We examined astrocyte regional heterogeneity in their morphological changes in response to various stimuli. Astrocytes were cultured from six different neonatal rat brain regions including cerebral cortex, hippocampus, cerebellum, mid brain, brain stem and hypothalamus. Astrocyte stellation was induced by serum deprivation and the maximum stellation in different regional astrocytes was achieved after 2 h. After 24 h, in all astrocyte cultures, the level of stellation returned to their original level. Cerebellar or hypothalamic astrocytes were the most or the least sensitive, respectively, to serum deprivation. The order of maximum sensitivity to serum deprivation among different regional astrocytes was: cerebellum>mid $brain{\ge}hippocampus,\;brain\;stem{\ge}cerebral$ cortex>hypothalamus. Isoproterenol-induced astrocyte stellation was also examined in different regional astrocytes, and similar order of maximum sensitivity as in serum deprivation was observed. Next a possible developmental effect on astrocyte morphological changes was examined in cerebral cortex and cerebellum astrocytes cultured from postnatal day 1 (P1), P4 and P7 rat brains. A much higher sensitivity of cerebellum astrocytes to serum deprivation as well as isoproterenol treatment was consistently observed in P1, P4 and P7-derived astrocytes compared to cerebral cortex astrocytes. The present study demonstrates different regional astrocytes maintain different levels of morphological plasticity in vitro.
[Purpose] Fibronectin type III domain containing 5 (FNDC5)/irisin is an exercise-induced myokine, which contributes to cognitive functions. However, the relationship between the neuroprotective effects of FNDC5/irisin and hippocampal dendritic remodeling and astrocyte-secreted factors remains unclear. Therefore, we explored whether subchronic recombinant irisin treatment affected hippocampal morphology and some astrocyte-derived molecules. [Methods] Mice were intraperitoneally injected with irisin (0.5 μg/kg/day) for seven days, followed by their sacrifice two days later. Hippocampal morphometric parameters were analyzed and pgc-1a, fndc5, bdnf, and some astrocyte-derived factors mRNA levels were measured. [Results] Dendritic length, arborization, and spine density were enhanced by irisin regimen in hippocampal CA1 and CA3 areas. Hippocampal pgc-1a, fndc5, and bdnf mRNA levels were significantly increased by irisin treatment. Moreover, hevin mRNA levels were significantly enhanced, whereas tgf-b1 levels downregulated by irisin treatment. [Conclusion] FNDC5/irisin has dendritogenic activity probably through hevin induction and TGF-β1 suppression.
Primary cultures of rat fetus brain exhibit phenotypes of neuron, oligodendrocyte, and astrocyte from "neurospheres". To understand the role of mitogen-activated protein kinase (MAPK) cascade and gap junctional intercellular communication (GJIC) in the differentiation of neurosphere-derived astrocyte, we investigated the effects of 12-O-tetradecanoylphorbol-13-acetate (TPA) on the cultured astrocyte morphology.(omitted)
Kim, Hyun-Wook;Park, Seung Nam;Moon, Younghye;Oh, Seung Hak;Rhyu, Im Joo
Applied Microscopy
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제43권3호
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pp.117-121
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2013
Mitochondrion is an important intracellular organelle controlling energy production essential for cell survival. In addition, it is closely related to cellular apoptosis and necrosis. Linear, branched, circular, and ball-shaped mitochondria have been reported. Recent research suggests that mitochondrial morphology may reflect functional status of the cell. In this study, we investigated the density and ratio of the each morphological categories of mitochondria in a few normal cultured cells; astrocyte, HeLa and COS7 cells, of which metabolic activities are different, with high voltage electron microscopy. The absolute number and relative number per unit area of mitochondria was largest in astrocyte. But, the proportion of different mitochondrial shape was similar among cells. These results shows the numerical profiles but not morphological profiles of mitochondria are related to the metabolic activity of each cell line.
