An alkaline protease was purified and characterized from an alkalophilic microorganism, Bacillus sp. DK1122, isolated from soil in central Korea. The optimum temperature and pH for the growth of the producer strain were 40℃ and pH 9.0, respectively. The protease was produced aerobically at 40℃ after 24 h incubation in modified Horikoshi I medium (pH 9.0) containing 0.5% (w/v) glucose, 0.8% (w/v) yeast extract, 0.5% (w/v) polypeptone, 0.1% (w/v) K2HPO4, 0.02% (w/v) MgSO4·7H2O, 1% (w/v) Na2CO3, and 3% (w/v) NaCl. The alkaline protease was purified by 70% ammonium sulfate precipitation of the culture supernatant of Bacillus sp. DK1122, followed by CM-Sepharose chromatography. The molecular weight of the enzyme was estimated to be 27 kDa on the basis of SDS-PAGE. The optimum temperature and pH for the protease activity were 60℃ and pH 9.0, respectively. Addition of CaCl2 increased the thermal stability of the purified protease, where 90% of protease activity was retained at 60℃ for up to 3 h. Consequently, it is expected that the alkaline protease from this study, exhibiting stability at pH 7–9 and 60℃, may be promising for application in the food and detergent industries.
Enzymes are widely used in industrial applications such as detergents, food, feed production, pharmaceuticals and medical applications and major contributors to clean industrial products and processes. To screen, identify, and characterize the enzymes the zymography techniques are routinely used. The zymography technique is a simple, sensitive, and quantifiable technique that is widely used to detect functional enzymes following electrophoretic separation in sodium dodecyl sulfate (SDS)-polyacrylamide gels. The method is a versatile two-stage technique involving protein separation by electrophoresis followed by the detection of enzyme activity in polyacrylamide gels under non-reducing conditions. It is based on SDS-polyacrylamide gel (PAG) copolymerization with substrates, which are degraded by the hydrolytic enzymes restored in enzyme reaction buffer after the electrophoretic separation. Any kind of biological sample can be applied and analyzed on zymography, including culture supernatants of microbes, plants extracts, blood, tissue culture fluids, enzymes in foods extracts and metaproteome. The advantage of zymography is that it is possible to directly detect the protein with activity on the electrophoretic gel as well as confirm the activity at the nanogram level. Thus, this zymography technology can be applied in various fields. However, these advantages are rather disadvantageous and can often lead to experimental errors. In this review, the advantages, disadvantages, and problem solving of zymography technique are described.
An alkalophilic bacterium, the strain AC-711 as a potent producer of alkaline cellulase, was selected among many isolates from soil environments. Morphological, physiological and chemical characteristics of the strain AC-711 suggested that it belongs to the genus Pseudomonas according to the Bergey's Manual of Systematic Bacteriology, however the G+C mol% (54.43) of its chromosomal DNA is lower than the normal values of the genus. The major cell wall fatty acids were determined as 15:0 and 17:0 anteiso. The production of alkaline CMCase by the strain was maximal when grown on the mediun containing 1% carboxymethyl cellulose, 0.1% $KH_2PO_4$, 0.02% $CoCl_2$, 0.02% Tween 80, 0.5% $Na_2CO_3$, 0.8% yeast extract, pH 10.3 at $30^{\circ}C$ for 3 days, and the most of enzyme was excreted into culture mediun.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.21
no.3
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pp.255-262
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1992
In vitro digestibility of filefish, protein was substantially decreased by fiber constituents in the follow-ing order : pectin (9.97%), gum karaya (7.03%), sodium alginate (6.12%),and cellulose (1.52%). The order of reduction by fibrous residues from vegetables ranked as follows : sea tangle (12.36%), Ro-maine lettuce (11.12%), perillar leaf (8.96%), and green pepper (5.15%). The inhibitory effect of the dietary fibers towards filefish protein digestion, expressed as soybean trypsin inhibitor equivalents, in-creased with added levels, but the inhibition differed with the sources of dietary fibers. Sea tangle and sodium alginate were most active in decreasing the concentration of essential amino acid from filefish protein hydrolysis. Sodium alginate exerted an inhibitory effect on the activity of trypsin, but the other fiber constituents did not have an inhibitory potency on trypsin and bacterial pretense (Streptomyces griceus). Results supported that dietary fiber components may reduce protein digestibility through the interaction of dietary fiber components with filefish protein.
