Objectives: Measurement of the incidence of the human immunodeficiency virus (HIV) is very important for epidemiological studies. Here, we determined the recency period with the AxSYM avidity assay and the BED-capture enzyme immunoassay (BED-CEIA) in Korean seroconverters. Methods: Two hundred longitudinal specimens from 81 seroconverters with incident HIV infections that had been collected at the Korea National Institute of Health were subjected to the AxSYM avidity assay (cutoff = 0.8) and BED-CEIA (cutoff = 0.8). The statistical method used to estimate the recency period in recent HIV infections was nonparametric survival analyses. Sensitivity and specificity were calculated for 10-day increments from 120 days to 230 days to determine the recency period. Results: The mean recency period of the avidity assay and BED-CEIA using a survival method was 158 days [95% confidence interval (CI), 135-181 days] and 189 days (95% CI, 170-208 days), respectively. Based on the use of sensitivity and specificity, the mean recency period for the avidity assay and BED-CEIA was 150 days and 200 days, respectively. Conclusion: We determined the recency period to estimate HIV incidence in Korea. These data showed that the nonparametric survival analysis often led to shorter recency periods than analysis of sensitivity and specificity as a new method. These findings suggest that more data from seroconverters and other methodologies are needed to determine the recency period for estimating HIV incidence.
Ji-Su Baek;Jong-Min Kim;Hye-Ryung Kim;Yeun-Kyung Shin;Oh-Kyu Kwon;Hae-Eun Kang;Choi-Kyu Park
한국동물위생학회지
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제46권2호
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pp.123-135
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2023
Feline calicivirus (FCV) is considered the main viral pathogen of feline upper respiratory tract disease (URTD). The frequent mutations of field FCV strains result in the poor diagnostic sensitivity of previously developed molecular diagnostic assays. In this study, a more sensitive real-time reverse transcription-polymerase chain reaction (qRT-PCR) assay was developed for broad detection of currently circulating FCVs and comparatively evaluated the diagnostic performance with previously developed qRT-PCR assay using clinical samples collected from Korean cat populations. The developed qRT-PCR assay specifically amplified the FCV p30 gene with a detection limit of below 10 copies/reaction. The assay showed high repeatability and reproducibility, with coefficients of intra-assay and inter-assay variation of less than 2%. Based on the clinical evaluation using 94 clinical samples obtained from URTD-suspected cats, the detection rate of FCV by the developed qRT-PCR assay was 47.9%, which was higher than that of the previous qRT-PCR assay (43.6%). The prevalence of FCV determined by the new qRT-PCR assay in this study was much higher than those of previous Korean studies determined by conventional RT-PCR assays. Due to the high sensitivity, specificity, and accuracy, the new qRT-PCR assay developed in this study will serve as a promising tool for etiological and epidemiological studies of FCV circulating in Korea. Furthermore, the prevalence data obtained in this study will contribute to expanding knowledge about the epidemiology of FCV in Korea.
Background: Missing isoniazid (INH) resistance during tuberculosis (TB) diagnosis can worsen the outcomes of INH-resistant TB. The BD MAX MDR-TB assay (BD MAX) facilitates the rapid detection of TB and INH and rifampin (RIF) resistance; however, data related to its performance in clinical setting remain limited. Moreover, its effect on treatment outcomes has not yet been studied. Methods: We compared the performance of BD MAX for the detection of INH/RIF resistances to that of the line probe assay (LPA) in patients with pulmonary TB (PTB), using the results of a phenotypic drug sensitivity test as a reference standard. The treatment outcomes of patients who used BD MAX were compared with those of patients who did not. Results: Of the 83 patients included in the study, the BD MAX was used for an initial PTB diagnosis in 39 patients. The sensitivity of BD MAX for detecting PTB was 79.5%. The sensitivity and specificity of BD MAX for INH resistance were both 100%, whereas these were 50.0% and 95.8%, respectively, for RIF resistance. The sensitivity and specificity of BD MAX were comparable to those of LPA. The BD MAX group had a shorter time interval from specimen request to the initiation of anti-TB drugs (2.0 days vs. 5.5 days, p=0.001). Conclusion: BD MAX showed comparable performance to conventional tests for detecting PTB and INH/RIF resistances. The implementation of BD MAX as a diagnostic tool for PTB resulted in a shorter turnaround time for the initiation of PTB treatment.
