International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제6권2호
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pp.151-155
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2003
Using gel filtration chromatography, high molecular silk fibroin with high purity was obtained and silk flbroin microsphere particles (SFMP) could be simply made by spray dryer method. Also, some of the physicochemical properties of SFMP and morphology were investigated. The average molecular weight of pure silk fibroin protein dissolved in calcium chloride is about 61,500g/㏖ as measured by gel permeation chromatography. SFMP was spherical in shape, and particles, sized average of 2 ${\pm}$ 10 ${\mu}$, were observed by SEM and particle analyzer, respectively. Obtaining microspheres particles by spray dryer method accelerated the transition from the random coil to the $\beta$-sheet structure during spray dryer treatment. It was identified by the basic fourier transform infrared spectroscopy of SFMP. The swelling ratio of SFMP is majorly dependent on the pH of the solution, not on the occurred gelation. The characteristic structure, which might be applicable to immobilization of drugs is superior to other matrix materials for the use of biomaterials with skin affinity.
Bacillus subtilis YL-1004 was isolated from soil for the development of agents to control dental caries. This strain produced an extracellular lytic enzyme that hydrolyzed the Streptococcus mutans cell wall. The lytic enzyme was purified to homogeneity by affinity chromatography and gel permeation chromatography to give a single band on SDS-PAGE and non-denaturing polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight of the enzyme was deduced from SDS-PAGE and gel chromatography to be 38 kDa and the PI to be 4.3 from isoelectric focusing. Sirty $\%$ of its lytic activity remained after incubation at $50^{\circ}C$ for 30 min, and its optimal temperature was $37^{\circ}C$ . The enzyme showed its highest activity at pH 8.0 and was stable at pHs ranging from 4.0 to 9.0. Treatment with several modifiers showed that a cysteine residue was involved in the active site of the enzyme. This lytic enzyme from Bacillus subtilis YL-1004 exhibited specificity towards Streptococci and also showed autolytic activity on Bacillus subtilis YL-1004.
The purpose of present study was to examine the efficacy of PAB (para-amino benzamidine) affinity column chromatography, pasteurization ($60^{\circ}C$ heat treatment for 10 h), and lyophilization steps, employed in the manufacture of urokinase from human urine, in the removal and/or inactivation of urine-born viruses. Bovine herpes virus (BHV) and Murine encephalomyocarditis virus (EMCV) were selected for this study. Samples from the relevant stages of the production process were spiked with the viruses and the amount of virus in each fraction was quantified by 50% tissue culture infectious dose ($TCID_{50}$). BHV and EMCV were effectively partitioned from urokinase during PAB chromatography with the log reduction factors of 6.71 and 5.27, respectively. Pasteurization was a robust and effective step in inactivating BHV and EMCV, of which titers were reduced from initial titers of $8.65\;log_{10}\;TCID_{50}$ and $7.81\;log_{10}\;TCID_{50}$, respectively, to undetectable levels within 1 hour of treatment. The log reduction factors achieved during lyophilization were 2.06 for BHV and 4.54 for EMCV. These results indicate that the production process for urokinase has sufficient virus reducing capacity to achieve a high margin of virus safety.
말징버섯 Calvatia craniformis의 culture broth 40 liter를 여과하여 얻은 균사채를 열수 추출하여 진한 갈색 건조분말(Fr. A) 13.1g을 분리하였다. Fr. A에 대하여 DEAE-cellulose ion chromatography를 시행하여 중성분획인 흰색 분말 (Fr. B) 2.50g을, 산성분획인 갈색 분말 (Fr. C) 3.50g을 각각 분리하였다. Fr. B 500mg에 대하여 Sepharose CL-4B gel filtration chromatography를 시행하여 흰색분말 Fr. D(Calvatan) 350mg을 분리하였다. Calvatan 350mg에 대하여 Con A-Sepharose 4B affinity chromatography를 적용하여 미흡착 분획인 Fr. F($\alpha$-form)와 흡착 분획인 Fr. E ($\beta$-form)로 정제하였다. 항암작용의 기전을 구명하고자 마우스에 대하여 면역학적 실험을 시행하였다. macrophage의 활성에 대한 영향을 조사하였던 바, 투여군의 활성화된 macrophage에 의해 유리되는 superoxide anion의 양은 대조군에 비해 1.4배 증가하였고 Calvatan 투여군의 용혈반 형성세포(PFC)는 대조군에 비해 3.1배 증가하였다. 화학 분석에 의해, Calvatan은 다당체 87.2%, 단백질 1.8% 및 hexosamine 1.3%로 구성되어 있었다. 따라서 항암성 분획들은 protein-bound polysaccharide임을 알 수 있었다. 또한 각 분획의 다당체를 구성하고 있는 단당류는 glucose, galactose, mannose 및 xylose 였으며 단백질 부분은 16종의 아미노산으로 구성되어 있었다. IR 스펙트럼은 3300-3400 $cm^{-1}$에서 0-H stretching frequency, 2900 $cm^{-1}$ 에서 C-H stretching frequency, 1630 $cm^{-1}$ 에서 C-0 stretching frequency. 1000-1100 $cm^{-1}$에서 C-H 및 C-0 bending frequency를 나타내는 다당체의 전형적인 특성을 보여주었다.을 보여주었다.
