The present study was conducted for the production of transgenic cloned cows by somatic cell nuclear transfer (SCNT) that secrete human prourokinase into milk. To establish an efficient production system for bovine transgenic SCNT embryos, the offset was examined of various conditions of donor cells including cell type, size, and passage number on the developmental competence of transgenic SCNT embryos. An expression plasmid far human prourokinase (pbeta-ProU) was constructed by inserting a bovine beta-casein promoter, a green fluorescent protein (GFP) marker gene, and a human prourokinase target gene into a pcDNA3 plasmid. Three types of bovine somatic cells including two adult cells (cumulus cells and ear fibroblasts) and fetal fibroblasts were prepared and transfected using a lipid-meidated method. In Experiment 1, developmental competence and rates of GFP expression in bovine transgenic SCNT embryos reconstructed with cumulus cells were significantly higher than those from fetal and ear fibroblasts. In Experiment 2, the effect of cellular senescence in early (2 to 4) and late (8 to 12) passages was investigated. No significant differences in the development of transgenic SCNT embryos were observed. In Experient 3, different sizes of GFP-expressing transfected cumulus cells [large (>30 ${\mu}{\textrm}{m}$) or small cell (<30 ${\mu}{\textrm}{m}$)] were used for SCNT. A significant improvement in embryo development and GFP expression was observed when small cumulus cells were used for SCNT. Taken together, these results demonstrate that (1) adult somatic cells could serve as donor cells in transgenic SCNT embryo production and cumulus cells with small size at early passage were the optimal cell type, and (2) transgenic SCNT embryos derived from adult somatic cells have embryonic development potential.
The objectives of the present study were improvements in the efficiency of developmental rates to morula and blastocyst stages to produce a large number of genetically identical nuclear transplanted embryos. The oocytes collected from slaughterhouse ovaries were matured 24h in TCM199+10% FBS and exposed to $39^{\circ}C$ or room temperature to allow cytoplasmic maturation and gain activation competence. Donor embryos were treated for 12h with $10{\mu}g/ml$ nocodazole or $0.05{\mu}g/ml$ demicolcine to synchronize the cell cycle stage at 26h after the onset of culture. The blastomeres and recipient oocytes were fused by electrofusion. The cloned embryos were then cultured in various conditions to allow further development. In the treatment of oocyte activation and cell cycle regulation of donor nuclei, the room temperature exposure and nocodazole treatment group had significant effect on the developmental rates to morula/blastocyst(21.7% vs 12.1~16.7%), but had no significant effect on the fusion rates between donor blastomeres and recipient oocytes. The developmental rates of bovine nuclear transplanted embryos appeared to be higher significantly in mTALP medium under 5% $O_2$ condition and in TCM199 with bovine oviduct epithelial cell under 20% $O_2$ condition(22.2%) than other groups. In embryo transfer of nuclear transplanted embryos, there were no significant differences in calving rates between the use of excellent and good grade donor embryos.
Kim, Soo-Hee;Yang, Boo-Keun;Kim, Hyoung-Chun;Jhoo, Wang-Kee
Archives of Pharmacal Research
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제17권4호
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pp.209-212
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1994
Mophological normal of unfertilized oocytes, which was collected 12-14 hours after human Chorionic Gonadotropin(jCG) injection, was not influenced by chronically adiministration of cocaine for 2 weeks in mice. Proportion of normal unfertilized oocytes in non-cocaine treated group (control), `0 mg/kg and 20 mg/kg cocaine treated group based on body weight with subcutaneous(s.c.) daily injection of cocaine for 2 weeks were 92.9%, 85.6% and 90.9%, respectively. There is no significant difference between control and cocaine treated groups. Two to 8 cell stage embryos collected 24-48 hours post hCG in control group were 66.7%, whereas, 10 mg/kg and 20 mg/kg groups treated with cocaine was 12.5% and 27.3% respectively. Although control and treated groups are significantly different (p<0.05) the developmental score of 2 to 8 cell stage embryos collected at 24-48 hours post HCG, there is no difference between 10 mg/kg and 20 mg/kg treated with cocaine groups. These results indicated that the normal embryos of the roups of cocaine administration were significantly amested when compared with that of control group. The proportion of 2 to 8 cell stage embryo reaching the blastocyst stage, which were cultured 48-52 hours with 5% $Co_2$ in air at $37^{\circ}C$, were 93.9% in control group and, 70.4% and 71.9% in each 10 mg/kg and to blastocyst in vitro culture was significantly limited embryos obtained from cocanized mice compared with those of control mice. These results suggest that episode of cocaine intoxication can cause impaiment of early embrygenesis in the mouse.
