생선회의 육질을 향상시키는 연구의 일환으로 어육에 있어서 전기자극에 의한 근수축의 증대원인을 밝히고자 전기자극처리가 근소포체의 특성에 미치는 영향을 살펴보았다. 넙치 근소포체의 $Ca^{2+}$-ATPase는 $50^{\circ}C$ 이상의 온도에서 실활되었으며, 전기자극시킨 경우 즉살한 것에 비하여 낮은 $Ca^{2+}$-ATPase활성을 나타내었다. 근육을 $5^{\circ}C$에 저장하였을때 시간이 길어질수록 근소포체의 $Ca^{2+}$-ATPase는 치사직후에 비하여 저하되는 경향을 보였으며, 전기자극 시간이 길어질수록 빠르게 저하되었고. 35초와 60초간 전기 자극시킨 것은 비슷한 저하속도를 나타내었다. SDS-PAGE 결과, 97kDa과 68kDa의 성분이 주된 구성단백질이었으며. 전기자극 시킨것은 즉살시킨 것에 비하여 97kDa의 성분이 감소되었고 전기자극 시간이 길어질수록 현저하였다. LSR은 $27\~32\%$ sucrose 농도에서, HSR은 $38\~45\%$의 농도에서 얻을 수 있었다. LSR의 $Ca^{2+}$-ATPase는 전기자극에 의하여 실활되었으며, HSR은 큰 영향을 받지 않았다 근원섬유의 $Mg^{2+}$-ATPase 활성은 전기자극처리에 의하여 증가되었으며 자극시간이 길어질수록 저장 중 $Mg^{2+}(+Ca^{2+}$)-ATPase 활성의 저하는 즉살한 것에 비하여 빠르게 진행되었다. $Mg^{2+}(-Ca^{2+}$)-ATPase 활성의 변화는 $Mg^{2+}(+Ca^{2+}$)-ATPase 활성과 비슷한 경향을 나타내었으며, 전기자극한 것은 저장 중 저하되었으나 즉살한 것은 치사 직후와 비교하여 큰 차이를 나타내지 않았다. 근원섬유의 $Ca^{2+}$-감수성은 즉살과 전기자극한 것 사이에 차이를 나타내지 않았으며, 저장 중에도 변화를 보이지 않았다.
Pseudomons sp. PY002의 exotoxin A 의 발현 양상을 관찰하기 위하여 P.aeruginosa PAO1의 anti-exotoxin A와 immunoblot hybridization을 실시한 결과 배지내에 유용 가능한 철이 고갈됨에 따라 exotoxin A의 발현양은 점차적으로 증가하는 양상을 보였으며, CAS 배지에 점적한 배양 상층액에서 siderophore의 발현양도 증가함을 보였다. P.sp.PY002 의 genomix library를 제조하여, exotoxin A를 분비하는 2개의 클론을 선별하려 pETA23과 pETA42 로 명명한 후, 반응성이 강한 Peta42를 선발하였다. pETA 42는 약 1.7kb 크기의 insert를 가지며, 양쪽 말단에 cloning site 인 pstI site 가 존재하며 2개의 NcoI, 1개의 PvuII, 1개의 SstI , 3개의 SmaI, 1개의 KpnI, 3개의 HaeII, 1개의 EcoRI site가 존재하였다.
본 연구는 우유의 angiogenin(ANG) 생리활성기능을 조사하기 위한 전단계로 ANG 정제 방법을 확립하기 위하여 실시하였다. 우유로부터 ANG을 CM-Sepharose ion exchange chromatography, HPLC, Gel-filtration의 3단계 방법을 이용하여 정제하였다. 1단계인 CM-Sepharose ion exchange chromatography를 수행 한 결과 0.6 M NaCl 농도의 36번 분획에서 ANG의 밴드를 볼 수 있었고 2단계인 Mono-S 컬럼을 이용하여 HPLC를 수행한 결과에서는 1.0 M에서 하나의 peak가 분리되었고 전기영동 결과는 LF와 ANG 두 가지 성분이 함유되어 있음을 확인하였다. 마지막 단계인 Gel-filtration을 수행한 결과 ANG이 단일 밴드로 분리되었다. 우유 10 $\ell$로부터 약 80 ${\mu}\ell$의 ANG를 얻었고 정제된 ANG을 N-말단 아미노산 배열을 분석한 결과 AQDDYRYIHFLTQHY로 밝혀졌다.
