Pseudomonas sp. S-47 is capable of catabolizing 4-chlorobenzoate (4CBA) as carbon and energy sources under aerobic conditions via the mesa-cleavage pathway. 4CBA-dioxygenase and 4CBA-dihydrodiol dehydrogenase (4CBA-DD) catalyzed the degradation af 4CBA to produce 4-chlorocatechol in the pathway. In this study, the xylL gene encoding 4CBA-DD was cloned from the chromosomal DNA of Pseudomonas sp. S-47 and its nucleotide sequence was analyzed. The xylL gene was found to be composed of 777 nucleotide pairs and to encode a polypeptide of 28 kDa with 258 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of the dehydrogenase (XylL) from strain S-47 exhibited 98% and 60% homologies with these of the corresponding enzymes, Pseudomonas putida mt-2 (XyIL) and Acinetobacter calcoaceticus (BenD), respectively. However, the amino arid sequences show 30% or less homology with those of Pseudomonas putida (BnzE), Pseudomonas putida Fl (TodD), Pseudomonas pseudoalcaligenes KF707 (BphB), and Pseudomonas sp. C18 (NahB). Therefore, the 4CBA-dihydrodiol dehdrogenase of strain S-47 belongs to the group I dehydrogenase involved in the degradation of mono-aryls with a carboxyl group.
Park, Dong-Woo;Kim, Youngsoo;Lee, Sang-Mahn;Ka, Jong-Ok;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.38
no.4
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pp.275-280
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2000
Pseudomonas sp. S-47 is capable of catabolizing 4-chlorobenzoate (4CBA) as rarbon and energy sources under aerobic conditions via the mesa-cleavage pathway. 4CBA-dioxygenase and 4CBA-dihydrodiol dehydrogenase (4CBA-DD) catalyzed the degradation af 4CBA to produce 4-chlorocatechol in the pathway. In this study, the xylL gene encoding 4CBA-DD was cloned from the chromosomal DNA of Pseudomonas sp. S-47 and its nucleotide sequence was analyzed. The xylL gene was found to be composed of 777 nucleotide pairs and to encode a polypeptide of 28 kDa with 258 amino acid residues. The deduced amino acid sequence of the dehydrogenase (XylL) from strain S-47 exhibited 98% and 60% homologies with these of the corresponding enzymes, Pseudomonas putida mt-2 (XyIL) and Acinetobacter calcoaceticus (BenD), respectively. However, the amino arid sequences show 30% or less homology with those of Pseudomonas putida (BnzE), Pseudomonas putida Fl (TodD), Pseudomonas pseudoalcaligenes KF707 (BphB), and Pseudomonas sp. C18 (NahB). Therefore, the 4CBA-dihydrodiol dehdrogenase of strain S-47 belongs to the group I dehydrogenase involved in the degradation of mono-aryls with a carboxyl group.
A bacterial isolate of DJ-12 capable of degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) as well as 4-chlorobiphenyl (4CB) was used in this study. Its biodegradability of 4CBA was tested and the location of the genes coding for degradation of 4CBA was investigated by the nethod of in vivo cloning. The genes were found to be existed in the plasmid of pDJ121 which is about 65kb in size and which has 9, 11, 10, and 19 restriction sites for EcoRI, HindIII, SalI, and PstI, respectively. The hybrid plasmid of pDK450 was constructed by ligation of the EcoRI fragments of pDJ121 with pKT230 as a vector. In the recombinant cells selected through transformation of the hybrid vector into Pseudomonas putida KT2440, the 4CBA-degrading genes of DJ-12 were proved to be cloned and expressed in the Pseudomonas sp.
4-Chlorobiphenyl-degrading Pseudomonas sp. DJ-12 was able to degrade 4-chlorobenzoate(4CBA), 4-iodobenzoate, and 4-bromobenzoate completely under aerobic conditions. During. the degradation of 4CBA by Pseudomonas sp. DJ-12, chloride ions were released by dechlorination and 4-hydroxybenzoate was produced as an intermediate metabolite. The NotI-KNA fragments of pKC157 containing dechlorination genes hybridized with the gene encoding 4CBA:CoA dehalogenase of Pseudomonas sp. CBS3 which is responsible for the hydrolytic dechlorination of 4CBA. These results imply that Pseudomonas sp. DJ-12 degrades 4CBA to 40hydroxybenzoate via dechlorination as the initial step of its degradativ pathway. The genes responsible for dechlorination of 4CBA were found to be blcated on the chromosomal DNA of Pseudomonas sp. DJ-12.
