Tolaasin, a pore-forming peptide toxin, is produced by Pseudomonas tolaasii and causes brown blotch disease of the cultivated mushrooms. P. tolaasii 6264 was isolated from the oyster mushroom damaged by the disease in Korean. In order to isolate tolaasin molecules, the supernatant of bacterial culture was harvested at the stationary phase of growth. Tolaasin was prepared by ammonium sulfate precipitation and three steps of chromatograpies, including a gel permeation and two ion exchange chromatographies. Specific hemolytic activity of tolaasin was increased from 1.7 to 162.0 HU $mg^{-1}$ protein, a 98-fold increase, and the purification yield was 16.3%. Tolaasin preparation obtained at each purification step was analyzed by HPLC and SDS-PAGE. Two major peptides were detected from all chromatographic preparations. Their molecular masses were analyzed by MALDI-TOF mass spectrometry and they were identified as tolaasin I and tolaasin II. These results demonstrate that the method used in this study is simple, time-saving, and successful for the preparation of tolaasin.
Agmatine iminohydrolase (EC 3.5.3.12) catalyzes the hydrolysis of agmatine into putrescine. The enzyme seems to be one of the critical enzymes in putrescine biosynthesis. The enzyme was purified to homogeneity from Panax ginseng C.A. Meyer by combined method of ammonium sulfate 1 fractionation, DEAR anion exchange column, hydroxyapatite column and agmatine carboxyhexyl Sepharose 4B affinity column. The molecular weight estimated by native pore gadient polyacrylamide gel electrophoresis was 71, 000 Dalton, while that estimated by SDS-PAGE was 70, 000 Dalton, indicating a monomeric enzyme. The optimal pH and temperature were 9.0 and 37$^{\circ}C$, respectively. The Km and 1 Vmax for agmatine were 8.3 mM and 14.4 nmole/hr, respectively. Heat stability of this enzyme was high. The enzyme was observed to be inhibited by polyamines such as putrescine, cadaverine, spermidine and spermine. Especially, putrescine was a potent inhibitor of the purified enzyme. These results suggest that polyamines could be important in growth regulation of Panax ginseng C.A. Meyer.
High density lipophorin-L (HDLP-L) was purified from the hemolymph of Bombyx modi using KBr density gradient ultracentrifugation and gel permeation chromatographv (Sephadex G-2001. Lipophorin has native molecular weight of 730 Nd and consists of Apo-Lp I and Apo-Lp II with molecular weights of 250 Kd and 90 Kd, respectively. Lp contains large amounts of glutamine & glutamic acid, threonine, leucine but small amounts of cysteic acid & oxidized cystine, tyrosine, methionine. Lp also contains diacylglycerol, cholesterol, phosphatidylcholine, and phosphatidylethanolamine. Anti-lipophorin showed positive reaction with fat body and ovarial extracts and also revealed immunological identity with lipophorin of Fall webworm, Hyphantria cunea. Lipophorin maintains constant level during larval and pupal stapes but greatlv increases during adult stage in both male and female. Apo-Lp III was purified from adult hemolymph. Hemolymph was subjected to KBr ultracentrifusation and Lp-free fraction was submitted to cation exchange chromatosraphy after ammonium sulfate precipitation. Apo-Lp III has molecular weight of 17 Kd, and similar amino acid composition ar those of other species Lp but contains high amounts of tryptophan which other are tacking in.
Pleuratus ostreatus로부터 ascorbate oxidizing enzyme을 황산암모늄 침전, preparative polyacrylamide gel 전기영동, DEAE Sepharose CL-6B 이온교환크로마토그라피, Sephadex G-150 gel 여과크로마토그라피의 단계를 거쳐 순수분리 하였다. 이 효소의 분자량은 gel 여과크로마토그라피에 의하여 140,000 정도로, 효소의 소단위 분자량은 SDS-polyacrylamide gel 전기영동에 의하여 66,000 정도로 추정되었다. Isoelectric focusing에 의하여 이 효소는 6.0의 등전점을 갖는 것으로 밝혀졌고, 최적반응온도는 $85^{\circ}C$ 정도, 최적반응 pH는 5.2 정도인 것으로 나타났다. 본 효소는 L-ascorbic acid와 D-isoascorbic acid에 대하여 동일한 친화도를 갖는 것으로 보이며, Km값은 두가지 기질에 대해 모두 2.2µM 이였다.
Two novel calcium-binding proteins, named CAB-I and CAB-II, have been isolated from Streptomyces coelicolor. Purification of the calcium-binding proteins involved heat treatment, fractionation with ammonium sulfate, acid treatment, anion exchange and hydrophobic interaction column chromatography, FPLC gel filtration, and preparative isoelectric focusing. A chelex competitive assay and 45Ca autoradiography verified the calcium-binding ability of the proteins. The major band CAB-II has an apparent molecular weight of 26,000 determined by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and 340,000 determined by gel filtration. The isoelectric point of this molecule showed the acidic nature of the molecule. N-terminal amino acid sequence analysis shows homology to rat Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase-II (CAB-II) and yeast phosphoprotein phosphatase (CAB-I).