Williams, Alun;Gow, Adam;Kilpatrick, Scott;Tivers, Mickey;Lipscomb, Vicky;Smith, Ken;Day, Michael Oliver;Jeffery, Nick;Mellanby, Richard John
Journal of Veterinary Science
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제21권3호
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pp.44.1-44.10
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2020
Background: Congenital portosystemic shunt (cPSS) is one of the most common congenital disorders diagnosed in dogs. Hepatic encephalopathy (HE) is a frequent complication in dogs with a cPSS and is a major cause of morbidity and mortality. Despite HE been a major cause of morbidity in dogs with a cPSS, little is known about the cellular changes that occur in the central nervous system of dogs with a cPSS. Objectives: The objective of this study was to characterise the histological changes in the cerebral cortex and cerebellum of dogs with cPSS with particular emphasis on astrocyte morphology. Methods: Eight dogs with a confirmed cPSS were included in the study. Results: Six dogs had substantial numbers of Alzheimer type II astrocytes and all cases had increased immunoreactivity for glial fibrillary acidic protein in the cerebral cortex, even if there were minimal other morphological changes. Conclusions: This study demonstrates that dogs with a cPSS have marked cellular changes in the cerebral cortex and cerebellum. The cellular changes that occur in the cerebral cortex and cerebellum of dogs with spontaneously arising HE are similar to changes which occur in humans with HE, further validating dogs with a cPSS as a good model for human HE.
Thirtyfour species of Korean medicinal plants which have been frequently used in oriental herb prescriptions were evaluated on their cytotoxicity and potential antitumor activities against AC glioma(9 ASK) in vitro. Dose of $100{\mu}g/ml$ of plant extracts appeared to exhibit slight cytotoxicity. Seven plant extracts, Aralia continentalis(Araliaceae), Lycium chinensis(Solanaceae), Epimedium koreanum(Berberidaceae), Platyodon grandiflorium(Campanulaceae), Pleuropterus multiflorus(Polygonaceae), Rheum undulatun(Polygonaceae) and Scutellaria baicalensis(Laminaceae), exhibited significant reversal$(51{\sim}90%)$ of astrocyte formation into original neuroglial cells' morphology through the prescreen tests.
Injury to brain transforms resting astrocytes to their reactive form, the hallmark of which is an increase in glial fibrillary acidic protein (GFAP), the major intermediate filament protein of their cell type. The overall glial response after brain injury is referred to as reactive gliosis. Glial-neuronal interaction is important for neuronal migration, neurite outgrowth and axonal guidance during ontogenic development. Although much attention has been given to glial regulation of neuronal development and regeneration, evidences also suggest a neuronal influence on glial cell differentiation, maturation and function. The aim of the present study was to analyze the effects of glial-hippocampal neuronal co-culture on GFAP expression in the co-cultured astrocytes. The following antibodies were used for double immunostaining chemistry; mouse monoclonal antibodies for confirm neuronal cells, rabbit anti GFAP antibodies for confirm astrocytes. Primary cultured astrocytes showed the typical flat polygonal morphology in culture and expressed strong GFAP and vimentin. Co-cultured hippocampal neurons on astrocytes had phase bright cell body and well branched neurites. About half of co-cultured astrocytes expressed negative or weak GFAP and vimentin. After 2 hour glutamate (0.5 mM) exposure of glial-neuronal co-culture, neuronal cells lost their neurites and most of astrocytes expressed strong CFAE and vimentin. In Western blot analysis, total GFAP and vimentin contents in co-cultured astrocytes were lower than those of primary cultured astrocytes. After glutamate exposure of glial-neuronal co-culture, GFAP and vimentin contents in astrocytes were increased to the level of primary cultured astrocytes. These results suggest that neuronal cell decrease GFAP expression in co-cultured astrocytes and hippocampal neuronal-glial co-culture can be used as a reactive gliosis model in vitro for studying GFAP expression of astrocytes.