Penicillin G amidase(PGA, benzylpenicillinamidohydrolase, EC 3.5.1.11)는 penicillin G를 phenylacetic acid(PAA)와 6-aminopenicillanic acid(6-APA)로 분해하는 효소이다. Escherichia coli(E. coli) ATCC 11105의 PGA는 24 kDa의 small subunit과 65 kDa의 large subunit으로 구성되어 있고, precursor polypeptide에서 signal peptide와 spacer peptide가 절단되어 활성을 가진 heterodimer가 형성된다. 본 연구에서는 E. coli ATCC 11105에서 PCR(polymerase chain reaction)을 통해 증폭한 pga gene을 expression vector에 넣어 pET-pga plasmid를 제작하였고, 이것을 E. coli BL21 (DE3) 균주에 형질 전환하여 PGA를 발현하고 그 활성을 분석하였다. E. coli BL21(DE3)/pET-pga 균주의 고밀도 배양액을 SDS-PAGE로 분석 했을 때, PGA의 precursor, large subunit, 그리고 small subunit으로 보이는 protein band가 나타났으며, PGA가 soluble form의 precursor로 발현되어 processing을 거쳐서 large subunit과 small subunit으로 절단되기도 하고, 일부는 insoluble form의 precursor로 발현되기도 하는 것으로 생각된다. 유가배양시 온도변화 전략을 사용하여 고농도 배양에서 발현을 유도하였다. 온도변화 전략은 $37^{\circ}C$에서 $28^{\circ}C$를 거쳐 $22^{\circ}C$로 3단계로 변화시켰다. 이러한 전략으로 PGA활성은 19.6 U/mL이며 균체량은 600 nm에서 흡광도가 62까지 도달하였다.
These studies were carried out to investigate the properties of H-Y antigen purified by immunoaffinity chromatography using monoclonal H-Y antibody. Immunoaffinity column was prepared by the coupling of monoclonal antibody to the Aminolink Coupling Gel. Murine testis supernatant was applied onto the column and eluted by O.lM glycine-HCl buffer and 31${\mu}g$ of H-Y Ag was eluted from one testis. Purified H-Y Ag strongly reacted with Con A and lentil from 6 different kinds of lectins tested, which may indicate that sugar moiety of H-Y Ag is composed of glucose, mannose and their derivatives. Con A-sepharose affinity column was used to purified H-Y Ag based on that H-Y Ag is glycoprotein. The fraction eluted by 0.2M Me-${\alpha}$-D-mannoside from the column loaded with murine testis supernatant was identified to be H-Y Ag by dot blot test. Molecular weight of the purified H-Y Ag was estimated by Sepharose G-75 gel filtration and SDS-PAGE, and showing that it was about 67,000 dalton. In fluorescence test, the ratio of XY embryos and XX embryos was 1:1.
A normal prion protein (PrPc) is converted to a protease resistant isoform (PrPsc) by an apparent self-propagating activity in bovine spongiform encephalopathies (BSE), which is a neurodegenerative disease. The cDNA encoding bovine PrP open reading frame (ORP) in Korean cattle was cloned by polymerase chain reaction (PCR). The cloned cDNA had a length of 795 base pairs which coded for a protein of 264 amino acid residues with a calculated molecular mass of 28.6 kDa. Identities of 90, 90, 79 and 78% on nucleotide and 94, 94, 84, and 84% on amino acid sequence were shown to PrP genes from sheep, goat, human, and mouse, respectively. The cloned DNA was ligated into the pQE30 expression vector and transformed into E. coli M15. The PrP was expressed by induction with isopropyl-$\beta$-D-thiogalactoside (IPTG) and purified on the Ni-NTA affinity column. High specific activities of the recombinant PrP were observed in the fraction of pH 5.8 eluate and showed a molecular mass of-29 kDa on SDS-PAGE and Western blot analysis.
