Adaptive development of early stage embryo is well established and recently it is explored that the mammalian embryos also have adaptive ability to the stressful environment. However, the mechanisms are largely unknown. In this study, to evaluate the possible role of aquaporin in early embryo developmental adaptation, the expression of aquaporin (AQP) 5 gene which is detected during early development were examined by the environmental condition. To compare expression patterns between in vivo and in vitro, we conducted quantitative RT-PCR and analyzed localization of the AQP5 by whole mount immunofluorescence. At in vivo condition, Aqp5 expressed in oocyte and in all the stages of preimplantation embryo. It showed peak at 2-cell stage and decreased continuously until morula stage. At in vitro condition, Aqp5 expression pattern was similar with in vivo embryos. It expressed both at embryonic genome activation phase and second mid-preimplantation gene activation phase, but the fold changes were modified between in vivo embryos and in vitro embryos. During in vivo development, AQP5 was mainly localized in apical membrane of blastomeres of 4-cell and 8-cell stage embryos, and then it was localized in cytoplasm. However, the main localization area of AQP5 was dramatically shifted after 8-cell stage from cytoplasm to nucleus by in vitro development. Those results explore the modification of Aqp5 expression levels and location of its final products by in vitro culture. It suggests that expression of Aqp5 and the roles of AQP5 in homeostasis can be modulated by in vitro culture, and that early stage embryos can develop successfully by themselves adapting to their condition through modulation of the specific gene expression and localization.
The present study investigated the effect of treatment with nocodazole on the efficiency of cell cycle synchronization and development of mouse 4-cefl embryos. In addition, developmental ability of reconstituted embryos that received nuclei from 4-cell embryos synchronized with nocodazole at M phase was examined in vitro and in vivo. (1) When 4-cell blastorneres exposed to culture medium containing l$\mu$g /ml nocodazole for 2, 4, 6 and 8 hrs, 40% (40/10l), 75% (l19/159), 85% (87/102) and 97% (155/160) of nuclei were synchronized at M phase, respectively. (2) Treated with nocodazole for 4 hrs, the proportion of 4-cell embryos developed to blastocysts (98%, 60/61) was not significanUy different from that of the control embryos (98%, 196/201). However, the developmental ability of 4-cell embryos treated for 8 (87%, P<0.05)and 12 hrs (76%, P
Melatonin (N-acetyl-5-methoxytryptamine) is the major neurohormone secreted during the night by the vertebrate pineal gland. The circadian pattern of pineal melatonin secretion is related to the biological clock within the suprachiasmatic nucleus (SCN) of the hypothalamus in mammals. The SCN coordinates the body's rhythms to the environmental light-dark cycle in response to light perceived by the retina, which acts mainly on retinal ganglion cells that contain the photopigment melanopsin. Calbindin-D9k (CaBP-9k) is a member of the S100 family of intracellular calcium- binding proteins, and in this review, we discuss the involvement of melatonin and CaBP-9k with respect to calcium homeostasis and apoptotic cell death. In future studies, we hope to provide important information on the roles played by CaBP-9k in cell signal transduction, cell proliferation, and $Ca^{2+}$ homeostasis in vivo and in vitro.
Proceedings of the Korean Society of Developmental Biology Conference
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2003.10a
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pp.92-92
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2003
Accurate analysis of nuclear status is needed when biopsied-blastomeres are used for embryo sexing. In this study, the nuclear status of blastomeres derived from 8- to 16-cell stage IVF bovine embryos was analyzed to evaluate the representative of single blastomere for embryo sexing. When 55 embryos were analyzed by PCR following biopsy, the coincident rate of sex determination between biopsied-single blastomere and matched blastocyst by PCR was 80 %. Karyotyping of biastomeres in 8- 16-cell stage bovine embryos was conducted to assess chromosome status of IVF embryos. To establish karyotyping of blastomeres, concentrations of vinblastine sulfate and duration of exposure time for metaphase plate induction with 8- to 16-cell stage bovine embryos were tested. The most effective condition for induction of metaphase plate (>45%) was 1.0 ug/ml vinblastine sulfate treatment for 15 h. In 22 embryos under the condition, only 8 embryos out of ten that had a normal diploid chromosome complement showed a sex-chromosomal composition of XX or XY (36.4%) and 2 diploid embryos showed mosaicism of the opposite sex of XX and XY in blastomeres of embryo (9.1%). One haploid embryo contained only one X-chromosome (4.5%). Four out of the other 11 embryos having a mixoploid chromosomal complement contained haploid blastomere with wrong sex chromosome (18.2%). These results suggested that morphologically normal bovine embryos derived from IVF had considerable proportion of mixoploid and sex-chromosomal mosaicism which could be the cause of discrepancies of the sex between biopsied-single blastomere and matched blastocyst by PCR analysis.
The in-vitro fertilization in human clinic and animal reproduction is a very important technique but the rate of success is still low. When the in-vitro fertilization and culture of gametes or embryos were done under the condition which Hema hydrogel chamber were implanted into the peritoneal cavity of mouse, the in-vitro fertilization and development of embryos could be significantly improved and the cell-block under in-vitro culture could be overcome. Also, the Rema hydrogel chamber was very useful for the protection of isolated blastomeres. It is concluded that the polymerized Hema (pHema) hydrogel chamber may be effectively used in the fields of embryo transfer and in vitro fertilization.