Seo, Dong-In;Lim, Jai-Yun;Kim, Young-Chang;Min, Kyung-Hee;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.3
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pp.188-192
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1997
The strain of S-47 degrading 4-chlorobenzoic acid (4CBA) was isolated from Ulsan chemical industrial complex by enrichment cultivation with 1 mM 4CBA. The strain was Gram-negative rod and grew optimally at 30.deg.C and pH 7 under aerobic condition, so that the organism was identified as a species of Pseudomonas. Pseudomonas sp. S-47 degraded 4-chlorobenzoic acid to produce a yellow-colored meta-cleavage product, which was confirmed to be 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde (5C-2HMS) by UV-visible spectrophotometry. 5C-3HMS was proved trometry. This means that Pseudomonas sp. S-47 degraded 4CBA via 4-chlorocatechol to 5C-2HMS by meta-cleavage reaction and then to 5C-2HMA by 5C-2HMS dehydrogenase.
Pseudomonas sp. strain DJ-12 is a bacterial isolate capable of degrading 4-chlorobiphenyl (4CBP) as a carbon and energy source. The catabolic degradation of 4CBP by the strain DJ-12 was studied along with the genetic organization of the genes responsible for the crucial steps of the catabolic degradation. The catabolic pathway was characterized as being conducted by consecutive reactions of the meta-cleavage of 4CBP, hydrolytic dechlorination of 4-chlorobenzoate (4CBA), hydroxylation of 4-hydroxybenzoate, and meta-cleavage of protocatechuate. The pcbC gene responsible for the meta-cleavage of 4CBP only showed a 30 to 40% homology in its deduced amino acid sequence compared to those of the corresponding genes from other strains. The amino acid sequence of 4CBA-CoA dechlorinase showed an 86% homology with that of Pseudomonas sp. CBS3, yet only a 50% homology with that of Arthrobacter spp. However, the fcb genes for the hydrolytic dechlorination of 4CBA in Pseudomonas sp. DJ-12 showed an uniquely different organization from those of CBS3 and other reported strains. Accordingly, these results indicate that strain DJ-12 can degrade 4CBA completely via meta-cleavage and hydrolytic dechlorination using enzymes that are uniquely different in their amino acid sequences from those of other bacterial strains with the same degradation activities.
Park, Dong-Woo;Lee, Kyoung;Chae, Jong-Chan;Kudo, Toshiaki;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.14
no.3
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pp.483-489
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2004
Pseudomonas sp. S-47 is a bacterium capable of degrading benzoate as well as 4-chlorobenzoate (4CBA). Benzoate and 4CBA are known to be degraded via a meta-cleavage pathway characterized by a series of enzymes encoded by xyl genes. The meta-cleavage pathway operon in Pseudomonas sp. S-47 encodes a set of enzymes which transform benzoate and 4CBA into TCA cycle intermediates via the meta-cleavage of (4-chloro )catechol to produce pyruvate and acetyl-CoA. In the current study, the meta-pathway gene cluster was cloned from the chromosomal DNA of S-47 strain to obtain pCS1, which included the degradation activities for 4CBA and catechol. The genetic organization of the operon was then examined by cloning the meta-pathway genes into a pBluescript SKII(+) vector. As such, the meta-pathway operon from Pseudomonas sp. S-47 was found to contain 13 genes in the order of xylXYZLTEGFlQKIH. The two regulatory genes, xylS and xylR, that control the expression of the meta-pathway operon, were located adjacently downstream of the meta-pathway operon. The xyl genes from strain S-47 exhibited a high nucleoside sequence homology to those from Pseudomonas putida mt-2, except for the xylJQK genes, which were more homologous to the corresponding three genes from P. stutzeri AN10. One open reading frame was found between the xylH and xylS genes, which may playa role of a transposase. Accordingly, the current results suggest that the xyl gene cluster in Pseudomonas sp. S-47 responsible for the complete degradation of benzoate was recombined with the corresponding genes from P. putida mt-2 and P. stutzeri AN10.
