We have cloned the Bacillus cellulyticus K-12 avicelase (Avi, E.C.3.2.1.4) gene (ace A) In E. coli. This was accompanied by using the vector PT7T3U 19 and Hind W -Hind m libraries of Bacillus cellulyticus K-12 chromosomal inserts created in 5.cofi. The Libraries were screened for the expression of avicelase by monitoring the immunoreaction of the anti-avicelase (immunoscreening). Positive clones (Ac-3, Ac-5, and Ac-7) contained the identical 3.5kb Hind III fragment as determined by restriction mapping and Southern hybridization, and expressed avicelase efficiently and constituvely using its own promoter in the heterologous host. From the immunoblotting analysis, a polypeptide which showed a CMCase activity with an Mr of 54000 was detected.
Enzymatic properties of avicelase, carboxymethyl cellulase (CMCase) and P-glucosidase produced by Cellulomonas sp. YE-5 were studied. Optimal temperature and pH of avicelase were 40t and 6.0, and those of CMCase and P-glucosidase were $45^{\circ}C$ and 6.5. Avicelase and CMCase were stable between pH 5.0 and 9.5, and &glucosidase was stable between pH 5.5 and 8.0. Avicelase and P-glucosidase were inactivated when incubated at $35^{\circ}C$ for 6 hrs, and CMCase was at $40^{\circ}C$ for 6 hrs. All cellulases were strongly inhibited by $Cu^{2+} \; and \; Zn^{2+}. K_m$ values of avicelase for avicel, CMCase I and CMCase II for CM-cellulose, and ($\beta$-glucosidase for p-nitrophenyl-$\beta$-D-glucoside (PNPG) were 4.76, 16.4, 16.4 $\mu g$/ml and 3.51 mM, respectively.
Cellulase components, CMCase(Cx) and Avicelase$(C_1)$, were partially prueified, from the culture extract of a strain of Trichoderma koningii by column chromatography on DEAE-Sephadex A-50 and the step of gel filtration through Sphadex G-150, Optimum pH of CMCase was 5.2 and Avicelase showed the highest activity at pH 5.6 in acetate buffer. Optimal temperatures for activities of CMCase and Avicelase were $50^{\circ}C\;and\;60^{\circ}C, $ respectively. More than 70% of the activities of two enzymes were remained after heating at $60^{\circ}C$ for 30 min and Avicelase is more stable than any other fungal enzymes. The Michaelis constants, Km, of CMCase and Avicelase were 0.116% of CMC and 0.281% of avicel. And also the values of maximum velocity, Vmax, of CMCase and Avicelase were $23.20{\mu}g\;and\;2.54{\mu}g$ of reducing sugar per min. Of the metal ions tested against the activites of CMCase and Avicelase, $Cu^{++}, \; Hg^{++}, \;and\;Pb^{{++}$ are remarkably effective inhibitors. The molecular weights of Cx and $C_1$ component were estimated to be about 47, 000 and 61, 000 by gel filtration method.
Mutational experiments were performed to imporve the cellulase productivity of Aspergillus phoenicis KU175, isolated from the southern part of Korea, as a high cellulase producer. By treatment ultra-violet light nad 4-NQO(4-Nitroquinoline-N-Oxide), mutation waas induced, and treatment ultra-violet light and 4-NQO (4-Nitroquinoline-N-Oxide), mutation was induced, and A.phoenicis KU175-115 was finally selected for its highest avicelase production. Avicelase production of the mutant was increased about 2 times compared with those of the wild strain. However, activities of other hydrolytic enzymes, such as amylase, protease and nuclease, of the mutant strain didn't show a marked difference compared with those of the nuclease, of the mutant strain didn't show a marked difference compared with the wild strain, except slight increase in ribonuclease activity and slight decrease in glucoamylase activity. Avicelases from the mutant strain selected were purified from wheat bran culture by successive salting out, followed by dialysis and column chromatography, and their charcteristics were compared with thosw of the wild strain. Avicelase was separated into three peaks in the mutant strain as well as in the case of wild strain. Avicelase II activity of the mutant strain was prominently higher than that of the wild strain, while avicelase I and III activities of those were equivalent. The optimal pH ranges and stability of avicelase II from the mutant strain were pH4-5 and pH3.5-6.0, respectively, as well as in the case of the wild strain. The optimal temperature and thermal stability of avicelase II from the mutant strain were $40{\sim}50^{\circ}C\;and\;20{\sim}55^{\circ}C$, respectively. These results were same as those of the wild strain. By the using of Eadie-Hofastee plot, $K_m\;and\;V_{max}$ of avicelase II from the mutant and the wild strain were calculated to be 2.29mg/ml and $4.84{\mu}g$ reducing sugar as glucose per min equally, from the line fitted to the data by the least square method. Activity of avicelase II from the mutant strain was slightly activated by $Mg^{++}\;but\;inhibited\;by\;Cu^{++}, \;Mn^{++}\;and\;Zn^{++}$, as well as in the case of the wild strain. Therefore, it was concluded that the mutant didn't induce the formation of another avicelase isozyme, or the changes in the properties of avicelase, but induce the changes in the productively of the same avicelase II by the action of regulatory gane.
