Acetobacter sp. strains were isolated from traditional vinegar collected in Daegu city and Gyeongbuk province. The strain KJY8 showing a high acetic acid productivity was isolated and characterized by phenotypic, chemotaxonomic, and phylogenetic inference based on 16S rRNA sequence analysis. The chemotaxonomic and phylogenetic analyses revealed the isolate to be a strain of Acetobacter pomorum. The isolate showed a G+C content of 60.8 mol%. It contained $\small{LL}$-diaminopimelic acid ($\small{LL}$-$A_2pm$) as the cell wall amino acid and ubiquinone $Q_9$ (H6) as the major quinone. The predominant cellular fatty acids were $C_{18:1}w9c$, w12t, and w7c. Strain KJY8 grew rapidly on glucose-yeast extract (GYC) agar and formed pale white colonies with smooth to rough surfaces. The optimum cultivation conditions for acetic acid production by the KJY8 strain were $20^{\circ}C$ and pH 3.0, with an initial ethanol concentration of 9% (w/v) to produce an acetic acid concentration of 8% (w/v).
We tested the possibility of utilizing Korea domestic wheat (winter wheat variety "keumkangmil") as a source of vinegar production. After saccharification of the whole-wheat flour with wheat malt, the saccharized liquid undergoes alcoholic fermentation, followed by acetic fermentation. Acetic acid bacterium A8, which showed the highest acetic acid production (4.56%) with domestic wheat as substrate, was selected from conventional vinegars. The strain A8 was identified as Acetobacter pasteurianus A8 through phylogenetic study using 16S rDNA sequencing analysis. The optimal condition for the malt enzyme was found to be $15^{\circ}C$ for germination periods of 6 days; its amylase activity was 608.4 U. Acetic acid production from domestic wheat substrate supplemented with 5% ethyl alcohol reached 5.8% after 24 days of static fermentation at $30^{\circ}C$ with a seeding rate of 5%.
Molecular cloning of gene for $\alpha$-acylamino-$\beta$-lactam acylhydrolase (ALAH) III from Acetobacter turbidans has been attempted by immunochemical detection method, in which polyclonal antibody from mouse Balb/c against this enzyme was employed as a probe. As a cloning vector, λ gtll was chosen for this purpose. Two positive clones has been selected from genomic libraries of A. turbidans, which had somewhat different binding affinities on anti-ALAH III umm and anti-$\beta$-galactosidase. By restriction analysis, both clones has been turned out to lose one of EeoRI sites. From these results, it concluded that deletion of DNA between lacZ gene and inserted DNA has occurred during replication of these clones in host cells.
This study is to investigate for obtaining the operating conditions of continuous vinegar production using fluidized bed reactor by Acetobacter aceti cell immobilized in Ca-alginate gel. The optimum conditions obtaining by batch fermentation using fluidized bed reactor were as follows; The fermentation temperature and aeration rate were 3$0^{\circ}C$ and 1.0VVM and the initial concentration of ethanol and acetic acid in medium were 33g/l and 27g/l respectively. The amount of bead used was 25%(w/v). The overall acetic acid productivities of batch fermentations by free cell and immobilized cell were 0.31g/l-hr and 0.48g/l-hr, respectively, at the final acetic acid concentration of 50g/l. In the continuous vinegar production using fluidized bed reactor by immobilized cell under optimum conditions, it was possible to produce 23g/l acetic acid continuously up to 90 days with maximum acetic acid productivity of 2.76g/l-hr at dilution rate 0.12hr-1.
Acetic acid bacteria strains were isolated from a variety of fermented foods and fallen fruits. Among them, the strain MAK88, whose acetic acid fermentation ability, acid-tolerance, and alcohol-tolerance were high, was selected and identified as Acetobacter orientalis. A seed culture of A. orientalis MAK88 was inoculated into onion juice, and the optimum conditions of acetic acid fermentation was investigated. The optimum initial concentration of ethanol in onion juice was 5% (v/v) and in that condition, acidity was 4.31% at 144 h of fermentation. The optimum initial concentration of acetic acid was 1% and the final acidity was 5.32%. The optimum fermentation temperature was determined to be $28^{\circ}C$. The most appropriate preparation method of onion juice was to heat the onion at $121^{\circ}C$ for 15 min and produce juice with pressure followed by filtering, and then sterilization at $121^{\circ}C$ for 15 min. Prepared onion juice was used for fermentation without dilution.