Aspergillus sp. SB-2704 was selected for its strong polygalacturonase activity among various strain of mold found in soil. It was found that production of polygalacturonase reached to maximum when the wheat bran medium containing 1% polypepton, 1% glucose, and 0.2% FeSO4 were cultured for 3 days at 35$^{\circ}C$. Polygalacturonase was purified 20.90 fold from Aspergillus SB-2704. The purification procedures include ammonium sulfate treatment, gel filtration on Sephdex G-150 and DEAE-cellulose ion exchange chromatography. Yield of the enzyme purification was 4.34%. Purified enzyme was confirmed as a single band by the polyacrylamide gel electrophoresis. When the purified enzyme was applied to SDS-polyacrylamide gel electrophoresis, the molecular weight was estimated to be 36,000. The optimum pH for the enzyme activity was 5.5 and optimum temperature was 5$0^{\circ}C$. The enzyme is stable in acidic condition. The activity of purified enzyme was inhibited by Pb2+, Hg2+ and Ba2+, whereas activated by Cu2+, Mn2+, Mg2+ and Fe2+. The activity of polygalacturonase was inhibited by the treament wit maleic anhydride, iodine, and EDTA. The result indicate the possible involvement of histidine and metal ion at active site.
Superoxide dismutase (SOD) was purified to homogeneity from fruiting bodies of edible mushroom, Lentinus edodes, by ammonium sulfate precipitation, diethylaminoethyl (DEAE)-Sepharose FF ion-exchange chromatography, Sephacryl S-200 gel filtration chromatography, and preparative PAGE. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be approximately 54 kDa by gel filtration chromatography, and the enzyme was shown to be consisted of two identical subunits of molecular weight 27 kDa by SDS-PAGE. The isoelectric point of the enzyme was 4.9 as determined by isoelectric focusing. The enzyme had optimal pH and temperature of pH 8.0 and $20^{\circ}C$, respectively. The activity of the enzyme was inhibited by hydrogen peroxide, but inhibited less by cyanide and azide. The native enzyme was found to contain 0.89g-atom of iron, 0.75g-atom of zinc, and 0.46g-atom of copper per mol of enzyme. Analysis of amino acids composition revealed that the SOD from L. edodes contained a relatively large amount of glutamic acid/glutamine, proline, cysteine, isoleucine, and leucine, but only a small amount of aspartic acid/asparagine, tyrosine, and tryptophan when compared to the other iron-containing SODs.
A bacterial strain L1 producing a thermostable esterase was isolated from soil taken near a hot spring and identified as Bacillus stearothermophilus by its microbiological properties. The isolated thermostable esterase was purified by ammonium sulfate fractionation, ion .exchange and hydrophobic interaction chromatographies. The molecular weight of the purified enzyme was estimated to be 50,000 by SDS-PAGE. Its optimum temperature and pH for hydrolytic activity against PNP caprylate were $85^{\circ}C$ and 9.0, respectively. The purified enzyme was stable up to $70^{\circ}C$ and at a broad pH range of 4.0-11.5 in the presence of bovine serum albumin. The enzyme was inhibited by phenylmethylsulfonyl fluoride and diethyl p-nitrophenyl phosphate, indicating the enzyme is a serine esterase. The enzyme obeyed Michaelis-Menten kinetics in the hydrolysis of PNPEs and had maximum activity for PNP caproate ($C_6$) among PNPEs ($C_2-C_12$) tested.
A $\beta$-glucosidase from the algal lytic bacterium Sinorhizobium kostiense AFK-13, grown in complex media containing cellobiose, was purified to homogeneity by successive ammonium sulfate precipitation, and anion-exchange and gel-filtration chromatographies. The enzyme was shown to be a monomeric protein with an apparent molecular mass of 52 kDa and isoelectric point of approximately 5.4. It was optimally active at pH 6.0 and $40^{\circ}C$ and possessed a specific activity of 260.4 U/mg of protein against $4-nitrophenyl-\beta-D-glucopyranoside$(pNPG). A temperature-stability analysis demonstrated that the enzyme was unstable at $50^{\circ}C$ and above. The enzyme did not require divalent cations for activity, and its activity was significantly suppressed by $Hg^{+2}\;and\;Ag^+$, whereas sodium dodecyl sulfate(SDS) and Triton X-100 moderately inhibited the enzyme to under 70% of its initial activity. In an algal lytic activity analysis, the growth of cyanobacteria, such as Anabaena flos-aquae, A. cylindrica, A. macrospora, Oscillatoria sancta, and Microcystis aeruginosa, was strongly inhibited by a treatment of 20 ppm/disc or 30 ppm/disc concentration of the enzyme.
Kim, Hyo-Kyung;Ha, Young-Ran;Yu, Hak-Sun;Kong, Hyun-Hee;Chung, Dong-Il
Parasites, Hosts and Diseases
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제41권4호
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pp.189-196
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2003
In order to evaluate the possible roles of secretory proteases in the pathogenesis of amoebic keratitis, we purified and characterized a serine protease secreted by Acanthamoeba lugdunensis KA/E2, isolated from a Korean keratitis patient The ammonium sulfate-precipitated culture supernatant of the isolate was purified by sequential chromatography on CM-Sepharose, Sephacryl S-200, and mono Q-anion exchange column. The purified 33 kDa protease had a pH optimum of 8.5 and a temperature optimum of $55^{\circ}C$. Phenylmethylsulfonylfluoride and 4-(2-Aminoethyl)-benzenesulfonyl-fluoride, both serine protease specific inhibitors, inhibited almost completely the activity of the 33 kDa protease whereas other classes of inhibitors did not affect its activity. The 33 kDa enzyme degraded various extracellular matrix proteins and serum proteins. Our results strongly suggest that the 33 kDa serine protease secreted from this keratopathogenic Acanthamoeba play important roles in the pathogenesis of amoebic keratitis, such as in corneal tissue invasion, immune evasion and nutrient uptake.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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