Seo, Dong-In;Chae, Jong-Chan;Kim, Ki-Pil;Kim, Young-Soo;Lee, Ki-Sung;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.8
no.1
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pp.96-100
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1998
Pseudomonas sp. S-47 degraded 4-chlorobenzoate (4CBA) to 4-chlorocatechol (4CC) that was subsequently ring-cleaved to form 5-chloro-2-hydroxymuconic semialdehyde. These intermediate compounds were identified by GC-mass spectrometry and UV-visible spectrophotometry. 5-chloro-2-hydroxymuconic acid converted from 5-chloro-2- hydroxymuconic semialdehyde (5C-2HMS) was dechlorinated to produce 2-hydroxypenta-2,4-dienoic acid (2HP-2,4DA) by the strain. These results indicate that Pseudomonas sp. S-47 degrades 4CBA to 2HP-2,4DA via a novel pathway including the meta-cleavage of 4CC and dechlorination of 5C-2HMS.
Kim, Ji-Young;Kim, Young-Chang;You, Lim-Jai;Lee, Ki-Sung;Ok, Ka-Jong;Hee, Min-Kyung;Kim, Chi-Kyung
Journal of Microbiology
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v.35
no.1
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pp.53-60
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1997
Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 isolated from the polluted environment are capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl (4CB) to produce benzoic acid and 4-chlorobenzoic acid (4CBA) respectively, by pcbABCD-encoded enzymes. 4CBA can be further degraded by Pseudomonas sp. DJ-12, but not by Pseudomonas sp P20. However, the meta-cleavage activities of 2, 3-dihydroxybiphenyl (2, 3-DHBP) and 4-chloro-2, 3-DHBP dioxygenases (2, 3-DHBD) encoded by pcbC in Pseudomonas sp. P20 were stronger than Pseudomonas sp. DJ-12. In this study, the pcbC gene encoding 2, 3-DHBD was cloned from the genomic DNA of Pseudomonas sp. P20 by using pKT230. A hybrid plasmid pKK1 was constructed and E. coli KK1 transformant was selected by transforming the pKK1 hybrid plasmid carrying pcbC into E. coli XL1-Blue. By transferring the pKK1 plasmide of E. coli KK1 into Pseudomonas sp. DJ-12 by conjugation, a recombinant strain Pseudomonas sp. P20, Pseudomonas sp. DJ-12, and the recombinant cell assay methods. Pseudomonas sp. DJ12-C readily degraded 4CB and 2, 3-DHBP to produce 2-hydroxy-6-oxo-6-phenylhexa-2, 4-dienoic acid (HOPDA), and the resulting 4CBA and benzoic acid were continuously catabolized. Pseudomonas sp. DJ12-C degraded 1 mM 4CB completely after incubation for 20 h, but Pseudomonas sp. P20 and Pseudomonas sp. DJ-12 showed only 90% and Pseudomonas sp. DJ-12 had, but its degradation activity to 2, 3-DHBP, 3-methylcatechol, and catechol was improved.
The aim of this research was to evaluate the effect of combination of disinfection process (electrolysis, UV process) on Escherichia coli (E. coli) disinfection and oxidants (OH radical, $ClO_2$, HOCl, $H_2O_2$ and $O_3$) generation. The effect of electrolyte type (NaCl, KCl and $Na_2SO_4$) on the E. coli disinfection and oxidants generation were evaluated. The experimental results showed that performance of E. coli disinfection of electrolysis and UV single process was similar. Combination of electrolysis and UV process enhanced the E. coli disinfection and 4-carboxybenzaldehyde (4-CBA, indicator of the generation of OH radical) degradation. It is clearly showed synergy effect on disinfection and OH radical formation. However chlorine ($ClO_2$, HOCl) and oxygen type ($H_2O_2$, $O_3$) oxidants were decreased with the combination of two process. In electrolysis + UV complex process, electro-generated $H_2O_2$ and $O_3$ were reacted with UV light of UV-C lamp and increased 4-CBA degradation(increase OH radical). Disinfection of electrolyte of chlorine type was higher than that of the sulfate type electrolyte due to the higher generation of OH radical and oxidants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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