Park, Eun-Young;Kwon, Moon-Kyung;Min, Seon-Jeong;Hwang, Hyung-Sik
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.49
no.4
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pp.451-454
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2006
Achromobacter xylosoxidans is an aerobic gram-negative bacillus that may cause opportunistic infections in immunocompromized patients and newborns. Neonatal scalp abscess is generally a complication of fetal scalp monitoring and is typically polymicrobial. We present a case of a newborn, delivered by vacuum extraction, who developed a scalp abscess that yielded growth of Achromobacter xylosoxidans.
To develop biodegradable and safe flocculant, Achromobacter sp. HY-66 were isolated from soil. The purified flocculant was composed of fructose and glucose in an approximate molar ratio of 1:24. Molecular weight was approximately 9$\times$105 dalton by Sepharose CL-4B gel filtration chromatography. Elemental analysis revealed that the contents of carbon, hydrogen and oxygen were 37.72%, 5.37% and 56.89%, respectively. The presence of O-H stretching, C-H streching, carboxy ester and C-H bending were confirmed by IR absorption spectrum analysis. We suggest that a bioflocculant produced from Achromobacter sp. YJ-66 is new and different from other bioflocculants.
Among microorganisms isolated from soil, YJ-66 strain was the best producer of flocculant and was examined for flocculating ability in the active carbon and CaCl2. YJ-66 strain was the best producer of flocculant and was examined for flocculating ability in the active carbon and CaCl2. YJ-66 strain was identified to be a species belonging to the genus Achromobacter. The optimum culture condition for production of bioflocculant with the isolated strain was for 72hrs at 3$0^{\circ}C$ and pH7.5. The favorable carbon, nitrogen sources and inorganic salts for production of the flocculant were sucrose, peptone, MgSO4 and KH2PO4, whose optimal concentrations were 2%. 0.067%, 0.1% and 0.1%, respectively. Addition of the carbon and inorganic salts significantly increased the production of flocculant. Compositions of optimized culture medium for bioflocculant production by Achromobacter sp. YJ-66 were 2% sucrose, 0.067% peptone, 0.1% MgSO4 and 0.1% KH2PO4 in initial pH 7.5 during at 3$0^{\circ}C$ for 72hrs.
A marine bacterium Achromobacter sp. M-1220 was isolated from enrichment culture for emulsification of Bunker-C oil. The bacterium can emulsify approximately 7.5g of Bunker-C oil per liter in sen water medium within 1 drys at 18$^{\circ}C$ and multiply from 8$\times$10$^5$ cells to 9$\times$10$^9$ cells per mi. Optimum pH and salt concentration were pH 7.5 and 3% for the emulsification of Bunker-C oil. Emulsification takes place actively in both high sulfur-containing Bunker-C oil and high sulfur-con-taming crude oil. The amount of emulsification depends on the exogenous addition of nitrogen and phosphate sources. The bacterium can also utilize n-hexndecane, n-paraffin me benzene among the petroleum compounds as a sole carbon source.
Achromobacter xylosoxidans is a gram-negative bacterium that can oxidize xylose. It is commonly found in contaminated soil and water but does not normally infect immunocompetent humans. We report a case of a cavitary lung lesion associated with community-acquired A. xylosoxidans infection, which mimicked pulmonary tuberculosis or lung cancer in an immunocompetent man. The patient was hospitalized due to hemoptysis, and chest computed tomography (CT) revealed a cavitary lesion in the superior segment of the left lower lobe. We performed bronchoscopy and bronchial washing, and subsequent bacterial cultures excluded pulmonary tuberculosis and identified A. xylosoxidans. We performed antibiotic sensitivity testing and treated the patient with a 6-week course of amoxicillin/clavulanate. After 2 months, follow-up chest CT revealed complete resolution of the cavitary lesion.
A marine bacterium which was isolated from the enrichment culture for the emulsification of Bunker-C oil produced a bioemulsifier potently. The strain identified as an Achromobacter sp. M-1220. The bioemulsifier was produced during mid-logarithmic phase in hexadecane oil medium at 18$^{\circ}C$. It appeared to be a cationic peptidolipid substance and showed an active stabilizing effect on the emulsion of crude oils and a few vegetable oils.
