Acetolactate Synthase (ALS) was partially purified from the yeast and its basic biochemical studies were carried out. Yeast was grown in the minimum media containing 0.5% glucose, 51 mM $K_2HPO_4$, 22 mM $KH_2PO_4$, 8 mM $(NH_4)2SO_4,\;0.4\;m M\;MgSO_4$ for 18 hours at 37 $^{\circ}C$. The cell was ruptured in the buffer (20 mM phosphate buffer pH 7.0, 0.1 mM TPP, 0.5 mM DTT, 1 ${\mu}M$ FAD, and 1 mM MgCl_2$) following an overnight suspension. The supernatant fraction was collected from $10,000{\times}g$ and the enzyme was further purified by ammonium sulfate fractionation, DEAE-Sephacel chromatography and leucine-agarose chromatography. The enzyme activity was measured under the various conditions by the function of protein concentration, time, temperature, pH, and substrate. The optimum temperature was found to be 50$^{\circ}C$, optimum pH 8.0∼8.5. The kinetic parameters, $K_m\;and\;V_{max}$ were 8.4 mM and 17.9 nmol/mg/min respectively. Stability of the enzyme was studied with ethylene glycol and glycerol added to the enzyme solution. Both ethylene glycol and glycerol improved the enzyme stability up to 50%. The study of feedback inhibition showed that valine was a strong inhibitor while leucine was a weak inhibitor.
The red ginseng extract and its components were investigated for their activation effects on the growth of Saccharomyces cerevisiae IAM and Saccharomyces formosensis No. 396 IAM. Changes in the number of cells, alcohol production, $CO_2$ evolution, pH and the rate of sugar consumption and of fermentation were compared during growth at $30^{\circ}C$ for 120 hours. The addition of ethanol extract and saponins from red ginseng were found to exihibite a significant increase in all physiological activaties of yeast, and its maximum activites were obtained at 1.5% ethanol extract concentration. The physiological effects of panaxadiol and panaxatriol, two major groups of saponin, were also compared to those of crude saponin and found that the former showed a small increase in physiological changes. However the difference was not significant. The overall contents of ginsenosides of ethanol extract and crude saponin during fermentation were not significantly affected by the growth of roasts, except a small increase in ginsenoside $-Rg_2$ and decrease in -Rd.
We aimed to produce a potent β-glucuronidase inhibitor from wild yeast that could inactivate toxic substances in the colon. Culture supernatants and cell-free extracts of non-pathogenic wild yeasts were prepared and their β-glucuronidase inhibitory activities were measured. Cell-free extract from Candida oleophila WP5-19-1 showed the highest β-glucuronidase inhibitory activity (49.0%). The β-glucuronidase inhibitor was maximally produced (IC50 value; 8.4 mg) when C. oleophila WP5-19-1 was cultured in potato dextrose medium containing 5% dextrose (initial pH; 6.0) at 30℃ for 24 hours. β-glucuronidase inhibitor of C. oleophila WP5-19-1 was partially purified by trypsin hydrolysis, ultrafiltration (3 kDa), and Sephadex G-50 filtration. The partially purified β-glucuronidase inhibitor was stable from 30℃ to 60℃ and at pH 6.0 9.0, and showed residual inhibitory activity of about 80%.
Jeong-Su Moon;Seung-A Shin;Seung-Eun Baek;Jong-Soo Lee
The Korean Journal of Mycology
/
v.51
no.3
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pp.205-217
/
2023
This study aimed to produce novel bioactive compounds from non-pathogenic pigmented wild yeasts. Culture supernatants and cell-free extracts of non-pathogenic pigmented yeast strains were prepared, and their physiological functionalities and enzyme activities were measured. Cell-free extracts from Rhodosporidium paludigenum HHGG35-1 and culture supernatants from Rhodosporidium diobovatum NMD18-1 demonstrated very high antioxidant activity (76.6%) and anti-gout xanthin oxidase inhibitory activity (86.2%), respectively. Maximal production of the antioxidants (76.9%) was obtained when Rh. Paludigenum HHGG35-1 was cultured in a yeasts extract-peptone-dextrose (YPD) medium (pH 6.5) at 30℃ for 24 h. The xanthin oxidase inhibitor was also maximally produced (91.6%) when Rh. Diobovatum NMD18-1 was cultured at 30℃ for 96h in a YPD medium (pH 6.5). Rh. Paludigenum HHGG35-1 was oval in shape and formed ascospre. The Rh.diobovatum NMD18-1 specimen displayed dimensions of 1.6 × 1.6 ㎛ and produced ascospores; however, it did not form pseudomycelium. Both of Rh. Paludigenum HHGG35-1 and Rh. Diobovatum NMD18-1 grew well in a 40%-glucose-containing YPD medium and 10%-NaCl-containing YPD medium.
The expression and secretion of human lactoferrin (hLf) in Sacclnromyces diastaticus were performed. 1. For the secretion of hLf in yeast, recombinant plasmid pYEGLf was constructed using promoter, secretion signal sequence of glucoamylase I gene (STA1) and transcriptional terminator of GAL7 gene. 2. Each correct recombinant plasmid was selected by mini-preparation of plasmid DNA from E coli transformant and restriction enzyme digestion analysis. The selected plasmids, pYEGLf, were transformed into S. diastaticus YIY345 as a expression host, respectively. 3. Western blot analysis using rabbit anti-hLf was carried out to identify expressed hLf. Positive signals were shown in culture supernatant of pYEGLf transformant. 4. About $100{\mu}g-1mg$ of concentrated culture supernatant of positive clone were loaded on paper disc and tested for the antimicrobial activity against E coli. However, no activity was observed. We concluded that this fact results from low concentration of hLf secreted from yeast, compared with the fact that MIC of hLf is as high as $3mg/m{\ell}$. Therefore, the purification of secreted hLf may be require to investigate the antimicrobial activity. From this study, the feasibility of low-cost production of sufficient quantities of human lactofferin for nutritional and therapeutical applications were suggested.