한국미생물생명공학회 2000년도 Proceedings of 2000 KSAM International Symposium and Spring Meeting
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pp.53-60
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2000
Strain BH5 was isolated from naturally fermented Kimchi and identified as a bacteriocin producer, which has bactericidal activity against Micrococcus flavus ATCC 10240. Strain BH5 was identified tentatively as Lactococcus lactis by the API test and some characteristics. Lactococcus lactis BH5 showed a broad spectrum of activity against most of the non-pathogenic and pathogenic microorganisms tested by the modified deferred method. The activity of lacticin BH5, named tentatively as the bacteriocin produced by Lactococcus lactis BH5, was detected at the mid-log growth phase, reached its maximum during the early stationary phase, and decreased after the late stationary phase. Lacticin BH5 also showed a relatively broad spectrum of activity against non-pathogenic and pathogenic microorganisms as tested by the spot-on-lawn method. Its antimicrobial activity on sensitive indicator cells was completely disappeared by protease XIV or ${\alpha}$-chymotrypsin. The inhibitory activities of lacticin BH5 were detected during treatments up to 100$^{\circ}C$ for 30 min. Lacticin BH5 was very stable over a pH range of 2.0 to 9.0 and was stable with all the organic solvents examined. The cell concentration and bacteriocin production in strain BH5 were maximum when grown at 30$^{\circ}C$ in a modified MRS medium supplemented with 0.5% tryptone, 1.0% yeast extract, and 0.5% beef extract as nitrogen sources. It demonstrated a typical bactericidal mode of inhibition against Micrococcus flavus ATCC 10240. Lacticin BH5 was purified through ammonium sulfate precipitation, ethanol precipitation, and CM-Sepharose column chromatography. The apparent molecular mass of lacticin BH5 was estimated to be in the region of 3.7 kDa, by the direct detection of bactericidal activity after SDS-PAGE. Mutant strain NO141 which was isolated by nitrosoguanidine mutagenesis produced about 4 fold more bacteriocin than the wild type.
A protease, which had no tryptic and chymotryptic activity, was purified from the hepatopancreas of shrimp, P. japonicus, through ammonium sulfate fractionation, QSepharose ionic exchange, benzamidine Sepharose 6B affinity, and Sephacryl S-100 gel chromatography. Molecular weight (M.W.) of the protease was estimated to be 24 kDa by gel filtration and showed a single peptide band by sodium dodecylsulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). The protease had a low ratio of acidic to basic amino acids, which is different with pro teases from marine animals. The enzyme was partially inhibited by benzamidine, tosyl-L-lysine chioromethyl ketone (TLCK), phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF), soybean trypsin inhibitor (SBTI), and pepstatin. The enzyme did not have any activity against benzoyl-D,L-arginine p-nitroanilide (BAPNA) or benzoyl-L-tyrosine ethyl ester (BTEE) which is a specific substrate of trypsin and chymotrypsin, respectively. However, the enzyme showed activity forward N-CBZ-L-tyrosine p-nitrophenyl ester (CBZ-Tyr-pNE), NCBZ-L-tryptophan p-nitrophenyl ester (CBZ-Trp-pNE), and N-CBZ-L-proline p-nitrophenyl ester (CBZ-Pro-pNE). The protease did not showed tryptic and chymotryptic activity, which was not reported in shrimp hepatopancreas.
