유전자 재조합 이형이합체 인간 뼈 형성촉진인자(rhBMP)들은 뼈 재생을 위한 조직공학연구에 중요한 요소들이다. 그러나 실제 뼈 재생에 관한 연구를 수행함에 이들을 이용하는 것은 뼈 형성 촉진인자들이 짧은 반감기를 가지며 비교적 고농도의 단백질을 사용해야 하기 때문에 그만큼 많은 비용이 소요된다는 문제점을 가지고 있다. 이러한 한계를 뛰어넘기 위하여, 본 연구에서는 단백질 전달 서열(PTD)이 융합된 인간 뼈 형성촉진인자 2와 7이 이형이합체 유전자 재조합 단백질(rhBMP2/7-PTD)을 발현하는 세포주를 확립하였다. 이형이합체의 형성은 BMP 2와 BMP 7 단백질 및 PTD 영역의 사이에 각각 4개의 glycine 아미노산 염기서열이 첨가될 수 있도록 하여 각 단백질의 folding이 자유롭도록 디자인하였다. 이렇게 개발된 세포주는 고농도의 rhBMP2/7-PTD을 지속적으로 발현하여 배양액 내로 분비함으로 조직공학용 연구 및 개발에 효율적으로 이용 할 수 있다. 이상의 세포주에서 발현된 rhBMP2/7-PTD 단백질은 뼈 세포분화 유도를 확인 할 수 있는 ALP 활성을 나타냄으로써 뼈 성장촉진 단백질로서 생물학적인 활성을 가지고 있음을 보였다. 본 연구의 결과로 개발된 rhBMP2/7-PTD 형질전환 세포주는 향후 뼈 조직 재생과 같은 연구에 중요하고 효과적인 도구로 이용될 수 있을 것으로 사료된다.
Um, In-Woong;Ku, Jeong-Kui;Lee, Bu Kyu;Yun, Pil-Young;Lee, Jeong Keun;Nam, Jeong-Hun
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제45권3호
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pp.123-128
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2019
Demineralized dentin matrix (DDM) has been used as a recombinant human bone morphogenetic protein-2 (rhBMP-2) carrier in many clinical trials. To optimize the clinical safety and efficacy of rhBMP-2 with DDM, efforts have been made to improve the delivery of rhBMP-2 by 1) lowering the administered dose, 2) localizing the protein, and 3) prolonging its retention time at the action site as well as the bone forming capacity of the carrier itself. The release profile of rhBMP-2 that is associated with endogenous BMP in dentin has been postulated according to the type of incorporation, which is attributed to the loosened interfibrillar space and nanoporous dentinal tubule pores. Physically adsorbed and modified, physically entrapped rhBMP-2 is sequentially released from the DDM surface during the early stage of implantation. As DDM degradation progresses, the loosened interfibrillar space and enlarged dentinal tubules release the entrapped rhBMP-2. Finally, the endogenous BMP in dentin is released with osteoclastic dentin resorption. According to the postulated release profile, DDM can therefore be used in a controlled manner as a sequential delivery scaffold for rhBMP-2, thus sustaining the rhBMP-2 concentration for a prolonged period due to localization. In addition, we attempted to determine how to lower the rhBMP-2 concentration to 0.2 mg/mL, which is lower than the approved 1.5 mg/mL.
After dental implant are planted into their bony site among the various growth factors associated with bone formation. BMP is expressed in the bone surrounding the implant fixture. By taking a close look at BMP2, BMP4 which are growth factors that take put in bone formation, its histologic features and radiographic bone healing patterns we would like to examine the mechanism of osseointegration. We randomly used 8 male and female house rabbit amd used diameter 5 mm height spiral shaped implants(Ostem, Korea) for animal use handled as a resorbable blast machined(RBM) surface and machined surface. 2group were formed and each group had RBM surface and machined surface implant or a simple bone cavity. After 3, 7, 14 and 28 days post surgery 2 objects were sacrificed from each group and histologic specimens were acquired. RT-PCR analysis was conducted and after H&E staining the extent of osseointegration was measured applying a histologic feature and histomorphometric analysis program. Quanitity one -4.41(Bio-Rad, USA) was used after scanning the PCR product image of the growth factors manifested in each group. According to the histomorphometric features the RBM, Machined surface group showed increased contact between bone and implant surface at 3, 7, 14 and 28 days after surgery. The BMP2 level increased in both experiment groups but remained unchanged in the contrast group. BMP4 levels stayed steady after the early post implantation period for RBM but showed decreased in the machined surface group and contrast group. The amount of contact between bone and implant surface increased with the passage of time. BMP2, BMP4 were expressed in both experimental group and contrast group. These growth factors play a role in osseointegration of implant.