Pseudomonas sp. JH1014 was isolated from stream water as a detergent-compatible alkaline protease producing microorganism. The strain produced no detectable cellulolytic activity in LB medium. The addition of carboxymethyl cellulose induced the production of carboxymethyl cellulase (CMCase) without causing any significant change in the growth pattern of the strain. The strain reached its maximum growth after 9 to 12 h at $37^{\circ}C$, and the production of CMCase in the presence of the substrate reached its maximum after 21 h of growth at $37^{\circ}C$. The optimum pH of the crude enzyme preparation was pH 6.0. The enzyme had an optimal temperature at $55^{\circ}C$, and retained 70% of its original activity when preincubated at $70^{\circ}C$ for 10 min. Activity staining of the crude enzyme preparation separated on an SDS-PAGE gel showed two active bands with molecular masses of 54 and 30 kDa, indicating that Pseudomonas sp. JH1014 produced at least 2 kinds of CMCase.
The ${\beta}$-1,4-glucanase gene of Bacillus licheniformis B1 was expressed in Esherichia coli BL21, and a protein with a mass of 50 kDa that was soluble was overproduced. A protein with a mass of 37 kDa was secreted from B. licheniformis. It seems that the ${\beta}$-1,4-glucanase produced in E. coli contained the leader peptide and unprocessed carboxy-terminal region, but its processing occurred in the carboxyterminal in Bacillus. The optimal temperature of ${\beta}$-1,4-glucanase was $40^{\circ}C$. The enzyme still had 76% maximal activity at $60^{\circ}C$. The optimal pH of the enzyme was 7. The enzyme retained considerable activities over the weak-acidic, neutral, and weak-basic pH range. Acidic fungal cellulases are used in food, detergent, pulp, paper, textile industries. However, studies about neutral and alkaline cellulase are not enough. The cellulase developed in this study may be useful for industrial applications in the fields of biofuel development.
An alkalophilic Cephalosporium sp. RYM-202 capable of producing cellulase components was isolated from soil. This organism grew best at an initial pH 9.0 and produced cellulase maximal at an initial pH 9.5-10.0. Three carboxymethyl cellulases(CMCases), P-I-I, P-I-II and P-II-I, were partially purified by DEAE-Sephadex A-50 ion exchange column followed by Sephadex G-150 gel filtration. The optimum pH values for activity were 7.5 for P-I-I, 8.0-9.5 for P-I-II and 7.5-10.0 for P-II-I. All CMCases were stable between pH 4.5 and 12.0. Temperature optima for activity ranged between 40 and $60^{\circ}C$ and more than 50% of the maximum activity was observed at $20^{\circ}C$ for both of P-I-I and P-II-I. The activity of CMCases was significantly stable in the presence of various laundry components, such as, surfactants, chelating agents and alkaline proteinases.
Seoyeon Kwak;Seongeui Yoo;Jieon Park;Woosoo Jeong;Hee-Min Gwon;Soo-Hwan Yeo;So-Young Kim
Food Science and Preservation
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v.30
no.6
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pp.1082-1094
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2023
The purpose of this study was to examine the characteristics of Leuconostoc spp. isolated from radish kimchi and to investigate the potential for the use of functional ingredients by evaluating enzymatic characteristics, safety, and immune-enhancing effects among the isolates, including Lactobacillus rhamnosus ATCC53103 (LGG) as a control strain. All test strains exhibited β-glucosidase enzyme activity that releases β-1,4 sugar chain bonds. In addition, as a result of antibiotic resistance assay among the isolates, MIC values on 8 antibiotics were below compared to the EFSA standard, and hemolytic experiments confirmed that all showed gamma hemolysis without hemolytic ability. As a result of the antibacterial activity experiment, the Leu. mesenteroides K2-4 strain showed a higher activity than LGG against Bacillus cereus and Staphylococcus aureus. Additionally, the activity of the NF-kB/AP-1 transcription factor increased when the isolates were treated in macrophage RAW cells. These results were related to increasing the high mRNA expression levels on TNF-α and IL-6 by Leu. mesenteroides K2-4 strain to be treated at low concentration. Consequently, we suggest that it will be useful as a candidate for functional food ingredients.
A novel proteolytic bacterium was isolated from soil at Yeungnam University, South Korea. The strain, named FBL-1, was rod-shaped with a smooth surface. Biolog and API 50CHB test results revealed that strain FBL-1 was a Bacillus species. Based on 16S rDNA sequencing and chemotaxonomic characterization, the strain was identified as Bacillus subtilis because it had the highest homology with Bacillus subtilis subsp. subtilis NCIB 3610 (99.5%). In liquid culture at 37℃ with shaking at 200 rpm, fructose and yeast extract were found to be the best carbon and nitrogen sources, respectively, for cell growth and protease production. The highest protease activity (451.640 U/ml) was obtained when the strain was cultured in medium containing 20 g/l of fructose and 5 g/l of yeast extract. Although further studies are needed to characterize the protease and enhance its activity, the newly isolated protein-degrading B. subtilis FBL-1 can be applicable for the production of peptides and for the degradation of proteins in various industries.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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