This experiment was carried out to obtain the thermophilic fungus producing amylase and to investigate properties of the amylase. The selected strain, L-11 was obtained from soil in the vicinity of a hot spring and identified as Mocor sp.. And then the conditions for enzyme production in wheat bran cultures and properties of the crude enzyme were investigated. Furthermore, the enzyme was purified and the characteristics of purified enzyme were studied. The results obtained were as follows: 1. On the wheat bran medium added 80-100% water, amylase was effectively produced by the selected strain, L-11 for 48 hrs incubation at $50^{\circ}C$. 2. When the crude enzyme solution of the strain L-11 was passed through DEAE-Sephadex A-50 column chromatography, two peaks having amylase activity were obtained, and one peak was that of the main enzyme (enzyme of B peak). 3. The purified enzyme (enzyme of B peak) was recognized as single protein band on polyacrylamide disc gel electrophoresis. 4. In the hydrolysis reaction of soluble starch by the enzyme of main amylase, oligosaccharides produced at early stage were maltose and maltotriose mainly and procedure of the reaction maltose amount of maltose and glucose was increased. 5. The strain L-11 was recognized as a special strain producing ${\alpha}-amylase$ mainly and scarcely glucoamylase. 6. The optimum pH, optimum temperature, pH stability, and temperature stability of ${\alpha}-amylase$ were pH 4.0, $60-65^{\circ}C$, pH 4.0-9.0, and below$70^{\circ}C$.
The production of extracellular $\alpha$-amylase by Bacillus thuringiensis 19 serotypes was examined by the hydrolysis test of starch. Thirteen serotypes produced the amylase. B. thuringiensis serovar thuringiensis alesti, kurstaki, sotto, kenya, israelensis, morrisoni, entomocidus, tolworthi, thompsoni, toumanoffi, pakistani, and indiana produced tee enzyme. The amylase produced by B. thuringiensis serovar israelensis showed highest activity around pH 6.7 to 7.2 and 55$^{\circ}C$ to $65^{\circ}C$. The high production medium of the amylase was composed of 1% bactopeptone, 0.3% beef-extract, 0.3% yeast ex-tract, 0.5% NaCl, 0.3% $K_2$HPO$_4$, 0.1% KH$_2$PO$_4$, 0.2% Soluble Starch, 0.012% CaCl$_2$.2$H_2O$$_2$, 0.005% MnCl$_2$, and 0.03% MgCl$_2$.7$H_2O$. The highest production of the enzyme was observed at 4 hours culture in the soluble starch (0.6 units/$m\ell$) or glucose (0.43 units/$m\ell$) substrate.
Alkaline .alpha.-amylase expressed in the transformant, Baciollus subtills MB809, containing alkaline amylase gene cloned from alkalophilic Bacillus sp. AL-8, was purified through for step separation processes. The purified alkaline .alpha.-amylase had molecular weight of app[roximately 59, 000 daltons on SDS-PAGE and Sephaex G-100 gel filtration. Amino acid sequence of terminal portion of the enzyme was analyzed with pure amylase eluted form the SDS-PAGE gel. N-terminal amino acid sequence of .alpha.-amylase was determined by the Edman degradation method and resulted in $NH_{2}$-ser-thr-ala-pro-ser-(ile)-lys-ala-gly-thr-(ile)-leu. For C-terminal amino acid sequencing, purified .alpha.-amylase was digested with carboxypuptidase A and B, and reverse-phase HPLC gradient elution system resulted in -thr-trp-pro-lys-COOH.
Kim, I.C.;Jang, S.Y.;Cha, J.H.;Ko, Y.H.;Park, K.H.;Rho, H.M.