BMP-2 is a well-known TGF-beta related growth factor, having a significant role in bone and cartilage formation. It has been employed to promote bone formation in some clinical trials, and to differentiate mesenchymal stem cells into osteoblasts. However, it is difficult to obtain this protein in its soluble and active form. hBMP-2 is expressed as an inclusion body in the bacterial system. To continuously supply hBMP-2 for research, we optimized the refolding of recombinant hBMP-2 expressed in E. coli, and established an efficient method by using detergent and alkali. Using a heparin column, the recombinant hBMP-2 was purified with the correct refolding. Although combinatorial refolding remarkably enhanced the solubility of the inclusion body, a higher yield of active dimer form of hBMP-2 was obtained from one-step refolding with detergent. The refolded recombinant hBMP-2 induced alkaline phosphatase activity in mouse myoblasts, at $ED_{50}$ of 300-480ng/ml. Furthermore, the expressions of osteogenic markers were upregulated in hPDLSCs and hDPSCs. Therefore, using the process described in this study, the refolded hBMP-2 might be cost-effectively useful for various differentiation experiments in a laboratory.
BMP can induce ectopic bone formation when implanted into sites such as rat muscle and can greatly enhance healing of bony defects when applied exogenously. In addition, BMP stimulated osteoblastic differentiation in vitro in various types of cells. The aim of this study was to investigate the effect of recombinant human bone morphogenetic protein(rhBMP-2) on the proliferation and osteoblastic differentiation of human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts. The cell number and alkaline phosphatase activity were measured in 3 experimental groups of human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts (control group, rhBMP-2 50ng/ml group, and rhBMP-2 100ng/ml group) at 1 and 2 weeks after culture. At the same time, total RNA of cultured cells were extracted and reverse trascription polymerase chain reaction(RT-PCR) was performed to determine the expression of mRNA of bone matrix protein. RhBMP-2 had no effect on the cell proliferation of human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts. Alkaline phosphatase activity was elevated significantly by rhBMP-2 in both cells. And periodontal ligament cells showed significantly higher alkaline phosphatase activity than gingival fibroblasts. ${\beta}$-actin, type I collagen, alkaline phosphatase, BMP-2 mRNA were expressed in all of the samples. Osteopontin, osteocalcin mRNA were expressed in all periodontal ligament cell groups, and rhBMP-2 50ng/ml group, rhBMP-2 100ng/ml group of 2 week culture period of gingival fibroblasts. Bone sialoprotein mRNA was only expressed in rhBMP-2 50ng/ml group and rhBMP-2 100ng/ml group of 2-week culture period. These results suggest that rhBMP-2 stimulates osteoblastic differentiation in human periodontal ligament cells and gingival fibroblasts in vitro.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제42권2호
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pp.90-98
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2016
Objectives: The aim of this study was to compare the osteogenic effects of demineralized dentin matrix (DDM) combined with recombinant human bone morphogenetic protein-2 (rhBMP-2) in rabbit calvarial defects with DDM and anorganic bovine bone (ABB) combined with rhBMP-2. Materials and Methods: Four round defects with 8-mm diameters were created in each rabbit calvaria. Each defect was treated with one of the following: 1) DDM, 2) ABB/rhBMP-2, or 3) DDM/rhBMP-2. The rhBMP-2 was combined with DDM and ABB according to a stepwise dry and dip lyophilizing protocol. Histological and microcomputed tomography (${\mu}CT$) analyses were performed to measure the amount of bone formation and bone volume after 2- and 8-week healing intervals. Results: Upon histological observation at two weeks, the DDM and ABB/rhBMP-2 groups showed osteoconductive bone formation, while the DDM/rhBMP-2 group showed osteoconductive and osteoinductive bone formation. New bone formation was higher in DDM/rhBMP-2, DDM and ABB decreasing order. The amounts of bone formation were very similar at two weeks; however, at eight weeks, the DDM/rhBMP-2 group showed a twofold greater amount of bone formation compared to the DDM and ABB/rhBMP-2 groups. The ${\mu}CT$ analysis showed markedly increased bone volume in the DDM/rhBMP-2 group at eight weeks compared with that of the DDM group. Notably, there was a slight decrease in bone volume in the ABB/rhBMP-2 group at eight weeks. There were no significant differences among the DDM, ABB/rhBMP-2, and DDM/rhBMP-2 groups at two or eight weeks. Conclusion: Within the limitations of this study, DDM appears to be a suitable carrier for rhBMP-2 in orthotopic sites.