This experiment was carried out to develop an in vitro culture system for rabbit embryos. The zygotes or 2-cell embryos were collected from the oviducts of the superovulated and mated does with D-PBS/10% FCS at 24 hours after hCG injection. The in vitro developmental rate of blastocyst formation and the number of nuclei in the embryos were examined under the following treatments; 1) TCM-199 with 10% FCS, 2) EBSS with 10% FCS, 3) rabbit vitreous humor(VH), 4) TCM-199 with 10% FCS+BOEC, 5) TCM-199 with 10% FCS+ROEC, 6) EBSS with 10% FCS+BOEC and 7) EBSS with 10% FCS+ROEC. For a comparative study of in vivo and in vitro development, the fresh blastocysts, which were developed in vivo for 96 hours after hCG injection, were collected from the uterus and their numbers of nuclei were counted. 1. The zygotes or 2-cell embryos developed to the blastocyst stage in TCM-199, EBSS and VH at the rates of 93, 92 and 89%, respectively. 2. The higher developmental rates 95~98% of blastocyst formation was achieved when the embryos were co-cultured with a monolayer of bovine or rabbit oviductal epithelial cells in TCM-199 or EBSS. No significant difference in developmental rates was shown between bovine and rabbit oviductal epithelial cells. 3. In a comparative study of in vivo and in vitro development, the total numbers of nuclei were significantly less in the in vitro cultured embryos(104~224) than the in vivo developed embryos(1, 0090 at 96 hours after hCG injectin. 4. The mean cell cycle numbers in the embryos cultured for 72 hours in TCM-199 with 10% FCS, EBSS with 10% FCS, TCM-199 with 10% FCS+BOEC, TCM-199 with 10% FCS+ROEC, EBSS with 10% FCS+BOEC and in vivo was 7.38, 6.63, 7.76, 7.69, 7.01 and 9.92, respectively. From these results, it can be suggested the optimal culture system for in vitro culture of rabbit embryos is a co-culture system with bovine or rabbit oviductal epithelial cells in TCM-199 with 10% FCS. Considering the significant reduction in total numbers of nuclei in the in vitro cultured embryos, the advanced research on development of in vitro culture system for rabbit embryos is expected.
생쥐 2세포기, 4세포기, 8세포기를 각 발생 단계에서 채취하여 동결 보호제를 첨가한 서로 다른 배양액에서 배양하고, 배아의 동결 보존 및 융해 시 급속 처리와 저속 처리 단계로 비교하여 이들 조건이 배아의 생존과 발현에 미치는 영향을 조사하여 다음의 결과를 얻었다. 동결 보호제로 처리하여 배양액을 달리한 경우, 급속 단계에서는 모든 배양액에서 비슷한 발생율을 보였고, 저속단계의 4세포기와 8세포기는 D-PBS에서 높은 발생율을 보였다(P<0.05, P<0.01). 배아의 발생 시기에 따른 동결 보존 후, 발생율은 2, 4, 8세포기로 넘어갈수록 발생율의 증가를 보여 8세포기에서 발생율이 가장 높았다(P<0.01). 동결 보호제의 처리단계에 따른 발생율은 2세포기의 급속 단계에서는 유사하였으나, 4세포기와 8세포기는 저속단계에서 높은 발생율을 보였으며(P<0.05), 특히 8세포기에서 가장 높았다(P<0.01).
Yang, Ning Jie;Seol, Dong-Won;Jo, Junghyun;Jang, Hyun Mee;Yoon, Sook-Young;Lee, Dong Ryul
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제41권1호
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pp.1-8
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2014
Objective: Estrogen related receptor ${\beta}$ (Esrrb) is a member of the orphan nuclear receptors and may regulate the expression of pluripotencyrelated genes, such as Oct4 and Nanog. Therefore, in the present study, we have developed a method for delivering exogenous ESRRB recombinant protein into embryos by using cell-penetrating peptide (CPP) conjugation and have analyzed their effect on embryonic development. Methods: Mouse oocytes and embryos were obtained from superovulated mice. The expression of Oct4 mRNA and the cell number of inner cell mass (ICM) in the in vitro-derived and in vivo-derived blastocysts were first analyzed by real time-reverse transcription-polymerase chain reaction and differential staining. Then 8-cell embryos were cultured in KSOM media with or without $2{\mu}g/mL$ CPP-ESRRB protein for 24 to 48 hours, followed by checking their integration into embryos during in vitro culture by Western blot and immunocytochemistry. Results: Expression of Oct4 and the cell number of ICM were lower in the in vitro-derived blastocysts than in the in vivo-derived ones (p<0.05). In the blastocysts derived from the CPP-ESRRB-treated group, expression of Oct4 was greater than in the non-treated groups (p<0.05). Although no difference in embryonic development was observed between the treated and non-treated groups, the cell number of ICM was greater in the CPP-ESRRB-treated group. Conclusion: Treatment of CPP-ESRRB during cultivation could increase embryos' expression of Oct4 and the formation rate of the ICM in the blastocyst. Additionally, an exogenous delivery system of CPP-conjugated protein would be a useful tool for improving embryo culture systems.
