It is well known that unidentified factors in sera, hormones and growth factors promote the proliferation of granulosa cells and nuclear maturation of bovine COCs (cumulus oocytes complexes) in vitro. Attempts had been developed the simple composition of culture media and similar system to in vivo conditions has been applied. In the present study, we investigated the effect of FGF (fibroblast growth factor) on in vitro maturation and in vitro development of Hanwoo COCs. When the COCs were matured in HPM 199 (Inst. of Functional peptide, Japan) containing 0.1, 1 and 10 ng/ml FGF for 24 hr, maturation rates to metaphase II ($70.0{\sim}75.0%$) were significantly higher (p<0.05) than that of control group (0 ng/ml FGF, 37.5%). When matured COCs with FGF were cultured in maturation medium after in vitro fertilization, developmental rates to blastocysts were 9.5, 0 and 2.9%, respectively, compared to 25.0% of the control group (p<0.05). When the matured COCs with FGF were cultured in HPM 199 (IFP971, Inst. of Functional peptide, Japan) containing 10% FBS, 0.8% BSA or 0.1% PVA (polyvinyl alcohol), the blastocyst formation rates were 12.4, 12.8 and 8.5%, respectively, while the rates of matured COCs with FGF and cultured with IVMD and IVD (Inst. of Functional peptide, Japan) without serum were 38.4% and 34.8%, respectively (p<0.05). These results suggested that FGF is available for in vitro maturation of bovine COCs and is not suitable for in vitro development, but further investigation would be need for finding the synergistic autocrine/paracrine fashion of other growth factors in early bovine embryo development.
The present study was carried out to examine the effects of $O_2$ concentrations and culture media (North Carolina State University (NCSU)-23, porcine zygote medium(PZM)-3 or PZM-4) on in vitro development of porcine IVM/IVF embryos. Porcine oocyte-cumulus complexes were cultured in BSA-free NCSU-23 medium containing porcine follicular fluid (10%), cysteine (0.9 mM), $\beta$-mercaptoethanol (25 $\mu\textrm{g}$/$m\ell$), epidermal growth factor (10 ng/$m\ell$) and hormonal supplements (PMSG and hCG: 10 IU/$m\ell$) for 20∼22 h. They were then cultured in the same medium but without hormonal supplements for an additional 20∼22 h. After culture, cumulus-free oocyte were coincubated with liquid boar spermatozoa for 5∼6h. Putative zygotes were transferred to NCSU-23, PZM-3 and PZM-4 medium under the condition of 5% $O_2$ or 20% $O_2$ concentrations. At 48 h, no mean differences were found in cleavage rates. However, the rates of blastocyst formation at day 7 after in vitro fertilization were significantly higher in PZM-3 medium under the condition of 5% $O_2$ concentration than other treatments (19.9$\pm$2.4 vs. 11.1$\pm$2.0 to 16.0$\pm$2.5%, P<0.05). The total cell numbers of blastocysts were significantly higher in 5% $O_2$ than in 20% O2 (P<0.05). However, no differences was found among the culture media within each $O_2$ concentrations. In conclusion, the use of PZM-3 medium in 5% $O_2$ concentration was effective on in vitro development of porcine IVM/IVF embryos.
