The efficacy of adipose-derived stem cells (ASCs) on myocardial infarction is limited due to poor survival and engraftment. Integrin-mediated cell adhesion is a prerequisite for its survival and homing. ASCs expressed insufficient integrin 𝛼4, limiting their homing capacity. This study aims to characterize integrin 𝛼4+ ASC subpopulation and investigate their therapeutic efficacy in myocardial infarction. We used fluorescence-activated cell sorting to harvest integrin 𝛼4+ ASCs subpopulation, which were characterized in vitro and transplanted into myocardial infarction model. Positron emission tomography imaging were performed to measure infarction size. Cardiac cine magnetic resonance imaging was used to evaluate heart contractile function. Compared with the unfractionated ASCs, integrin 𝛼4+ ASCs subpopulation secreted a higher level of angiogenic growth factors, migrated more rapidly, and exhibited a stronger anti-apoptotic capacity. Vascular cell adhesion molecule-1 was obviously up-regulated at 3 days after myocardial infarction, which interacted with integrin α4 receptor on the surface of ASCs to enhance the survival and adhesion. Thus, we implanted unfractionated ASCs or integrin α4+ ASCs subpopulation into the 3-day infarcted myocardium. Integrin α4+ ASCs subpopulation exhibited more robust engraftment into the infarcted myocardium. Integrin α4+ ASCs subpopulation more effectively decreased infarct size and strengthen cardiac function recovery than did the unfractionated ASCs. Integrin α4+ ASCs subpopulation is superior to unfractionated ASCs in ameliorating ischemic myocardial damage in animal model. Mechanistically, their more robust engraftment into the infarct area, higher migratory capacity and their increased release of paracrine factors contribute to enhanced tissue repair.
Radiation therapy is one of the primary options for the treatment of malignant tumors. Even though it is an effective anti-cancer treatment, it can cause serious complications owing to radiation-induced damage to the normal tissue around the tumor. It was recently reported that normal stem cell response to the genotoxic stress of ionizing radiation can boost the therapeutic effectiveness of radiation by repairing damaged cells. Therefore, we focused on annexin A-1 (ANXA1), one of the genes induced by low-dose irradiation, and assessed whether it can protect adipose-derived stem cells (ADSCs) against oxidative stress-induced damage caused by low-dose irradiation and improve effectively cell survival. After confirming ANXA1 expression in ADSCs transfected with an ANXA1 expression vector, exposure to hydrogen peroxide (H2O2) was used to mimic cellular damage induced by a chronic oxidative environment to assess cell survival under oxidative conditions. ANXA1-transfected ADSCs demonstrated that increased viability compared with un-transfected cells and exhibited enhanced anti-oxidative properties. Taken together, these results suggest that ANXA1 could be used as a potential therapeutic target to improve the survival of stem cells after low-dose radiation treatment.
본 연구는 역오팔 지지체를 이용하여 인간지방유래 줄기세포의 연골 분화를 촉진하는 내용을 담고 있다. 비 다공성 구조를 가진 지지체에서 세포를 분화 시도하였을 경우 분화가 잘 촉진되지 않는 것에 비해 200 nm 정도의 균일한 구멍을 가지는 poly(D,L-lactide-co-glycolide)로 구성된 역오팔 지지체는 그 다공성 구조로 인하여 지지체의 내부까지 산소와 유기물의 수송을 가능하게 하여 지지체 내에서 어떤 유전적, 약물적 처리 없이 인간지방유래 줄기세포가 분화가 잘 되게 하는 것을 확인하였다.