Pleuratus ostreatus로부터 ascorbate oxidizing enzyme을 황산암모늄 침전, preparative polyacrylamide gel 전기영동, DEAE Sepharose CL-6B 이온교환크로마토그라피, Sephadex G-150 gel 여과크로마토그라피의 단계를 거쳐 순수분리 하였다. 이 효소의 분자량은 gel 여과크로마토그라피에 의하여 140,000 정도로, 효소의 소단위 분자량은 SDS-polyacrylamide gel 전기영동에 의하여 66,000 정도로 추정되었다. Isoelectric focusing에 의하여 이 효소는 6.0의 등전점을 갖는 것으로 밝혀졌고, 최적반응온도는 $85^{\circ}C$ 정도, 최적반응 pH는 5.2 정도인 것으로 나타났다. 본 효소는 L-ascorbic acid와 D-isoascorbic acid에 대하여 동일한 친화도를 갖는 것으로 보이며, Km값은 두가지 기질에 대해 모두 2.2µM 이였다.
The effect of Sodium Butyrate (NaBu) on the N-linked oligosaccharide structure of Erythropoietin (EPO) was investigated. Recombinant human EPO was produced by CHO cells grown in an $MEM{\alpha}$ medium with or without 5 mM NaBu, and purified from the culture supernatants using a heparin-sepharose affinity column and immunoaffinity column. The N-linked oligosaccharides were released enzymatically and isolated by paper chromatography. The isolated oligosaccharides were then labeled with a fluorescent dye, 2-aminobenzamide, and analyzed with MonoQ anion exchange chromatography and GlycosepN amide chromatography for the assignment of a GU (glucose unit) vague. A glycan analysis by HPLC showed that the most significant characteristic effect of NaBu was a reduction in the proportion of glycans with Sri-and tetrasialylated oligodaccharides from $21.30\%$ (tri-) and $14.86\%$ (tetra-) in the control cultures (without NaBu) to $8.72\%$ (tri-) and $1.25\%$ (tetra-) in the NaBu-treated cultures, respectively. It was also found that the proportion of asialo-glycan increased from $12.54\%\;to\;23.6\%$ when treated with NaBu.
벼잎의 산성 buffer(pH 2.8) 추출 조효소는 5개의 전기영동 band들이 PR protein으로 알려진 chitinase와 ${\beta}-1,3-glucanase$의 효소활성을 보유하고 있는 것으로 나타났다. 조효소는 DEAE-cellulose 및 chitin affinity chromatography로 염기성 및 산성 효소군으로 분획되었으며, 이들은 두 효소활성이외에도 lysozyme 활성을 보유하고 있었다. 분자량이 $14.3{\sim}66.0\;kd$ 범위인 이 두 효소군이 보유한 각 효소활성의 최적 pH와 온도를 조사해본 결과,${\beta}-1,3-glucanase$는 각각 pH 5와 $60^{\circ}C$로 동일하였으나, chitinase는 염기성 효소군에서 pH 4와 $50^{\circ}C$, 산성 효소군에서는 pH 3와 $60^{\circ}C$으로 다르게 나타나서, 전기영동 양상과 더불어 서로 상이한 효소분획인 것으로 추정되었다.
Proteolytic processing of the dengue virus serotype 2 polyprotein precursor is catalyzed by a host signal peptidase and a virus encoded two-component protease consisting of the nonstructural proteins, NS2B and NS3. We expressed in Escherichia coli the NS2B, NS3(pro) and NS2B-NS3 proteins from the dengue virus type 2 strain 16681 as N-terminal fusions with a hexahistidine affinity tag under the control of the inducible trc promoter. All fusion proteins were purified to >90% purity by detergent extraction of inclusion bodies and a single step metal chelate chromatography. Proteins were refolded on-column and recovered with yields of 0.5, 6.0 and 1.0 mg/l of E. coli culture that was grown to $OD_{600}=1.0$ for NS2B, NS3(pro) and NS2B-NS3, respectively. Purified proteins gave strong signals in Western blots using $Ni^{2+}-nitrilotriacetic$ acid as a probe for the presence of the polyHis tag. During the purification process, $(His)_{6}NS2B-NS3$ was apparently not autoproteolytically cleaved at the NS2B/NS3 site.
New proteomic techniques have been pioneered extensively in recent years, enabling the high-throughput and systematic analyses of cellular proteins in combination with bioinformatic tools. Furthermore, the development of such novel proteomic techniques facilitates the elucidation of the functions of proteins under stress or disease conditions, resulting in the discovery of biomarkers for responses to environmental stimuli. The ultimate objective of proteomics is targeted toward the entire proteome of life, subcellular localization biochemical activities, and the regulation thereof. Comprehensive analysis strategies of proteomics can be classified into three categories: (i) protein separation via 2-dimensional gel electrophoresis (2-DE) or liquid chromatography (LC), (ii) protein identification via either Edman sequencing or mass spectrometry (MS), and (iii) proteome quantitation. Currently, MS-based proteomics techniques have shifted from qualitative proteome analysis via 2-DE or 2D-LC coupled with off-line matrix assisted laser desorption ionization (MALDI) and on-line electrospray ionization (ESI) MS, respectively, toward quantitative proteome analysis. In vitro quantitative proteomic techniques include differential gel electrophoresis with fluorescence dyes. protein-labeling tagging with isotope-coded affinity tags, and peptide-labeling tagging with isobaric tags for relative and absolute quantitation. In addition, stable isotope-labeled amino acids can be in vivo labeled into live culture cells via metabolic incorporation. MS-based proteomics techniques extend to the detection of the phosphopeptide mapping of biologically crucial proteins, which ale associated with post-translational modification. These complementary proteomic techniques contribute to our current understanding of the manner in which life responds to differing environment.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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