The present study was carried out to investigate the effects of the maturation media such as a modified TCM-199 (mTCM-199) medium, modified Waymouth MB 752/1 (mWaymouth MB 752/1) medium or NCSU-23 medium on penetrability of pig oocytes by liquid boar sperm. Oocytes (30~40) were transferred into each well of a Nunc 4-well multidish containing 0.5 $m\ell$ maturation medium. When immature pig oocytes were cultured in mTCM-199, mWaymouth MB 752/1 and NCSU-23 maturation media for 44 h in 5% $CO_2$, in air at 38.5$^{\circ}C$, the germinal vesicle breakdown (CVBD) rates of the oocytes were 95.6, 94.1 and 94.9%, respectively, and the maturation rates (metaphase II) of oocytes were 92.5, 90.1 and 91.1%, respectively. No differences were observed among the maturation media. The spermrich portion of ejaculates with greater than 90% motile sperm were used in the experiment. The semen was cooled 22 to 24$^{\circ}C$ over 2 h period. The semen was diluted with Beltsville Thawing Solution (BTS) extender at room temperature to give 2$\times$10$^{8}$ sperm/$m\ell$ in 100 $m\ell$ plastic bottle. Liquid boar semen of 30 $m\ell$ in 100 $m\ell$ plastic bottle was kept at 17$^{\circ}C$ for 5 days. The sperm with greater than 70% motility after day 5 of storage were used for in-vitro fertilization (IVF). After 44 h maturation of immature oocytes, cumulus cells were removed and oocytes (30~40) coincubated far 6 h in 0.5 $m\ell$ mTCM-199 and mTBM fertilization media with 2$\times$1061$m\ell$ sperm concentration. At 6 h after IVF, oocytes were transferred into 0.5 $m\ell$ mTCM-199 and NCSU-23 culture media for further culture 6 or 42 h. Sperm penetration, polyspermy and male pronuclear formation of oocytes at 12 h after IVF, and developmental ability of oocytes at 48 h after IVF were evaluated. The oocytes in combination with NCSU-23 medium for maturation and mTBM medium for IVF increased male pronuclear formation (48.0%) compared to those in combination with mTCM-199 media for maturation and IVF, and mWaymouth MB 752il medium for maturation and mTCM-199 medium far IVF. The rates of cleaved embryos (2~4 cell stage) at 48 h after IVF were 24.1% in combination with mTCM-199 media for maturation, IVF and culture, 43.6% in combination with mWaymouth MB 75211 medium fur maturation and mTCM-199 media for IVF and culture, and 71.2% in combination with NCSU-23 medium for maturation, mTBM medium for IVF and NCSU-23 medium for culture. In conclusion, we found out the oocytes matured in vitro were fertilized by liquid boar sperm stored in BTS extender at 17$^{\circ}C$ for 5 days. We recommend the simple defined NCSU-23 medium for nuclear maturation, mTBM medium and liquid boar sperm for IVF, and NCSU-23 medium for embryo culture.
소 난포란을 체외에서 성숙, 수정시킨 후, 2~8 세포기 수정란을 체외배양액인 CR$_1$aa에 일정량의 nitric oxide scavenger, Hb와, inhibitor인 L-nitro - L- arginine methyl ester (L-NAME)를 첨가 배양하여 체외발육에 미치는 영향을 검토하고자 실시하였다. 체외수정 후 체외배양 48시간에 난구세포의 제거 유.무에 따라 CR$_1$aa 배양액에 hemoglobin을 0, 1, 5$\mu\textrm{g}$/$m\ell$를 첨가한 구의 상실배기이상 체외발육성적은 난구세포를 제거한 구에서 23.8%, 33.3% 및 26.8%였으며, 난구세포를 제거하지 않은 구에서는 각각 39.5%, 54.8% 및 48.8%로써 난구세포를 제거하지 않은 구에 Hb를 1$\mu\textrm{g}$/$m\ell$를 첨가한 구가 여타구 보다 통계적으로 높은 결과를 얻었다(P<0.05). 체외수정 후 체외배양 96시간 후 난구세포를 제거 유.무에 따라 Hb를 0, 1, 5$\mu\textrm{g}$/$m\ell$를 첨가하였을 때, 상실배기 이상 체외발육성적은 난구세포를 제거한 구에서 각각 28.6%, 46.2% 및 39.1%였으며, 난구세포를 제거하지 않은 구에서는 각각 33.9%, 67.2% 및 46.0%로써, 난구세포를 제거하지 않은 구에 Hb를 1$\mu\textrm{g}$/$m\ell$첨가구가 여타구에 비해 통계적으로 유의하게 높게 나타났다( P<0.05).CR$_1$aa배양액에 L-NAME를 0, 10, 50 및 100mM을 첨가한 구에서 상실배이상 발육된 체외발육성적은 각각 55.6%, 64.9%, 58.8% 및 66.7%로써 L-NAME 첨가구가 무첨가구에 비해 커다란 차이가 나타나지 않았다(P>0.05). 본 실험의 결과로 볼 때, nitric oxide scavenger인 hemoglobin의 첨가는 체외수정 후 체외배양 96시간에 1$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ 첨가하는 것이 체외수정란의 체외 발육율을 향상시켰으며, nitric oxide inhibitor인 L-NAME는 첨가 농도에 관계없이 체외수정란의 체외발육율에 영향을 미치지 않는 것으로 나타났다. 본 실험에서 생산된 배반포기 체외수정란의 세포수에는 커다란 차이가 인정되지 않았다.