For the purpose of utilizing cellulose resources by cellulolytic enzymes of Stropharia rugosoannulata, it's cultural conditions for the prodution of cellulolytic enzymes in synthetic media were investigated. The optimum pH for the production of Avicelase and ${\beta}-glucosidase$ was pH 5.0, while that of CMCase was pH 4.0. The optimum temperature for the production of Avicelase, CMCase and ${\beta}-glucosidase$ was $40^{\circ}C$. Among the carbon sources, xylose was good for the production of CMCase and ${\beta}-glucosidase$, but maltose was good for the production of Avicelase. The optimum concentration of the carbon sources for the production of CMCase, Avicelase and ${\beta}-glucosidase$ was 1.0, 0.8 and 1.1%, respectively. As inorganic nitrogen sources, $NH_4Cl$ was good for the production of all the three cellulolytic enzymes. The optimum concentration of $NH_4Cl$ for the production of CMCase was 0.3% while that of Avicelase and ${\beta}-glucosidase$ was 0.4%. As organic nitrogen sources, malt extract was good for the production of all the three cellulolytic enzymes. The optimum concentration of organic nitrogen for the production of ${\beta}-glucosidase$ was 1.3% while that of CMCase and Avicelase was 1.0%. As the mineral sources, $CoCl_2$ good for the was good for the production of all the three cellulolytic enzymes. The optimum concentration of $CoCl_2$ for the production of all the three enzymes was 0.35%.
Some properties of cellulolytic enzymes produced by Pleurotus sajor-caju JAFM 1017 during its growth in synthetic medium were investigated. The optimum pH of avicelase, CMCase, and ${\beta}-glucosidase$ was pH 5.5, pH 4.5 and pH 6.0, respectively. Avicelase and CMCase were stable within pH 5.0 to 6.0 and 4.0 to 6.0, respectively, and ,${\beta}-glucosidase$ was within pH 5.5 to 6.5. The optimum temperature of avicelase, CMCase and ${\beta}-glucosidase$ was the same of $40^{\circ}C$. The enzymes were stable below the optimum temperature, but the enzymes were unstable over the temperature of $50^{\circ}C$, and avicelase was losing about 91.7% of activity at $70^{\circ}C$ for 10 min. The enzyme activity of avicelase and CMCase was increased in proportion to the substrate concentration within 1% and 0.7%, respectively, and ${\beta}-glucosidase$ was within 0.1%. The Michaelis constants (Km) of avicelase and CMCase were 30.77mg avicel/ml and 14.64m Na-CMC/ml, respectively and ${\beta}-glucosidase$ was 5. 13mg salicin/ml. The reducing sugar production of avicelase was proportionaly increased until 120 min. and CMCase and ${\beta}-glucosidase$ were until 60min. The activity of three cellulolytic enzymes were increased by $Ca^{2+}$ at the concentration of $10^{-2}M$, but were inhibited by $Hg^{2+}$, $Ag^+$.