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.16
no.5
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pp.369-373
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1988
The gene for thermostable alpha-amylase from the thermostable bacterium Bacillus licheniformis has been cloned and expressed in Escherichia coli. The Alpha-amylase producing E. coli cells contained a 7.4 kb chimeric plasmid (pTA 322) which was composed of the vector pBR322 and a 3.1 kb EcoRI fragment of B. licheniformis DNA. The alpha-amylase from cloned fragement was shown to be indistlnguishable from that of B. licheniformis in the optimum temperature of 9$0^{\circ}C$, heat stability and the pH stability. The foreign gene was expressed efficiently in E. coli and stably maintained.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.32
no.8
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pp.1262-1269
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2003
In this study, enzymes were investigated as an antistaling agent for a Korean rice cake. Thermograms by a DSC demonstrated that the gelatinization-onset temperature of the Korean rice cake was at its lowest temperature of 71.1$^{\circ}C$ with the GP (glucoamylase+pullulanase) treatment, followed by $\beta$-amylase and $\alpha$-amylase. The gelatinization peak temperature of the Korean rice cake with enzyme treatment was relatively lower compared to the control. Furthermore, the Korean rice cake with GP treatment showed the lowest peak temperature. Melting enthalpy of the Korean rice cake increased with the enzyme treatment, with $\beta$-amylase, followed by $\alpha$-amylase and GP. Melting enthalpy of the Korean rice cake with GP treatment was significantly lower compared to the $\beta$- and $\alpha$-amylase treatment. Recrystallinity in the case of GP treatment was also significantly lower than control. The range of Avrami exponent (n) was 0.90 ∼ 1.20 and the time constant of retrogradation (1/k) of the Korean rice cake crystalline decreased in the following order: GP, $\beta$-, $\alpha$ -amylase and control. Textural characteristics of the Korean rice cake with enzyme treatment differed greatly from that of control. The L* values of all the Korean rice cakes made without $\beta$-amylase decreased and the a* values were significantly different at p<0.05. The GP treatment altered the b* value toward blue color, whereas $\beta$-and $\alpha$-amylase changed to the direction to yellow color. In sensory evaluation, the Korean rice cake with enzyme treatment showed higher evaluation compared to control.
In this study, the twenty-four ethyl acetate extracts of twenty-two medicinal plants, traditionally used in Vietnam as anti-diabetes agents, were investigated for ${\alpha}$-amylase and protein tyrosine phosphatase 1B (PTP1B) enzymes inhibitory activity in vitro. The results indicated that, twelve materials (50.0%) showed moderate to strong inhibitory activity in ${\alpha}$-amylase inhibitory activity with $IC_{50}$ values ranging from 2.5 to $48.8{\mu}g/mL$; meanwhile, ten extracts (41.6%) could demonstrate PTP1B activity with $IC_{50}$ values less than $30.5{\mu}g/mL$. Some plants presented interesting activities against both of ${\alpha}$-amylase and PTP1B enzymes such as Catharanthus roseus, Carthamus tinctorius, Momordica charantia, Gynostemma pentaphyllum, Glycyrrhiza glabra, Smilax glabra, Psidium guajava (leave), and Rehmannia glutinosa. The study may provide a proof, at least in a part, for the ethno-medical use in diabetes disease of these plants.
Bonavides, Krishna B.;Pelegrini, Patricia B.;Laumann, Raul A.;Grossi-De-Sa, Maria F.;Bloch, Carlos Jr.;Melo, Jorge A.T.;Quirino, Betania F.;Noronha, Eliane F.;Franco, Octavio L.
BMB Reports
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v.40
no.4
/
pp.494-500
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2007
The endophytic bruchid pest Callosobruchus maculatus causes severe damage to storage cowpea seeds, leading to economical losses. For this reason the use of $\alpha$-amylase inhibitors to interfere with the pest digestion process has been an interesting alternative to control bruchids. With this aim, $\alpha$-amylase inhibitors from baru seeds (Dipteryx alata) were isolated by affinity chromatographic procedures, causing enhanced inhibition of C. maculatus and Anthonomus grandis $\alpha$-amylases. To attempt further purification, this fraction was applied onto a reversed-phase HPLC column, generating four peaks with remarkable inhibition toward C. maculatus $\alpha$-amylases. SDS-PAGE and MALDI-ToF analysis identified major proteins of approximately 5.0, 11.0, 20.0 and 55 kDa that showed $\alpha$-amylase inhibition. Results of in vivo bioassays using artificial seeds containing 1.0% (w/w) of baru crude extract revealed 40% cowpea weevil larvae mortality. These results provide evidence that several $\alpha$-amylase inhibitors classes, with biotechnological potential, can be isolated from a single plant species.