N-Acetyl-$\beta$-D-hexosaminidase ($\beta$-HexNAc'ase) (EC 3.2.1.52) was purified from rice seeds (Oryza sative L. var. Dongjin) using ammonium sulfate (80%) precipitation, Sephadex G-150, CM-Sephadex, and DEAE-Sephadex chromatography, sequentially. The activities were separated into 7 fractions($F_1-F_7$) by CM-Sephadex chromatography. Among them, F6 was further purified to homogeneity with a 13.0% yield and 123.3 purification-fold. The molecular mass was estimated to be about 52 kDa on SDS-PAGE and 37.4 kDa on Sephacryl S-300 gel filtration. The enzyme catalyzed the hydrolysis of both p-nitrophenyl-N-acetyl-$\beta$-D-hexosaminide (pNP-GlcNAc) and p-nitrophenyl-N-acetyl-$\beta$-D-hexosaminide (pNP-GalNAc) as substrates, which are typical properties of $\beta$-HexNAc'ase. The ratio of the pNP-GlcNAc'ase activity to the pNP-GalNAc'ase activity was 4.0. However, it could not hydrolyze chitin, chitosan, pNP-$\beta$-glucopyranoside, or pNP-$\beta$-glucopyranoside. The enzyme showed $K_m$, $V_{max}$ and $K_{cat}$ for pNP-GlcNAc of 1.65 mM, $79.49\;mM\;min^{-1}$, and $4.79{\times}10^6\;min^{-1}$, respectively. The comparison of kinetic values for pNP-GlcNAc and pNP-GalNAc revealed that the two enzyme activities are associated with a single binding site. The purified enzyme exhibited optimum pH and temperature for pNP-GlcNAc of 5.0 and $50^{\circ}C$, respectively. The enzyme activity for pNP-GlcNAc was stable at pH 5.0-5.5 and $20-40^{\circ}C$. The enzyme activity was completely inhibited at a concentration of 0.1 mM $HgCl_$ and $AgNO_3$, suggesting that the intact thiol group is essential for activity. Chloramine T completely inhibited the activity, indicating the possible involvement of methionines in the mechanism of the enzyme.
Dong-hwan, Lee;Jin-hwa , Kim;Jun-tae, Bae;Sung-min, Park;Hyeong-bae, Pyo;Tae-boo, Choe;Bum-chun, Lee
대한화장품학회지
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제30권2호
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pp.241-246
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2004
발아 과정을 통한 식물 종자의 변화를 확인하고, 발아된 식물종자로부터 새로운 펩타이드를 개발하여 항노화 화장품 소재로서의 가능성을 확인하였다. 발아과정을 통한 식물 종자의 변화는 단백질 양 측정, 겔 투과 크로마토그램(GPC)과 SDS-PAGE를 통한 단백질 분자량 분포 변화, 아미노산 조성분석을 통해 발아 전과 비교하였다. 발아된 검은 쌀로부터 펩타이드를 생산하기 위해 단백질 분해효소를 처리하였으며, 생산된 발아 검은 쌀 펩타이드의 효과를 발아 검은 쌀 단백질과 비교하여 확인하였다. In vitro matrix-metalloprotease (MMP) 활성 저해효과는 형광 정량법을 이용하였으며, 인간 섬유아세포 활성화 효과를 확인하였고, 콜라겐 생합성 촉진효과와 자외선 조사에 의한 MMP 발현 저해효과는 효소면역분석법(ELISA)을 이용하여 확인하였다. 발아에 의해 검은 쌀의 단백질량, 단백질 분자량 분포 및 아미노산의 조성이 변화함을 확인하였으며, 검은 쌀의 발아와 단백질 분해효소중 파파인 처리를 병행함으로서, 상대적으로 낮은 분자량을 갖는 신규 펩타이드의 제조가 가능하였다. GPC를 이용하여 제조된 발아 검은 쌀 펩타이드의 분자량 분포를 확인한 결과, 대부분이 900dalton 이하의 분자량을 가지는 것을 확인하였으며, 또한, 이러한 발아 검은 쌀 펩다이드는 약 40% 정도의 인간 섬유아세포 활성화 효과를 가지며, 또한 농도 의존적으로 콜라겐 분해효소 활성 저해효과를 가지는 것을 확인하였다. 또한, 자외선 조사에 의해 유도되는 콜라겐 분해효소 발현을 약 50% 억제하며, 콜라겐 생합성을 약 20% 촉진하는 것을 확인할 수 있었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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