연구 목적: 본 실험은 거친 표면으로 유의성 있는 줄기세포반응을 나타냈던 4 가지의 티타늄 표면 위에 rhBMP-2를 코팅했을 때 어떤 유의한 줄기세포반응(세포부착, 증식, 분화)이 나타나는지 비교 분석함으로 rhBMP-2 코팅을 위한 가장 적절한 표면을 평가하기 위해 시행되었다. 연구 재료 및 방법: 대조군인 기계절삭표면(machined surface)과 실험군인 양극산화(anodized), RBM, SLA 표면에 rhBMP-2를 코팅한 후 코팅하지 않은 표면과 같이 8가지 표면 위에 인간줄기세포를 배양하였다. 배양 후 24시간 후 SEM을 통해 줄기세포의 부착을 평가하였고 배양 3, 7, 14일후MTT와 ALP 검사를 통해 줄기세포의 증식과 분화반응을 평가하였다. 그리고 배양 7일후RT-PCR 검사를 통해 Type I collagen, osteocalcin, osteopontin의 유전자 발현의 변화를 평가하였다. 결과: SEM 평가에서 4가지 rhBMP-2 표면이 코팅하지 않은 표면에 비해 세포부착 면적이 넓고 긴밀하며 세포돌기가 더 많이 관찰되었다. 양극산화 rhBMP-2코팅표면에서 가장 두드러지게 관찰되었다. MTT 검사에서 크게 의미 있는 차이는 나타나지 않았다. ALP검사에서 양극산화 rhBMP-2코팅 표면은 대조군과 비교해서 (3, 14일) 또 RBM rhBMP-2 코팅 표면과 비교해서 (14일) 유의성 있는 ALP 활성도의 증가를 나타내었다(P<.05). RT-PCR 검사에서 osteocalcin과 osteopontin의 유전자 발현은 양극산화 rhBMP-2코팅 표면에서 높게 나타났다. 결론: 양극산화 rhBMP-2코팅표면이 줄기세포의 부착과 분화실험에서 대조군표면과 rhBMP-2를 코팅한 기계절삭표면이나 RBM 표면에 비해 유의성 있는 증가를 나타냈다(P<.05).
BACKGROUND: The aim of this study was to evaluate the combined effect of low-level laser treatment (LLLT) and recombinant human bone morphological protein-2 (rhBMP-2) applied to hypoxic-cultured MC3T3-E1 osteoblastic cells and to determine possible signaling pathways underlying differentiation and mineralization of osteoblasts under hypoxia. METHODS: MC3T3-E1 cells were cultured under 1% oxygen tension for 72 h. Cell cultures were divided into four groups: normoxia control, low-level laser (LLL) alone, rhBMP-2 combined with LLLT, and rhBMP-2 under hypoxia. Laser irradiation was applied at 0, 24, and 48 h. Cells were treated with rhBMP-2 at 50 ng/mL. Alkaline phosphatase activity was measured at 3, 7, and 14 days to evaluate osteoblastic differentiation. Cell mineralization was determined with Alizarin red S staining at 7 and 14 days. Western blot assays were performed to evaluate whether p38/protein kinase D (PKD) signaling was involved. RESULTS: The results indicate that LLLT and rhBMP-2 synergistically increased alkaline phosphatase (ALP) activity and mineralization. Western blot analyses showed that expression of type I collagen, runt-related transcription factor 2 (RUNX2), and Osterix (Osx), increased and expression of hypoxia-inducible factor 1-alpha ($HIF-1{\alpha}$), decreased more in the LLLT and rhBMP-2 combined group than in the rhBMP-2 or LLL alone groups. Moreover, LLLT and rhBMP-2 stimulated p38 phosphorylation and rhBMP-2 and LLLT increased Prkd1 phosphorylation. CONCLUSION: Combined treatment with rhBMP-2 and LLL induced differentiation and mineralization of hypoxic-cultured MC3T3-E1 osteoblasts by activating p38/PKD signaling in vitro.
Kim, Seong-Wan;Kim, Seong-Ryul;Park, Seung Won;Goo, Tae-Won;Choi, Kwang-Ho
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제34권1호
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pp.1-5
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2017
Bone morphogenetic protein 2 (BMP2) plays an important role in the development of bone and cartilage. It is involved in the hedgehog pathway, TGF beta signaling pathway, and in cytokine-cytokine receptor interaction. It is involved also in cardiac cell differentiation and epithelial to mesenchymal transition. In this study, We expressed human BMP2 (hBMP2) recombinant protein using Baculovirus Expression Vector System (BEVS) in Sf9 insect cells. The hBMP2 cDNA was cloned into baculovirus transfer vector, pBacgus-4x-1 and recombinant baculovirus was screened out through X-gal and GUS-fusions assay. Western blot analysis shown that molecular weight of hBMP2 recombinant protein was about 44.71 kDa.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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