Bacillus polyfermenticus SCD was transformed by the recombinant shuttle vector for Bacillus and Escherichia coli containing 3 antibiotic resistant genes and an ${\alpha}$-amylase gene from Bifidobacterium adolescentis Int57. The ${\alpha}$-amylase gene fused to a secretion sequences was expressed under the control of the promoter of amylase gene from B. subtilis var. natto. The recombinant plasmid was maintained stably in the transformants producing the ${\alpha}$-amylase. The enzyme was secreted to outside of the cell and showed the similar enzyme activity as that of Bacillus subtilis BD170 under the same conditions of pH and growth temperature. Because of the relatively easy transformation and the secretion of the enzyme, the transformants of B. polyfermenticus SCD may give a new strategy in the production of foreign genes.
Some enzymatic properties of Cynthia roretzi v. (Drasche Korean : U-Rung-Shei) was studied by author and obtained the following results; 1. The optimum pH of the digestive gland amylase was 6.8-7.0 2. Activity of metallic ion on the amylase showed the following order; 10$^{-3}$ M M $n^{++}$>10$^{-3}$ M $Co^{++}$>10$^{-4}$ M $Mg^{++}$>10$^{-4}$ M $Ca^{++}$>10$^{-2}$ M Z $n^{++}$>10$^{-2}$ M P $b^{++}$ 3. The digestive gland enzyme inactivated at 70.deg. C. 4. When the enzyme concentration increase 2 times, the enzymatic activity also increase, but not propertionally. 5. The digestine gland amylase showed remarkably higher enzymatic activity than the intestinal amylase. 6. The digestive gland amylase from the ascidian showed remarkably higher enzymatic activity than the heptancreatic amylase from shell fish (Turbo (Batillus) Cornutus Solander).nder).nder).
Objective: This study investigated the association of enzyme-producing microbes and their enzymes with starch and hemicellulose degradation during fermentation of total mixed ration (TMR) silage. Methods: The TMRs were prepared with soybean curd residue, alfalfa hay (ATMR) or Leymus chinensis hay (LTMR), corn meal, soybean meal, vitamin-mineral supplements, and salt at a ratio of 25:40:30:4:0.5:0.5 on a dry matter basis. Laboratory-scale bag silos were randomly opened after 1, 3, 7, 14, 28, and 56 days of ensiling and subjected to analyses of fermentation quality, carbohydrates loss, microbial amylase and hemicellulase activities, succession of dominant amylolytic or hemicellulolytic microbes, and their microbial and enzymatic properties. Results: Both ATMR and LTMR silages were well preserved, with low pH and high lactic acid concentrations. In addition to the substantial loss of water soluble carbohydrates, loss of starch and hemicellulose was also observed in both TMR silages with prolonged ensiling. The microbial amylase activity remained detectable throughout the ensiling in both TMR silages, whereas the microbial hemicellulase activity progressively decreased until it was inactive at day 14 post-ensiling in both TMR silages. During the early stage of fermentation, the main amylase-producing microbes were Bacillus amyloliquefaciens (B. amyloliquefaciens), B. cereus, B. licheniformis, and B. subtilis in ATMR silage and B. flexus, B. licheniformis, and Paenibacillus xylanexedens (P. xylanexedens) in LTMR silage, whereas Enterococcus faecium was closely associated with starch hydrolysis at the later stage of fermentation in both TMR silages. B. amyloliquefaciens, B. licheniformis, and B. subtilis and B. licheniformis, B. pumilus, and P. xylanexedens were the main source of microbial hemicellulase during the early stage of fermentation in ATMR and LTMR silages, respectively. Conclusion: The microbial amylase contributes to starch hydrolysis during the ensiling process in both TMR silages, whereas the microbial hemicellulase participates in the hemicellulose degradation only at the early stage of ensiling.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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