P stage bleached pulp had similar level in non-enzyme treated bleaching sequence.
For the optimization of thermal processing conditions in soymilk process, 4 strains of thermoresistant flat-sour bacteria were isolated from soymilk. The isolates were aerobic spore-forming rods, and grew at $-65^{\circ}C$. Based on the morphological and physiological properties, all of the isolated strains were identified as Bacillus stearothermophilus. The heat resistance of spores of 3 isolates and Bacillus stearothermophillus ATCC 12980 as a reference was determined in soymilk(pH 7.0) and pH 7.0 buffer solution. For each of the spores studied, linear regression equations with standard error were presented for the thermal destruction at 110, 115, 121, and $125^{\circ}C$. It was not obvious that the components of soy milk increased the heat resistance of spores. Between the strains studied, variability was noted in the D values at the different temperature, and no one strain was consistently the most heat resistant at all the given temperatures. The average D value for the 4 strains was 77.27, 20.20, 2.76 and 1.39 min at 110, 115, 121 and $125^{\circ}C$, respectively, and the average z value was $8.36^{\circ}C$.
Exo-xylanase encoded by the xylA gene of Bacillus stearothermoPhillus was produced from Escherichia coli ]M109 carrying a recombinant plasmid pMGL Synthesis of the enzyme was observed to be cell-associated, and about 94% of the enzyme synthesized was located in the cytoplasmic region. The maximum production was attained when the E. coli strain was grown at $37^{\circ}C$ for 8 hours on the medium containing 0.5% fructose, 1.0% tryptone, 1.0% sodium chloride, and 0.5% yeast extract. The exo-xylanase was purified to homogeneity using a combination of salting out with ammonium sulfate, DEAE-Sepharose CL-6B ion exchange chromatography, Sephadex G-IOO gel filtration, and Sephadex G-150 gel filtration. The' purified enzyme was most active at pH 6.0 and $45^{\circ}C$. $Ca^{2+}$ and $Co^{2+}$ activated the exo-xylanase activity by about 20% while $Ag^{2+}$, $Fe^{2+}$, $Mg^{2+}$ and $Zn^{2+}$ inhibited the enzyme activity by up to 60%. The $K_m$, value on p-nitrophenyl-$\beta$-D-xylanopyranoside was 2.75 mM. The enzyme had a pI value of 4.7. The estimated molecular weight of the native protein was 200,000 daL SDS-polyacrylamide gel electrophoresis analysis suggested that the native enzyme was a trimer composed of three identical 66,000 da!. polypeptides. The purified enzyme efficiently converted all the xylo-oligosaccharides tested to xylose. It was also confirmed that the enzyme split xylans in an exo-manner even though the degree of hydrolysis was fairly low. The xylanolytic enzyme was, therefore, classified to be one of the few bacterial exo-xylanases lacking transferase activity.
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