This study was performed to produce Hanwoo-fetal fibroblast cell clone transferred to Holstein recipient. It was coming on the parturition but didn't show parturition signs until 272 days from the embryo transfer. For the induction of normal parturition, dexamethasone (20 mg) were injected with IM on 272 day and PG $F_{2a}$ (25 mg) plus estradiol (20 mg) was injected with IM after 24hrs. Forty-eight hours after dexamethasone injection, we could find parturition signs and delivered healthy male of offspring (40 kg) about 50 hrs after it's injection. However the recipient was showed retention of afterbirth.h.
To investigate the usability of frozen canine embryos for embryo transfer in the dog, 19 donors, 3 recipients, and 6 male dogs were used for the experiment. Natural mating or artificial insemination was performed for breeding the bitches in natural estrus. Vaginal smear test along with progesterone titre test were performed to detect the appropriate mating time and the bitches were bred twice during 3-6days following LH surge. Embryo collection was done on 8, 9-11, 12-13 days after the second mating to collect morula and blastocyst. Embryos were frozen using a programmable freezer and preseued in LNE tank. Embryos were thawed in 37$^{\circ}C$ water for 15 seconds and transferred into each uterine horn within 30 minutes. Embryos were collected from 13 bitches of 19 donors(68.4%) and the collected embryos were from between 9 and 13 days after 2nd mating. Embryos were produced both by natural mating(60.0%, 9115) and AI with frozen semen(100.0%, 4/4). Embryos were collected from the donors weighed between 2.5 and 30 kg and their age was from 1.5 to 3 years. 52 embryos were collected from 13 donors and the mean number of embryos was four. The stage of embryos was from 2-cell to gastrula and morulae were colledted mostly from 10 to 11 days after 2nd mating. Embryos were collected evenly from each uterine horn and the rate of embryo collection for the number of corpus luteum was 83.9%. Embryos were transferred to 3 recipients(morula 8, blastocyst 1, gastrula 8), however, no offspring was produced.
Matrix Metalloproteinases (MMP)-2 and -9 are participated in embryo development, implantation, remodeling of epithelial cell and ovulation. The objective of this study is to evaluate an impact of MMP2 and MMP9 on embryonic developmental competence as well as gene expression profiles of in vitro-produced bovine embryos. After in vitro fertilization, embryos of all groups were transferred into IVC-2 medium treated with MMP2 and MMP9 to check the optimum concentration on the basis of embryo development competence and cell numbers. The optimum concentrations for MMP2 and 9 were 1,200 ng/ml and 300 ng/ml. The blastocyst development competence was not different among 1,200 ng/ml of MMP2 vs. 300 ng/ml of MMP9 vs. combined MMP2 + 9 vs. control groups ($41.46{\pm}10.66$ vs. $37.73{\pm}8.92$ vs. $45.11{\pm}11.41%$ vs. $41.59{\pm}11.88$, respectively). Furthermore, the developmental competences to hatching and hatched blastocysts were not also different among the same groups ($79.84{\pm}12.63$ vs. $83.3{\pm}17.46$ vs. $78.55{\pm}14.48%$ vs. $72.02{\pm}14.09$). In addition, total cell number was significantly (p<0.05) greater in blastocyst treated with MMP9 300 ng/ml among all treatment groups. On the other hand, there was no significant difference of ICM vs. TE ratio in all groups. The expression of five out of six genes (i.e., MMP2, MMP9, IFNt, SSLP1 and HNRNPA2B1) was different among the groups. The expression of IFNt and HNRNPA2B1 genes was significantly greater in MMP9 (p<0.05), but there was no difference of MMP9 expression between MMP2 and MMP9 group (p>0.05). The normalized expression of MMP2 and SSLP1 was greater in MMP2 than other groups (p<0.05). In conclusion, MMPs treatment during IVC-2 medium was remarkably effected on blastocyst developmental competence and gene expression profiles that are related to embryo quality and implantation.
Embryos of most mammalian species grown in vitro would undergo developmental arrest at the approximate time of genomic activation. Stage-specific cell block and the resulting rapid loss of embryo viability in conventional culture media have limited the duration for which embryos may be cultured prior to transfer. As a result, embryos are usually transferred to the uterus at the 4-to 8-cell stage to avoid the loss of viability associated with long-term in vitro culture. Early transfer has led to asynchrony of the endometrium-trophectoderm interaction at the time of implantation and a resultant reduction in the rate of implantation. To overcome these problems, a variety of co-culture systems has been devised in which embryos can develop for a longer period prior to embryo transfer. Vero cells, derived from African green monkey kidney, share a common embryologic origin with cells from the genital tract. In addition, they are potentially safe to use, since they are highly controlled for viruses and other contaminants. Therefore, co-culture using Vero cells has been widely utilized to enhance embryo viability and development, although not without controversies. We thus designed a series of experiments to demonstrate whether Vero cells do indeed enhance mouse embryo development as well as to compare the efficacy of co-culturing mouse 1-cell embryos on Vero cell monolayer in both Ham's F-10 and human tubal fluid (HTF) culture media. 1-cell stage ICR mouse embryos were cultured either in the presence of Vero cells (Group A) or in conventional culture medium alone (Group B). In Ham's F-10 significantly more 3-to-8cell embryos developed in group A than group B (59.8 versus 10.0%; p<0.01). In contrast, there was no significant difference in embryonic development both group A and group B in HTF. However, significant differences were noted only in later embryonic stage (13 and 0%; p<0.05 of group A and B respectively, hatching or hatched). In Ham's F-10, we also could observe the beneficial effect of Vero cell on hatching process (70.7 and 42.1%; p<0.05 of group A and group B respectively).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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