In this study, we developed vinegar depending on the quantity consumed and type of peeled and unpeeled roots of Platycodon grandiflorum (PG) using Acetobacter pasteurianus A11-2, analyzed vinegar samples using colorimeter and HPLC for 15 days to assess the characteristics on quality, and evaluated their antioxidant activity using 1,1-diphenyl-2-picry1 hydrazy1 (DPPH) and 2.2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulphonic acid) (ABTS) radical scavenging activities. The major result in PG vinegar was the high acidity of 6.39~6.74% and alcohol was totally converted on the 15th day of fermentation. When we fermented vinegar from peeled roots of 8% PG with a starter culture, we observed high contents of acetic acid, platycodin D, and total polyphenol and high antioxidant activity. Moreover, the vinegar fermented using 8% peeled roots of PG had the high intensity on umami and sour taste and low salty, bitter, and astringent tastes. Consequently, we could develop the PG vinegar with quality and functional characteristics from 8% peeled roots and A. pasteurianus A11-2.
It has been known that, in enzymatic synthesis of cephalexin, the conversion yield was reduced by high loading of ampicillin acylase. In order to elucidate this phenomena, pH-controlled synthesis of cephalexin was examined using a purified Acetobacter turbidans acylase. When the pH of the reaction mixture was maintained at $6.20{\pm}0.04$, the reduction of the maximal conversion rate was not observed even with high enzyme loading. The kinetic parameters also suggest that pH drop during the enzymatic synthesis of cephalexin was mainly attributed to the rapid hydrolysis of D-${\alpha}$-phenylglycine methyl ester to D-${\alpha}$-phenylglycine, rather than the disappearance of 7-amino-3-deacetoxycephalosporanic acid for cephalexin synthesis. At higher molar ratio of two substrates, [D-${\alpha}$-phenylglycine methyl ester]/[7-amino-3-deacetoxycephalosporanic acid], the conversion rate was also elevated under pH-controlled enzymatic synthesis, which implies that the main reason for the pH drop is due to the production of D-${\alpha}$-phenylglycine methyl easter, the effect of a water-methanol cosolvent system on the ester, the effect of a water-methanol cosolvent system on the conversion profile was also examined. Even the though the conversion rate was increased in 10% methanol solution, a higher than 16% methanol in the reaction mixture caused an inactivation of enzyme.
In order to investigate the changes of organic acid contents during the process of apple vinegar, this experiment was conducted by innoculating apple juice with Sarcharomyces cerevisae, and then the apple vinegar were prepared with Acetobacter. aceti and its mutants obtained by the treatment of ultraviolet light and N-methyl-N-nitro-N'-nitrosoguanidine. The organic acids were analyzed by gas chromatography. The contents of malic acid, citric acid and acetic acid in apple juice were 0.73 %, 0.038 % and 0.067%, malic acid, lactic acid and acetic acid in the apple wine 0.114%, 0.10%, and 0.03%, while acetic acid and malic acid in apple vinegar, 4.3 %, and about 0.05 %, respectively.
Black tea extractbsupplemented with 10% sucrose was fermented by fungus at 30$\circ$C. A pellicle thick as 7$\sim$8 mm covered entire surface of the medium and the wxtract converted to acidic beverage(abbreviated below as fermented black tea) by 14 days of fermentation. It was a kind of acetic acid fermentation depending on symbiotic microorganisms. During the fermentation strains of yeasts(Saccharomyces cerevisiae and Eeniella sp.)and bacteria(Bacillus subtilis, Kurthia zopfii, Gluconobacter oxydans and Deinicoccus sp.) were isolated from aqueous layer. Contrastly to it, a bacterial strain(Acetobacter aceti) was isolated from thick pellicle. The bacteria grew as a viscouse cluster on solid agar medium differently from usual strains of A. aceti. Fermented black tea had sweet-sour taste and sweet smell.
Jaegeun Lee;Xinge Song;Bom Hyun;Che Ok Jeon;Seogang Hyun
Molecules and Cells
/
v.46
no.10
/
pp.637-653
/
2023
The physiology of most organisms, including Drosophila, is heavily influenced by their interactions with certain types of commensal bacteria. Acetobacter and Lactobacillus, two of the most representative Drosophila commensal bacteria, have stimulatory effects on host larval development and growth. However, how these effects are related to host immune activity remains largely unknown. Here, we show that the Drosophila development-promoting effects of commensal bacteria are suppressed by host immune activity. Mono-association of germ-free Drosophila larvae with Acetobacter pomorum stimulated larval development, which was accelerated when host immune deficiency (IMD) pathway genes were mutated. This phenomenon was not observed in the case of mono-association with Lactobacillus plantarum. Moreover, the mutation of Toll pathway, which constitutes the other branch of the Drosophila immune pathway, did not accelerate A. pomorum-stimulated larval development. The mechanism of action of the IMD pathway-dependent effects of A. pomorum did not appear to involve previously known host mechanisms and bacterial metabolites such as gut peptidase expression, acetic acid, and thiamine, but appeared to involve larval serum proteins. These findings may shed light on the interaction between the beneficial effects of commensal bacteria and host immune activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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