Celluloytic microorgnasims were isolated form the various sources and four of them were identified as Trichoderma roningi, Aspergillus niger, Penicillium chrysogenum, and Streptomyces sp. The induction of extracellular5 cellulase of these species in the liquid culture media containing carboxymethylcellulose (CMC) or Avicel as inducer showed that CMC was a better effective inducer for the production of CMCase(Cx cellulase component) as well as Avicelase(C$_{1}$ cellulase component) than Avicel. It is believed that certain hydrolysis products of cellulose(CMC) could serve as an inducer for an enzyme synthesis. In T. roningi, Asp. niger, and Strptomyces sp., the optimum temperature of CNCase on CMC-culture medium was 50.deg. but temperature around 40.deg.C was found to be optimum for the activities of CMCase prepared from P.ehrysogenum. The optimum temperature for Avicelase activitiles on Avicel-culture media of T. roningi and P. chrysogenum was $40{\circ}C$ whereas temperature $50{\circ}C$ was found to be optimum for Avicelase from A.niger and Streptomyces sp. The optimal activities of these CNCase and Avicelase prepared from. T. ronigi, Pen.chrysogenum and Streptomyces sp. were found similarly to be at pH's around 5.4 and 6.0 while pH 4.8 was optimum for the activities of CMCase and Avicelase from A.niger, indicating that A.niger in acidic media would yield an enzyme of high activity.
Cellulolytic mocrooganisms were isolated from the cellulose-cultural properties. Among them, Aspergillus clavatus with the highest cellulase activity was identified by the morphological characteristics and it's enzyme activities were compared on the various cultural conditions. It was found that the induction of carboxymethylcellulase(CMCase), avicelase and salicinase in CMC liquid media showed the highest enzyme acitivity on five day's cultivation at $30^{\circ}C$ and thereafter their activities were gradually decreased with time. After crude extracellular enzymes precipitated with the 70% saturated ammonium sulfate solution were dialyzed with 20 mM acetate buffer pH 6.0, each crude enzyme was examined. The optimal activities of CMCase and avicelase were both found to be at $50^{\circ}C$ and pH 6.0. Their thermal stability was appeared at the $50^{\circ}C$. CMCase and avicelase had the maxima activities with 1.5% and 2.2% substrate concentration, respectively. The concentration of 5 mM $Mg^{++}$ or $Ca^{++}$ was found to have a maximum cellulase activity and its activity was inhibited with more than 5 mM $Cu^{++}$ and $Zn^{++}$ concentration. Cellulase activity was also inhibited sensitively by the inhibitors such as 2-mercaptoethanol, iodine and sodium azide.
A filamentous fungus, strain FB01 showing high $\beta$-glucosidase activity was isolated from a compost. This fungus was cocultured with Trichoderma viride to enhance the productivity of $\beta$-glucosidase by changing inoculation time of the fungus. The microbial consortium showed higher cellulolytic enzyme production than T. viride alone. The maximal enzyme production was obtained when the microbial consortium was cultured at 30$\^{C}$ and pH 6.0 for 10 days with the activities of CMCase, $\beta$-glucosidase, and avicelase of 2.0, 0.8, and 0.2 U/mL, respectively. These enzyme activities were 2, 4, and 2 times as high as those of CMCase, p-glucosidase, avicelase from T. viride, respectively, indicating that a synergistic interaction appeared between T. viride and strain FBOI . The serial subcultures with pH control increased $\beta$-glucosidase production about 3.2 times. Enzyme production using ricestraw as a carbon source showed that the activities of CMCase, $\beta$-glucosidase, and avicelase were 3.69, 0.76, 0.17 U/mL, respectively, and $\beta$-glucosidase activity was 1.5 times higher than that of T viride.
The 685 strains of Korean Sspergilli are isolated, cultured purely, and their Avicelase, CMCase and Salicinase activities are measured, in order to select the best strains exhibiting predominant cellulase activities, and to survey their cellulase activities in taxonomical and ecological viewpoints. Strains No.175, 255 and 254 are selected as the best Avicelase producing strains, strains No.131, 151 and 116 are selected as the best CMCase producing strains, and strains nO.456, 457 and 253 are selected as the best Salicinase producing strains. A niger group and A, clavatus group exhibited the highest activities of Avcelase and Salicinase, respectively. A.iniger group and A, clavatus groups are showed the highest activites of CMCase. Among the different species tested, the activities of Avicelase, CMCase andSalicinase are highest in A.phoenicis, A.clavatus, and A. japonicus and A.giganteus, respectively. Cellulase activities of Aspergilli from the inland regions of Korea are higher, more or less, than those of the strains from the other regions. Avicelase and CMCase activities of Aspergilli isolated from bread and Korean cake are relatively higher, and Salicinase activities of the strains isolated from the cereals are higher than those of the strains from the other habitat substrate.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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