Melatonin (N-acetyl-5-methoxytryptamine), a major hormone of pineal gland in vertebrates, is known to be associated with regulation of the dynamic physiological functions in general and has some functions on reproduction in the ovarian follicles in particular. And its antioxidant properties as a scavenger are also reported. The aim of this study was to investigate the effect of melatonin on the in vitro maturation of mouse germinal vesicle (GV)-stage oocytes. Oocyte maturation, apoptosis, and mRNA expression of melatonin receptor were analyzed in the cumulus cell-enclosed oocytes (CEOs) cultured with melatonin for 18 h. The CEOs were obtained from 3 wk-old ICR female mice cultured in media with 0, 0.1 nM, 10 nM, or 1,000 nM melatonin for 18 h. And then the extrusion of the first polar body was assessed to evaluate the maturation rate. The apoptosis and mRNA expression of melatonin receptor (Mtnr1-a and Mtnr1-b) in cumulus cells of each group were measured by TUNEL assay, ELISA, and real time RT-PCR after in vitro maturation(IVM). The addition of melatonin in the IVM medium significantly improved nuclear maturation of the mouse GV oocytes and the highest maturation rate were obtained from the group treated with 1,000 nM melatonin. Apoptosis was not detected in IVM oocytes, but detected in cumulus cells. And cumulus cells treated with 1,000 nM melatonin exhibited significantly lower apoptosis. In the group treated with 1,000 nM melatonin, the expression of melatonin receptor mRNA was decreased in CEOs. In conclusion, melatonin has a potentially important role for regulating oocyte maturation and reduces the apoptosis of cumulus cells in vitro.
The study was carried out to investigate the effects of morphology, reproductive cycle, incubation time and activation of oocytes in vitro maturation of canine oocytes and development of canine IVM/IVF embryos. The results were summarized as follows: 1. The developmental rates to 16 cells of fresh, salts and 4$^{\circ}C$-stored oocytes with and without cumulus cells were 14.3%, 5.0% and 7.5%, 2.8% and 5.7%, 0.0%, respectively. The rate of oocytes with cumulus cells(5.7%~14.3%) was higher than that of denuded oocytes(0.0%~5.0%). 2. The developmental rate to If cells of in vitro cultured oocytes recovered from ovaries collected at different stages of the reproductive cycle were 0.0%, 10.7%, 1.5%, respectively. 3. The developmental rate to 16 cells of fresh oocytes with cumulus cell cultured for 24, 32 and 48 hrs in $CO_2$ incubator were 0.0%, 5.3%, 11.8%, respectively. The rate of oocytes cultured for 48 hrs was higher than that oocytes cultured for 24 and 32 hrs. 4. The development to If cells treated activation and non-activation oocytes were 15.0%, 6.7%, respectively. The rate of oocytes treated activation was higher than that oocyte treat non-activation.