본 연구에서 배양액 내 첨가된 macromolecule이 돼지 체외수정란의 체외 발달율에 미치는 영향과 배양소적 내 첨가된 FBS가 후기배발달에 미치는 영향에 대하여 알아보았다. 이에 대한 결과를 요약 하면 다음과 같다. 1. NCSU-23을 기본 배양액으로 사용시 BSA (4mg/ml), FBS (10%), PVA (3 mg/ml)가 각각 첨가되었을 경우 배발달에 큰 차이를 보이지 않았다. 2. PZM을 기본 배양액으로 사용시 BSA (4mg/ml)가 첨가하였을 경우 2-세포 수정란 발달율과 배반포 발달율이 가장 높았으며, 이것은 NCSU-23에 비하여 PZM 배양액에는 후기배의 에너지원으로 사용하는 글루코스가 포함되어 있지 않기 때문으로 사료 된다. 본 연구를 통하여 돼지 수정란의 체외배양에 사용되는 배양액은 종류와 조성에 따라 적절한 macromolecule이 첨가되어 초기배와 후기배의 발달을 모두 촉진시킬 수 있어야 함을 알 수 있었다.
To forsee appropriate developmental cell stage in human embryos for cryopreservation, we observed blastocyst development in culture medium after cryopreservatlon and thawing of one cell, two cell, four cell stage of mice embryos. According to our results, development of the blastocyst of cryopreserved two cell mice embryos was significantly higher than that of cryopreserved one cell mice zygotes or four cell mice embryos.
Background: In the present study, various freezing containers were tested for mouse embryos of respective developmental stages; embryos were vitrified and then their survival rate and developmental rate were monitored. Mouse two cell, 8 cell, and blastula stage embryos underwent vitrification freezing-thawing and then their recovery rate, survival rate, development rate, and hatching rate were investigated. Methods: EM-grid, OPS, and cryo-loop were utilized for vitrification freezing-thawing of mouse embryos. Results: It was found that recovery rate and survival rate were higher in the group of cryo-loop compared to those of EM-grid (p < 0.05). Embryonic development rate, two cell embryos to blastocyst, as well as hatching rate were higher in the control group compared to the EM-grid group and OPS group (p < 0.05), yet no difference was noted between the control group and cryo-loop group. Development rate and hatching rate of eight cell morulae and blastocysts were all lower in the treatment groups than the control group whilst hatching rate of blastocysts was higher in the control group compared to the groups of EM-grid and OPS (p < 0.05); although the cryo-loop group was shown to be slightly higher than other groups, it was not statistically significant. Conclusions: In the study, we investigate effects of freezing containers on vitrified embryos of respective developmental stages; it was demonstrated that higher developmental rate was shown in more progressed (or developed) embryos with more blastomeres. There was however, no difference in embryonic development rate was shown amongst containers. Taken together, further additional studies are warranted with regards to 1) manipulation techniques of embryos for various vitrification freezing containers and 2) preventive measures against contamination via liquid nitrogen.
The purpose of this study was to investigate the effects of developmental stage and equilibration time on survival of rabbit embryos following freezing by vitrification. Adult New Zealand White female rabbits were superovulated with PMSG and hCG. The 8-cell stage embryos were collected from 40 to 45 hours after hCG injection by flushing oviducts with Dulbecco's phosphated buffered saline and in vitro cultured in TCM-199 containing 10% fetal calf serum(FCS). Each embryos developed in vitro to 16-cell, compact morula and blastocyst was cryopreserved and cultured following thawing to examine their developmental potential to expanded blastocyst stage in vitro. The frozen-thawed-cultured embryos were stained with Hoechst 33342, and their nuclei were counted using a fluorescence microscope. On the toxicity test of EFS solution as cryopreservation, the survival rates of 8-cell stage embryos was decreased in reverse to increasing of exposure time over 5 minutes. The post-thaw survival rates of embryos on equilibration times was significantly(P<0.05) higher for 2 min. than for 5 or 10 minutes. From morula to blastocyst of rabbit embryos was more suitable than 8-cell stage for cryopreservation by vitrification. The higher post-thaw survival rate of embryos can be achieved by keeping the cryoprotectant at $4^{\circ}C$ than at $20^{\circ}C$. The mean number of nuclei per embryo following freezing by vitrification and in vitro culture to expanded blastocyst at compacted morula and blastcyst was not significantly differ from fresh blastocyst.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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