In order to investigate the ethanol fermentation properties of alcohol yeasts a laboratorial strain (CEN.PK2-1D) and two industrial alcohol yeasts (JHS100 and JHS200) of Saccharomyces cerevisiae were cultured in a pure YP medium with 300 g/L glucose and cassava hydrolysate. Spot assay and cell viability tests showed that both the JHS100 and JHS200 strains exhibited higher ethanol tolerance than the CEN.PK2-1D strain. The JHS100 strain demonstrated the highest cell growth, glucose consumption and ethanol production. In particular, an anaerobic batch fermentation of the JHS100 strain using cassava hydrolysate with 250 g/L glucose resulted in a 106.1 g/L ethanol concentration, 0.42 g/g ethanol yield and 3.15 g/L-hr ethanol productivity, which were 53%, 13%, 53% higher than the corresponding values for the CEN.PK2-1D strain. By changing the pure YP medium to cassava hydrolysate, 19% and 17% decreases in ethanol yield and productivity for the CEN.PK2-1D strain were observed, whereas the cultures of the JHS100 and JHS200 stains showed similar ethanol productivities and only an 8% decrease in ethanol yield. Furthermore, the JHS100 and JHS200 stains produced lower levels of glycerol and acetate byproducts than the CEN.PK2-1D strain. Consequently, the outstanding ethanol fermentation performance of the industrial strains might be owing to rapid cell growth, high ethanol tolerance, low nitrogen requirements and the low formation of by-products.
Growth patterns of Saccharomyces cerevisiae NS 2031 and its total RNA contents were observed by a fed-batch fermentation with different media-feeding methods. With an exponential feeding pattern, both final cell concentrations and intracellular RNA contents decreased with increasing feeding rates. Intracellular RNA contents also decreased with the growth time. At the same feeding rate of the exponential pattern, final cell concentrations decreased with the increase of total sugar concentration whereas intracellular RNA contents increased. The highest cellular yield was 0.47 at the total sugar concentration of 10%. With increasing feeding rates of the parabolic feeding pattern, final cell concentrations decreased whereas intracellular RNA contents increased, showing a different tendency from the exponential feeding pattern. In comparison of two feeding methods, the exponential feeding pattern was better than the parabolic feeding pattern in terms of cell growth, cellular yields and intracellular RNA contents of Saccharomyces cerevisiae NS 2031. Also, the intracellular RNA contents of the exponential feeding pattern was found to be about 2% higher than that of the parabolic feeding pattern at the same instantaneous growth rate $({\mu}_{inst})$.
Production of biomass by fed-batch culture of Saccharomyces cerevisiae Hansen CBS5926, which is used to treat intestinal disorders, was investigated using ethanol as the sole carbon source. Ethanol was a better carbon source than glucose for high cell density culture of the st-rain since it could decrease the frequency of contamination while increasing the efficiency and final productivity of the fermentation process. Under optimal conditions, 38 g/ℓ of dry cell weight with $2.2{\times}10^{9}$ cfu/㎖ of maximum viable cell count was achieved after 72h cultivation. Freeze-drying of the cultured yeast cells resulted in severe reduction of viability. Of the freeze-drying protectants tested, 20% sucrose and 30% lactose were most effective for the preservation of yeast cells with a viability level of 16.3%. A combination of skim milk and lactose with 20% sucrose(w/v) exerted no synergistic influence upo the viability of the cells during cryopreservation by freeze-drying.
The effect of phosphate on the production of avermectin B1a was studied. Response surface methodology was applied to optimize the concentration of organic nitrogen sources. The portion of B1b in total avermectins was decreased from 5.8% to 3.0% by the addition of 1.5 g/ι inorganic phosphate to the production medium. Among organic nitrogen sources, soybean meal was the most effective on avermectin biosynthesis. Results showed that B1a productivity was increased by 44.8% in a laboratory scale fermenter cultivation of Streptomyces avermitilis YA99-40 through fed-batch process. A maximal B1a productivity was obtained by repeated 30 and 20 g/ι of glucose feeding at 136 and 206 hour, respectively. The B1a productivity was increased by 86.3% and the proportion of B1a in the total avermectins was improved from 38% to 45% with respect to the control process. These results would be very useful for enhancing productivity of B1a in an up-scaled processes.
L-Threonine fermentation process was constructed on batch and fed-batch culture by using Escherichia coli MT201. The production type of L-threonine was observed as growth-associated production in batch culture. In fed-batch culture studying optimal concentration of yeast extract in feeding media, when 600 g/l of glucose and 60 g/l of yeast extract were added in feeding media, 87 g/$\ell$ of L-threonine was produced. To improve cell growth and L-threonine production, the culture of high cell density was performed in fed-batch culture with oxygen enriched air and feeding media containing L-methionine and phosphate. Under the conditions, we could achieve the highest L-threonine production of98 g/$\ell$ at 60 h. The highest productivity of L-threonine was about 3.85 g/$\ell$/h.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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