An HPLC assay method of a drug to be applied to the pharmacokinetic studies of the drug should be completely validated. The validation process for an HPLC assay method in a biological sample was discussed using the data obtained from the development of HPLC method for the simultaneous quantitation of verapamil and norverapamil in human serum. The validation criteria included were specificity, linearity, accuracy, precision, sensitivity, recovery, drug stability, and ruggedness of an assay method.
In spite of the development of highly sophisticated instrument, the precise quantitation of plant hormones still has many difficulties. Due to their high specificity, sensitivity and minimal sample purification steps, immunological assays have been widely applied for plant hormone assay. Enzme-linked immunosorbent assay technique for the determination of plant hormones was developed by Voller in 1978. Immunological assays are accomplished by competition of labeled tracer antigen and unlabeled antigen for a limited number of specific antibodies. The use of enzyme as replacement labels for radioisotopes enabled much of the sensitivity and specificity of radioimmunoassay (RIA) to be retained but without the inherent disadvantage of high capital cost, potential health hazard, and short shelf life of the labeled reactants.
Human enteric Adenovirus 41 (HueAdV-41) is a major waterborne virus that causes human gastroenteritis and is classified as a viral group I double-strand DNA virus, Adenoviridae. HueAdV-41 has been detected with the polymerase chain reaction (PCR) in various samples such as ground water. However, the PCR-based diagnostic method has problems such as reaction time, sensitivity, and specificity. Thus, the loop-mediated isothermal amplification (LAMP) assay has emerged as an excellent method for field applications. In this study, we developed a LAMP system that can rapidly detect HueAdV-41 with high specificity and sensitivity. HueAdV-41 specific LAMP primer sets were tested through a specific, non-specific selection and sensitivity test for three prepared LAMP primer sets, of which only one primer set and optimum reaction temperature were selected. The developed LAMP primer set condition was confirmed as 63℃, and the sensitivity was 1 copy. In addition, to confirm the system, a LAMP positive reaction was developed with the restriction enzyme Taq I (T/GCC). The developed method in this study was more specific, rapid (typically within 2 - 3 hours), and highly sensitive than that of the conventional PCR method. To evaluate and verify the developed LAMP assay, an artificial infection test was done with five cDNAs from groundwater samples, and the results were compared to those of the conventional PCR method. We expect the developed LAMP primer set will be used to diagnose HueAdV-41 from various samples.
An immunoassay may be defined as an analytical procedure involving the competitive reaction between a limiting concentration of specific antibody and two populations of antigen, one of which is labelled or immobillized. The advent of immunoassay has revolutionised our knowledge of reproductive physiology and the practice of veterinary and clinical medicine. Radioimmunoassay (RIA) was the first of these methods to be developed, which meausred the analyte with good sensitivity, accuracy and precision (1,2). The essential components of RIA are:-(i) a limited concentration of antibodies, (ii) a reference preparation, and (iii) an antigen labelled with a radioisotope (usually tritium or iodine-125). Most procedures invelove isolating the antibody-bound fraction and measuring the amount of labelled antigen. Good facilities are available for scintilltion counting, data reduction nd statistical analysis. RIA is undergoing refinement through:-(i) the introduction of new techniques to separate the antibody-bound and free fractions which minimize the misclassification of labelled antigen into these compartments, and the amount of non-specfic binding. (3), (ii) the development of non-extration for the measurement of haptens (4), (iii) the determination of a, pp.rent free (i.e. non-protein bound) analytes (5), and (iv) the use of monoclonal antibodies(6). In 1968, Miles and Hales introduced in important new type of immunoassay which they termed immunora-diometric assay (IRMA) based on t도 use of isotopically labelled specific antibodies(7) in a move from limited to excess reagent systems. The concept of two-site IRMAs (with a capture antibody on a solid-phase, and a second labelled antibody to a different antigenic determinant of the analyte) has enabled the development of more sensitive and less-time consuming methods for the measurement of protein hormones ovar wide concentration of analyte (8). The increasing use of isotopic methos for diverse a, pp.ications has exposed several problems. For example, the radioactive half-life and radiolysis of the labelled reagent limits assay sensitivity and imposes a time limit on the usefulness of a kit. In addition, the potential health hazards associated with the use and disposal of radioactive cmpounds and the solvents and photofluors necessary for liquid scientillation counting are incompatable with the development of extra-laboratory tests. To date, the most practical alternative labels to radioisotopes, for the measurement of analytes in a concentration > 1 ng/ml, are erythrocytes, polystyrene particiles, gold sols, dyes and enzymes or cofactors with a visual or colorimetric end-point(9). Increased sensitivity to<1 pg/ml may be obtained with fluorescent and chemiluminescent labels, or enzymes with a fluorometric, chemiluminometric or bioluminometric end-point. The sensitivity of any immunoassay or immunometric assay depends on the affinity of the antibody-antigen reaction, the specific activity of the label, the precision with which the reagents are manipulated and the nonspecific background signal (10). The sensitivity of a limited reagent system for the measurement of haptens or proteins is mainly dependent upon the affinity of the antibodies and the smalleest amount of reagent that may be manipulated. Consequently, it is difficult in practice to improve on the sensitivity obtained with iodine-125 as the label. Conversely, with excess reagent systems for the measurement of proteins it is theoretically possible to increase assay sensitivity at least 1000 fold with alternative luminescent labels. To date, a 10-fold improvement has been achieved, and attempts are being made to reduce the influence of other variables on the specific signal from the immunoreaction.