Yoon, A Young;Yun, Sujin;Yang, HyeJin;Lim, Yoon Hwa;Kim, Haekwon
한국발생생물학회지:발생과생식
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제18권4호
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pp.213-224
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2014
Previously we have shown that human abdominal adipose derived-stem cells (ADSCs) could aggregate during the high-density culture in the presence of human serum (HS). In the present study, we observed that human cord blood serum (CBS) and follicular fluid (HFF) also induced aggregation. Similarly, porcine serum could induce aggregation whereas bovine and sheep sera induced little aggregation. qRT-PCR analyses demonstrated that, compared to FBS-cultured ADSCs, HS-cultured cells exhibited higher level of mRNA expression of CLDN3, -6, -7, -15, and -16 genes among the tight junction proteins. ADSCs examined at the time of aggregation by culture with HS, BSA, HFF, CBS, or porcine serum showed significantly higher level of mRNA expression of JAM2 among JAM family members. In contrast, cells cultured in FBS, bovine serum or sheep serum, showed lower level of JAM2 expression. Immunocytochemical analyses demonstrated that the aggregates of HS-cultured cells (HS-Agg) showed intense staining against the anti-JAM2 antibody whereas neither non-aggregated cells (HS-Ex) nor FBS-cultured cells exhibited weak staining. Western blot results showed that HS-Agg expressed JAM2 protein more prominently than HS-Ex and FBS-cultured cells, both of latter reveled weaker intensity. These results suggest that the aggregation property of ADSCs during high-density culture would be dependent on the specific components of serum, and that JAM2 molecule could play a role in the animal sera-induced aggregation in vitro.
The biocompatible polyurethane acrylate (PUA) nanopillars were fabricated by soft lithography using three different sizes of nanobeads (350, 500, and 1000 nm), and the human adipose-derived stem cells (hASCs) were cultured on the nanopillars. The hASCs and their various behaviors, such as cytoplasmic projections, migration, and morphology, were observed by high resolution images using a scanning electron microscope (SEM). With the accurate analysis by SEM for the controlled sizes of nanopillars, the deflections are observed at pillars fabricated with 350- and 500- nm nanobeads. These high-resolution images could offer crucial information to elucidate the complicated correlations between nanopillars and the cells, such as morphology and cytoplasmic projections.
Propyl gallate (PG) used as an additive in various foods has antioxidant and anti-inflammatory effects. Although the functional roles of PG in various cell types are well characterized, it is unknown whether PG has effect on stem cell differentiation. In this study, we demonstrated that PG could inhibit adipogenic differentiation in human adipose tissue-derived mesenchymal stem cells (hAMSCs) by decreasing the accumulation of intracellular lipid droplets. In addition, PG significantly reduced the expression of adipocyte-specific markers including peroxisome proliferator-activated receptor-${\gamma}$ (PPAR-${\gamma}$), CCAAT enhancer binding protein-${\alpha}$ (C/EBP-${\alpha}$), lipoprotein lipase (LPL), and adipocyte fatty acid-binding protein 2 (aP2). PG inhibited adipogenesis in hAMSCs through extracellular regulated kinase (ERK) pathway. Decreased adipogenesis following PG treatment was recovered in response to ERK blocking. Taken together, these results suggest a novel effect of PG on adipocyte differentiation in hAMSCs, supporting a negative role of ERK1/2 pathway in adipogenic differentiation.
Mesenchymal stem cells (MSCs) have ability to differentiate into multi-lineage cells, which confer a great promise for regenerative medicine to the cells. The aim of this study was to establish a method for isolation and characterization of adipose tissue-derived MSC (pAD-MSC) and bone marrow-derived MSC (pBM-MSC) in pigs. Isolated cells from all tissues were positive for CD29, CD44, CD90 and CD105, but negative for hematopoietic stem cell associated markers, CD45. In addition, the cells expressed the transcription factors, such as Oct4, Sox2, and Nanog by RT-PCR. pAD-MSC and pBM-MSC at early passage successfully differentiated into chondrocytes, osteocytes and adipocytes. Collectively, pig AD-MSC and BM-MSC with multipotency were optimized in our study.
Previously we observed that human adipose-derived stem cells (hADSCs) could form aggregation during culture in the presence of human serum (HS). In the present study, we have examined if the aggregation might result from the cell migration and analyzed the difference of cell adhesivity after culture in various conditions. When cells were cultured in fetal bovine serum (FBS) alone, there was no morphological change. Similarly, cells pretreated with FBS for 1 day or cultured in a mixture of FBS and HS showed little change. In contrast, cells cultured in HS alone exhibited formation of cell-free area (spacing) and/or cell aggregation. When cells cultured in FBS or pretreated with FBS were treated with 0.06% trypsin, almost cells remained attached to the dish surfaces. In contrast, when cells cultured in HS alone were examined, most cells detached from the dish by the same treatment. Treatment of cells with forskolin, isobutylmethyl xanthine (IBMX) or LY294002 inhibited the formation of spacing whereas H89 or Y27632 showed little effect. When these cells were treated with 0.06% trypsin after culture, most cells detached from the dishes as cells cultured in HS alone did. However, cells treated with IBMX exhibited weaker adhesivity than HS alone. Based on these observations, it is suggested that HS treatment might decrease the adhesivity and induce three-dimensional migration of hADSCs, in the latter of which cAMP signaling could be involved.