An, Sangwoo;Lee, Sijin;Park, Jaewoo;Chang, Soonwoong
Journal of the Korean GEO-environmental Society
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v.11
no.4
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pp.43-50
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2010
In this study, we have isolated MTBE utilizing bacteria at the gasoline contaminated soil and also MTBE degradation patterns were characterized. The 18 bacterial mono-cultures isolated from enrichment cultures were screened for MTBE degradation. Of the 18 strains, the 3 strains (Flavobacterium, Pseudomonas, and Achromobacter) have shown effective MTBE degradation. Experimental parameters affecting the growth conditions (such as temperature, pH, initial cell mass) were optimized. Experimental parameters such as temperature $30^{\circ}C$, pH 7, and initial cell mass 0.6 g/mL in optimal growth conditions for MTBE degradation. The optimal growth conditions of the isolated stains were temperature $30^{\circ}C$, pH 7, and initial cell mass 0.6 g/mL in our experiment, respectively. The first order degradation coefficients of Achromobacter, Mixed culture, Pseudomonas, and Flavobacterium were 0.072, 0.066, 0.047, and $0.032hr^{-1}$, respectively. and also, it could be expressed as a degradation rate considering cell mass (1.302, 1.019, 0.523, and 0.352 mg/TSS g/hr for each microorganism). Although Achromobacter has shown highest MTBE degradation rate, degradation rate for BTEX was relatively lower than other strains. and Mixed culture and Flavobacterium have shown similar degradation pattern for MTBE and BTEX biodegradation.
Ochrobactrum anthropi, previously known as Achromobacter species biotypes 1 and 2 (CDC groups Vd-1, Vd-2), belong to the groups of non-Enterobacteriaceae- nonfermentative Gram negative bacilli. Achromobacter is not presently a recognized genus. Achromobacter xylosoxidans has been transferred to genus Alcaligenes as A. xylosoxidans subsp. xylosoxidans, and "Achromobacter" sp. group Vd has been named Ochrobactrum anthropi. O. anthropi was isolated from a blood culture. Organisms were identified as O. anthropi by use of the biochemical test and the VITEK 2(bioMerieux, USA). The Organism was susceptible only to colistin, imipenem, meropenem, and tetracycline, but were resistant to amikacin, aztreonam, cefepime, ceftazidime, cefpirome, ciprofloxacin, gentamicin, isepamcin, netilmicin, pefloxacin, piperacillin, piperacillin/tazobactam, ticarcillin, ticarcillin/clavulanic acid, tobramycin, and trimethoprim/sulfamethoxazole. We report the clinical and microbiologic characteristics of O. anthropi infection in the patient. This is the first case of O. anthropi infection after using a plant as medicine at Chosun University Hospital.
Six isolated strains degrading aniline were selected, identified and designated as pseudomonas putida K6, Pseudomonas acidovorans K82, Achromobacter gr. D. V. K24, Achromobacter xylosocidans K4, Moraxella sp. K21 and Moraxella sp. K22. All of them degraded 1000 ppm aniline completely within 30 to 36 hours. Most of these strains are resistant to antibiotics more than one, but Moraxella sp. has not any antibiotic marker tested. Most strains except for P. acidovorans K82 were shown to have resistance to the heavy metal ions such as Ni, Cu, Li, Ba, Co, etc. but not to Hg to which only P. putida K6 was resistant. M. sp. K21 was capable of degrading aniline to a maximum concentration of 2500 ppm without any repression. The incubation of the cell in limited pH ranges (4-8) had no great effect on aniline degradation. The addition of bactopeptone to the minimal media promoted the speed of aniline degradation, but the addition of glucose rather repressed the rate of aniline degradation. Through enzyme assay, A. gr. D. V. K 24 was shown to degrade aniline through artho-pathway and formed .betha.-ketoadipate as intermediate metabolite.
Assuming that Asp225 is the substrate specificity determinant of Achromobacter pretense I (APl) which is lysine-specific serine protease, the 225th residue was substituted for other amino acids with a hope that the substrate specificity of a mutant API is altered. Furthermore, to maturate preform of mutant API autocatalytically, Lys(-1) was also replaced by Met, Asp, or Glu. However, all the mutants were not expressed, or accumulated as inactive precursor proteins. This result implicats that Asp225 plays a critical rol in restricted substrate specificity as a lysylendopeptidase but the substrate specificity of API is not determined only by the nature of residue 225.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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