Kim, Min-Kyu;Kim, Hye-Jin;Cho, Jong-Ki;Jang, Gu;Lee, Kyu-Seung;Kang, Sung-Geun;Lee, Byung-Chun;Hwang, Woo-Seok
Journal of Embryo Transfer
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v.17
no.2
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pp.145-151
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2002
The aim of these experiments was to investigate in vitro nuclear maturation of canine oocyte collected from various stages of estrus cycles, Ovaries were obtained from 1 to 4 year-old mongrel bitch and minced for oocyte collection in phosphate buffered saline with 100 iu penicillin-G $m\ell$/sup -1/, 50 $\mu\textrm{g}$ streptomycin sulphate $m\ell$/sup -1/ and 0.1% (w/v) polyvinyl alcohol. Cumulus-oocyte-complexes (COCs) were washed in HEPES buffered tissue culture medium (TCM)199 and in vitro matured in TCM-199 culture medium supplemented with sodium pyruvate 0.028mg/$m\ell$, L-glutamine 0.146mg/$m\ell$, penicillin G 10,000 IU/$m\ell$, streptomycin 0.031mg/$m\ell$ and 10% (v/v) fatal calf serum. COCs were in vitro matured for 48~72 hrs at 39$^{\circ}C$ in humidified 5% $CO_2$ in air atmosphere. In vitro matured oocytes were remove the cumulus cells using 0.2% (v/v) hyaluronidase. After denuding, oocyte were placed in acetic acid : methanol : chlorform solusion (3:6 : 1.5 v/v) for 30 sec and acetic acid: ethanol(1:3 v/v) for 48hrs fixation. Nuclear maturation was classified to GV, GVBD, MI, MII and degenerate oocyte under microscopy after 1% aceto-orcein stain. In vitro maturation rates at 48hrs were not significantly difference among the oocytes collected from different stage of estrus at 15.9%, 16.3%, 23.7% and 18.2% for anestrus, proestrus, estrus and diestrus. However, the oocytes maturation(36.6%) of collected from estrus ovaries were significantly different from oocytes derived from proesturs, diestrus and anestrus ovaries(30.8%, 17.5% and 22.1%; p<0.05). The overall in vitro maturation rates were significantly higher (p<0.05) in 72hrs culture than 48hrs culture system. In summary, there was a tendency for higher in vitro maturation rates with the oocyte collected from estrus ovary than other stages of estrus. Also, for nuclear maturation, in vitro culture of oocyte for 72hrs was better than 48hrs culture.
본 연구는 돼지 난포란의 체외 성숙시 hyaluronic acid (HA) 및 Tocopherol첨가가 돼지 수정란의 배발달에 미치는 효과를 검토하기 위하여 실시하였다. 돼지 난포란은 0.1% PVA, 3.05mM D-Glucose, 0.91mM sodium pyruvate, 0.57mM cysteine, 0.5$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ LH, 0.5$\mu\textrm{g}$/$m\ell$ FSH and 10ng/$m\ell$ EGF가 첨가된 TCM-199에서 HA와 Tocopherol을 농도별로 첨가하여 42~44시간 배양함으로써 체외성숙을 유도하였다. HA의 효과를 보기 위해 체외성숙시 0.1% HA가 첨가된 처리구에서 배발달율은 25.6%로 대조구 16.7% 보다 높았다.(Table Omitted). 또한 수정시 HA를 0, 0.02, 0.2, 2.0 로 처리한 결과 8.7%, 19.4%, 11.1%, 0%로 대조구(8.7%)에 비해 0.02% 처리구(19.4%)에서 배발달율이 가장 높았다. 수정후 control, TCM-199, TCM-199+0.1% HA가 첨가된 배양액에 washing해주었을 때 발달율은 TCM-199+0.1% HA 첨가구에서 배발달율(35.6%)이 유의적으로 높게 나타났다. Tocopherol을 0, 50, 100, 200mM로 처리한 결과 수정된 난자중 배발달율은 32.1%, 40.0%, 35.7%, 39.6%로 처리구에서 높았으며, 성숙배양 후반기 22h. 동안 Tocopherol 첨가한 후 수정전 HA로 washing한 결과 Tocopherol 무첨가구에서는 차이를 보이지 않았으나, Tocopherol 첨가구에서는 HA처리구에서(19.0%)에서 무처리구보다(14.3%) 높은 결과를 나타내었다. 따라서 배양액내에 HA, Tocopherol를 첨가함으로써 미성숙 난포란의 수정율 및 발달율을 높일수 있을 것으로 생각된다.