Purpose: Adipose tissue is located beneath the skin, around internal organs, and in the bone marrow in humans. Its main role is to store energy in the form of fat, although it also cushions and insulates the body. Adipose tissue also has the ability to dynamically expand and shrink throughout the life of an adult. Recently, it has been shown that adipose tissue contains a population of adult multipotent mesenchymal stem cells and endothelial progenitor cells that, in cell culture conditions, have extensive proliferative capacity and are able to differentiate into several lineages, including, osteogenic, chondrogenic, endothelial cells, and myogenic lineages. Materials and Methods: This study focused on endothelial cell culture from the adipose tissue. Adipose tissues were harvested from buccal fat pad during bilateral sagittal split ramus osteotomy for surgical correction of mandibular prognathism. The tissues were treated with 0.075% type I collagenase. The samples were neutralized with DMEM/and centrifuged for 10 min at 2,400 rpm. The pellet was treated with 3 volume of RBC lysis buffer and filtered through a 100 ${\mu}m$ nylon cell strainer. The filtered cells were centrifuged for 10 min at 2,400 rpm. The cells were further cultured in the endothelial cell culture medium (EGM-2, Cambrex, Walkersville, Md., USA) supplemented with 10% fetal bovine serum, human EGF, human VEGF, human insulin-like growth factor-1, human FGF-$\beta$, heparin, ascorbic acid and hydrocortisone at a density of $1{\times}10^5$ cells/well in a 24-well plate. Low positivity of endothelial cell markers, such as CD31 and CD146, was observed during early passage of cells. Results: Increase of CD146 positivity was observed in passage 5 to 7 adipose tissue-derived cells. However, CD44, representative mesenchymal stem cell marker, was also strongly expressed. CD146 sorted adipose tissue-derived cells was cultured using immuno-magnetic beads. Magnetic labeling with 100 ${\mu}l$ microbeads per 108 cells was performed for 30 minutes at $4^{\circ}C$ a using CD146 direct cell isolation kit. Magnetic separation was carried out and a separator under a biological hood. Aliquous of CD146+ sorted cells were evaluated for purity by flow cytometry. Sorted cells were 96.04% positivity for CD146. And then tube formation was examined. These CD146 sorted adipose tissue-derived cells formed tube-like structures on Matrigel. Conclusion: These results suggest that adipose tissue-derived cells are endothelial cells. With the fabrication of the vascularized scaffold construct, novel approaches could be developed to enhance the engineered scaffold by the addition of adipose tissue-derived endothelial cells and periosteal-derived osteoblastic cells to promote bone growth.
Membrane-bound HLA-G (mHLA-G) discovery on adipose derived stem cells (ADSCs) as a tolerogenic and immunosuppressive molecule was very important. Many documents have shown that HLA-G expression can be controlled via some hormones such as progesterone (P4) and estradiol (E2). Therefore, this study was designed to evaluate progesterone and estradiol effects on mHLA-G in ADSCs at restricted and combination concentrations. Three independent cell lines were cultured in complete free phenol red DMEM and subcultured to achieve sufficient cells. These cells were treated with P4, E2 and P4 plus E2 at physiologic and pregnancy concentrations for 3 days in cell culture conditions. The HLA-G positive ADSCs was measured via monoclonal anti HLA-G-FITC/ MEMG-09 by means of flow cytometry in nine groups. Data were analyzed by one way ANOVA and Tukey's post hoc tests. There were no significant values of the mean percentage of HLA-G positive cells in E2-treated and the combination of P4 plus $E_2-treated$ ADSCs compared to control cells (p value>0.05) but P4 had a significant increase on mHLA-G in ADSCs (p value<0.05). High P4 concentration increased mHLA-G but E2 and the combination of P4 plus E2 could not change mHLA-G on ADSCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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