One of the most extensively studied populations of multipotent adult stem cells are mesenchymal stem cells (MSCs). MSCs derived from the human umbilical cord vein (HUC-MSCs) are morphologically and immunophenotypically similar to MSCs isolated from bone marrow. HUC-MSCs are multipotent stem cells, differ from hematopoietic stem cells and can be differentiated into neural cells. Since neural tissue has limited intrinsic capacity of repair after injury, the identification of alternate sources of neural stem cells has broad clinical potential. We isolated mesenchymal-like stem cells from the human umbilical cord vein, and studied transdifferentiation-promoting conditions in neural cells. Dopaminergic neuronal differentiation of HUC-MSCs was also studied. Neural differentiation was induced by adding bFGF, EGF, dimethyl sulfoxide (DMSO) and butylated hydroxyanisole (BHA) in N2 medium and N2 supplement. The immunoreactive cells for $\beta$-tubulin III, a neuron-specific marker, GFAP, an astrocyte marker, or Gal-C, an oligodendrocyte marker, were found. HUC-MSCs treated with bFGF, SHH and FGF8 were differentiated into dopaminergic neurons that were immunopositive for tyrosine hydroxylase (TH) antibody. HUC-MSCs treated with DMSO and BHA rapidly showed the morphology of multipolar neurons. Both immunocytochemistry and RT-PCR analysis indicated that the expression of a number of neural markers including NeuroD1, $\beta$-tubulin III, GFAP and nestin was markedly elevated during this acute differentiation. While the stem cell markers such as SCF, C-kit, and Stat-3 were not expressed after neural differentiation, we confirmed the differentiation of dopaminergic neurons by TH/$\beta$-tubulin III positive cells. In conclusion, HUC-MSCs can be differentiated into dopaminergic neurons and these findings suggest that HUC-MSCs are alternative cell source of therapeutic treatment for neurodegenerative diseases.
손상된 뇌신경조직내에서 신경줄기세포로부터 새로운 신경세포로의 분화가 상당히 제한되어 있어 이것이 손상된 뇌신경조직의 복구가 잘 이루어지지 않는 원인이라 여겨지고 있다. 본 연구에서는 세포배양을 통해 지방조직 중간엽 줄기세포를 도파민성 신경세포와 콜린성 신경세포로 분화를 유도하였다. 중간엽 줄기세포를 신경세포로 분화시키기 위해 N2배양액에 bFGF, EGF, dimethyl sulphoxide (DMSO)와 butylated hydroxyanisole (BHA)를 첨가하여 유도하였다. DMSO와 BHA에 처리된 중간엽 줄기세포가 빠르게 신경세포 모양으로 분화하는 것을 관찰하였으며, 이것은 면역조직학적 염색에서 신경세포 특이 표지인 $\beta$-tubulin III, 별아교세포에 대한 특이 표지인 GFAP, 흰돌기아교세포에 대한 특이 표지인 Gal-C에 대해 양성반응을 나타내었다. RT-PCR 분석에서 배양 단계에 따라 신경세포에 특이적인 표지 인자인 neuro D1, $\beta$-tubulin III, GFAP, nestin 등의 발현을 통해, 중간엽 줄기세포가 신경세포로 분화됨을 확인하였다. 그러나 중간엽줄기세포가 신경세포로 분화된 이후에는 줄기세포 표지인 SCF, C-kit와 stat-3 등은 발현되지 않았다. 또한, 중간엽줄기세포에 bFGF, SHH와 FGF8 등을 처리하면 도파민 신경세포로 분화하였다. 중간엽 줄기세포에 bFGF, RA, Shh를 처리하여 콜린성 신경세포로 분화시켰을 때, 신경세포 특이 표지인 $\beta$-tubulin III와 콜린성 신경 특이 표지인 ChAT에 양성반응를 보였다. 결론적으로 사람 지방조직의 중간엽 줄기세포가 도파민성과 콜린성 신경세포로 분화가 가능하고 이러한 잠재성을 가진 지방 유래 중간엽 줄기세포는 퇴행성 신경질환에 대한 세포 치료제로서 가능성을 제시한다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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