연구목적: 본 연구는 생쥐 preantral follicles의 체외 배양 조건을 확립하고 이를 기초로 높은 체외 발달률 그리고 산자 생산률을 얻고자 하였다. 연구재료 및 방법 : Preantral follicles의 oocyte-granulosa cell complexes (OGCs)는 생후 12일된 FI ($C57BL{\times}CBA$)으로부터 난소를 적출하여 효소를 이용한 방법을 통해 획득하였다. 회수된 complexes는 10일 또는 12일 동안 체외 성장을 위해 Transwell-COL membrane insert로 옮겨졌고 5% FBS, 100 mIU/ml FSH, 100 mIU/ml hMC가 첨가된 ${\alpha}MEM$에서 배양되었다. 체외 성숙을 위해 1.5 IU/ml hCG가 첨가된 ${\alpha}MEM$에서 18 hrs 배양을 실시하였다. 그 후 M16에서 수정능력이 획득된 정자와 수정을 하여 4 hrs, 7 hts, 9 hrs 후에 10% FBS가 첨가된 modified M16 배양액에서 4일간 배양하거나 또는 bovine cumulus cell과 co-culture를 실시하였다. 그리고 형태적으로 정상적인 22개의 상실배와 포배를 2마리의 위임신 대리모 (ICR)의 자궁에 이식하여 산자 생산을 유도하였다. 결과: 1) OGCs 크기가 mouse preantral follicles의 핵 및 세포질 성숙에 미치는 영향을 조사하였을 때 $120{\sim}150{\mu}m$의 preantral follicles (MII: 33.0%, 난할률: 36.7%, 상실배 이상; 20.9%)은 핵 및 세포질 성숙에 있어서 $70{\sim}110{\mu}m$ (MII: 12.2%, 난할률: 10.2%, 상실배 이상: 4.8%)보다 더 높았다(p<0.001). 2)체외 성장기간의 연장이 mouse preantral follicles의 핵 및 세포질 성숙에 미치는 영향을 조사하였을 때 10일 (난할률: 38.2%)은 12일 (난할률: 20.0%)보다 난할률에서만 더 높았다 (p<0.01). 3) 체외 수정 시간의 연장이 mouse preantral follicle의 세포질 성숙에 미치는 영향을 조사하였을 때 9 hrs (난할룰 31.5%, 상실배 이상: 14.3%)은 4 hrs (난할률: 17.5%, 상실배 이상: 4.8%), 7 hrs (난할률: 20.4%, 상실배 이상: 6.1%) 보다 세포질성숙에 있어서 유의하게 높은 발달률을 나타냈다 (p<0.01). 4) 공배양이 mouse preantral follicle의 세포질성숙에 미치는 영향을 조사하였을 때 공배양 (상실배 이상: 17.4%)을 실시했을 때와 M16 (상실배 이상17.4%)에서 배양되었을 때는 차이가 없었다. 5)preantral follicle의 크기 ($120{\sim}150{\mu}m$), 체외 성장기간 (10일), 체외 수정 기간 (9시간), 배양 환경 (단지 medium만 존재)의 적절한 결과들을 종합하여 수행하였을 때 MII 성숙률, 난할률, 상실배 이상의 발달률은 30.2%, 39.3%, 22.5%이었고 총 22개의 상실배 및 포배를 2마리의 대리모에 이식했을 때 1마리가 임신했고 1마리의 산자를 생산했다. 결론: 따라서, 본 실험은 preantral follicle을 이용한 체외 배양 시스템이 생쥐 oocyte를 공급하는 또 다른 방법으로 효과적으로 이용될 수 있다는 것을 시사한다.