Three different methods of bacterial viability monitoring were compared to detect chemically or thermally inactivated Escherichia coli. Direct colony enumeration, live/dead bacterial cell staining with a fluorescent dye, and the dehydrogenase activity assay were compared with respect to their ease of use and time required to perform the three different tests. The green (live cell)/red (dead cell) ratio obtained from the fluorescent bacterial cell staining approach showed a linear relationship with the colony forming units; the result obtained with dehydrogenase was similar to those. The sensitivity of the monitoring methods to detect bacterial deactivation varied with different disinfection conditions. After thermal treatment, the sensitivity of the staining approach was lower, while that of the dehydrogenase activity assay was the highest. After chemical treatment, the sensitivity of detection for both methods was similar.
Wu, Yao-Dong;Wang, Qi-Qi;Wang, Meng;Elsheikha, Hany M.;Yang, Xin;Hu, Min;Zhu, Xing-Quan;Xu, Min-Jun
Parasites, Hosts and Diseases
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제59권2호
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pp.167-171
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2021
Haemonchosis remains a significant problem in small ruminants. In this study, the assay of recombinase polymerase amplification (RPA) combined with the lateral flow strip (LFS-RPA) was established for the rapid detection of Haemonchus contortus in goat feces. The assay used primers and a probe targeting a specific sequence in the ITS-2 gene. We compared the performance of the LFS-RPA assay to a PCR assay. The LFS-RPA had a detection limit of 10 fg DNA, which was 10 times less compared to the lowest detection limit obtained by PCR. Out of 24 goat fecal samples, LFS-RPA assay detected H. contortus DNA with 95.8% sensitivity, compared to PCR, 79.1% sensitivity. LFS-RPA assay did not detect DNA from other related helminth species and demonstrated an adequate tolerance to inhibitors present in the goat feces. Taken together, our results suggest that LFS-RPA assay had a high diagnostic accuracy for the rapid detection of H. contortus and merits further evaluation.
Among semi-quantitative or fully quantitative lateral flow assay readers, an image sensor-based instrument has been widely used because of its simple setup, cheap sensor price, and compact equipment size. For all previous approaches, monochrome CCD or CMOS cameras were used for lateral flow assay imaging in which the overall intensities of all colors were taken into consideration to estimate the analyte content, although the analyte related color information is only limited to a narrow wavelength range. In the present work, we introduced a color CCD camera as a sensor and a color decomposition method to improve the sensitivity of the quantitative biosensor system which utilizes the lateral flow assay successfully. The proposed setup and image processing method were applied to achieve the quantification of imitatively dispensed particles on the surface of a porous membrane first, and the measurement result was then compared with that using a monochrome CCD. The compensation method was proposed in different illumination conditions. Eventually, the color decomposition method was introduced to the commercially available lateral flow immunochromatographic assay for the diagnosis of myocardial infarction. The measurement sensitivity utilizing the color image sensor is significantly improved since the slopes of the linear curve fit are enhanced from 0.0026 to 0.0040 and from 0.0802 to 0.1141 for myoglobin and creatine kinase (CK)-MB detection, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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