This experiment was designed to evaluate the effect of transforming growth factor-$\beta$ (TGF-$\beta$) and insulin-like growth factor-I (IGF-I) in bovine oocyte maturation in the presence or absence of serum on subsequent fertilization and embryo development. In addition, various concent rations of these growth factors were evaluated for the ability to promote development of eight-cell stage embryos to the blastocyst stage. Cumulus-oocyte complexes were recovered from 2 to 6 mm follicles obtained from slaughterhouse ovaries and cultured at 38.5$^{\circ}C$ for 24 hours in TCM-199 (HEPES Modification) with or with out 20 % fetal bovine serum (FBS) to which the following growth factors were added TGF$\beta$ IGF-l or TGF $\beta$ + IGF-I, all at 10 ng/ml each. The matured oocytes were fertilized in IVF-TL medium with frozen-thawed semen at a concentration of 1 ${\times}$ 10$^6$ cells/ml of fertilization medium following Percoll separation. After 24 hours of sperm-egg incubation, the embryos were transferred to CZB medium without glucose for 48 hours and then cultured in TCM-199 with 20% fetal bovine serum (FBS) for 96 hours. The addition of growth factors to IVM medium in the presence of serum had no effect on cleavage and subsequent embryo devlopment to blastocyst. In the absence of serum, TGF- improved cleavage and development to blastocyst compared to control's(p<0.05) and no synergistic effeet of IGF-I + TGF-$\beta$ was observed. In the second experiment, eight-cell embryos obtained by in vitro maturation (IVM) in TCM-199 + 20% FBS without growth facrors and in vitro fertil-ization (IVF) were cultured in the in vitro cuiture (IVC) medium supplemented with 5, 10 ng/ml TGF-$\beta$ or 5, 10, 50, 100 ng/ml IGF-I. Cleavage rate and development to the blastocyst stage was observed during seven days of incubation. The supplementation of 10 ng/ml TGF-$\beta$ to lVC medium for eight-cell embryos improved development to blastocyst (p<0.05) compared to control. In conclusion, these data indicate that the supplementation of growth factors to IVM medium in the presence of serum does not influence cleavage and subsequent embryo development. However, significantly more oocytes matured in serum-free TCM-199 and eight-cell embryos cultured in lVC medium developed to blastocyst with supplementation of 10ng/ml TGF-$\beta$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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① 당 사이트는 회원이 서비스 이용내용에 있어서 본 약관 제 11조 내용을 위반하거나, 다음 각 호에 해당하는
경우 서비스 이용을 제한할 수 있습니다.
- 2년 이상 서비스를 이용한 적이 없는 경우
- 기타 정상적인 서비스 운영에 방해가 될 경우
② 상기 이용제한 규정에 따라 서비스를 이용하는 회원에게 서비스 이용에 대하여 별도 공지 없이 서비스 이용의
일시정지, 이용계약 해지 할 수 있습니다.
제 17 조 (전자우편주소 수집 금지)
회원은 전자우편주소 추출기 등을 이용하여 전자우편주소를 수집 또는 제3자에게 제공할 수 없습니다.
제 6 장 손해배상 및 기타사항
제 18 조 (손해배상)
당 사이트는 무료로 제공되는 서비스와 관련하여 회원에게 어떠한 손해가 발생하더라도 당 사이트가 고의 또는 과실로 인한 손해발생을 제외하고는 이에 대하여 책임을 부담하지 아니합니다.
제 19 조 (관할 법원)
서비스 이용으로 발생한 분쟁에 대해 소송이 제기되는 경우 민사 소송법상의 관할 법원에 제기합니다.
[부 칙]
1. (시행일) 이 약관은 2016년 9월 5일부터 적용되며, 종전 약관은 본 약관으로 대체되며, 개정된 약관의 적용일 이전 가입자도 개정된 약관의 적용을 받습니다.