An immunochromatograhy (IC) based infectious bursal disease virus (IBDV) detection kit, which employed two anti-IBDV VP2 monoclonal antibodies, was evaluated for rapid diagnosis of infectious bursal disease virus (IBD). The detection limit of the IC kit for IBDV was $10^{3.1}$ to $10^{3.9}$$EID_{50}$/mL, indicating that the IC kit detected IBDV sensitively as same as double antigen capture ELISA but less than a RT-PCR assay. The IC kit did not detect other viral pathogens such as Newcastle disease virus, infectious bronchitis, avian influenza virus, and infectious larynotracheitis virus. When applied to tissue samples of experimental chickens died 3 or 4 days post infection after very virulent IBDV (strain Kr/D62) infection, the IC kit detected IBDV in all samples of the bursa of Fabricius, spleen, kidney, cecal tonsil and in 87.5%, 37.5% and 0% of liver, thymus and proventriculus samples. In particular, BF tissue samples showed stronger signal bands than other tissues. Positive signal was observed. All except for one thymus sample of samples having negative results by the IC kit showed the same result with DAS-ELISA but RT-PCR assay detected IBDV in some of IC kit negative samples of thymus and proventriculus. When swab samples from the bursa of Fabricius of dead chickens (n=231) on field farms were tested, the sensitivity and specificity of the IC assay relative to RT-PCR was 100% (109/109) and 97.5% (119/122), respectively and kappa value between both assay was 0.97. The kit can provide a useful aid for rapid detection of IBDV in chickens under field circumstances.
Park, Jeong-Ho;Sung, Haan-Woo;Yoon, Byung-Il;Pak, Son-Il;Kwon, Hyuk-Moo
Korean Journal of Microbiology
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v.45
no.2
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pp.91-98
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2009
Infectious bursal disease (IBD) caused by the infectious bursal disease virus (IBDV) has an important economic impact on the poultry industry worldwide. This study examined the adjuvant effects of a plasmid encoding chicken interleukin-6 (pcDNA-ChIL-6) and levamisole (LMS) on in ovo prime-boost vaccination using a genetic vaccine (pcDNA-VP243) to prime in chicken followed by a killed-vaccine boost. A pcDNA-VP243 was injected into the amniotic sac alone or in combination with a pcDNA-ChIL-6 or LMS at embryonation day 18, followed by an intramuscular injection of killed IBD vaccine at 1 week of age. The chicken were orally challenged with very virulent IBDV (vvIBDV) strain at 3 weeks of age and observed for 10 days. No mortality was observed in the groups that received the pcDNA-VP243 alone and pcDNA-VP243 plus pcDNA-ChIL-6 or LMS compared to 100% mortality in unvaccinated challenge control group. However, as determined by bursal damage (the presence of IBDV RNA, B/B ratio, and lesion score), a pcDNA-VP243 alone group was superior to pcDNA-VP243 plus pcDNA-ChIL-6 or LMS groups in the protection against post-challenge. These findings suggest that in ovo priming with genetic vaccine and boosting with killed vaccine is an effective strategy for protecting chicken against vvIBDV and the addition of pcDNA-ChIL-6 or LMS did not enhance protective immunity.
The VP2 gene of infectious bursal disease virus (IBDV) Chinju which was previously detected in Chinju, Korea was cloned and sequenced to establish the information for the development of genetically engineered vaccines and diagnostic reagents against IBDV. The nucleotide sequence of the entire Chinju VP2 gene consisted of 1,356 bases long encoding 452 amino acids in a single open reading frame (ORF). It consisted of 368 adenine (27.1%), 363 cytosine (26.8%), 339 guanine (25.0%) and 286 thymine (21.1%) residues. The predicted $M_r$ of the Chinju VP2 protein was 48 kDa, and the protein contained 13 phosphorylation sites by protein kinase C, casein kinase II or tyrosine kinase, whereas 3 asparagine-linked glycosylation sites were recognized. The nucleotide sequence of Chinju VP2 ORF had a very close phylogenetic relationship with 98-99% homology to that of the very virulent IBDVs (vvIBDVs) HK46, OKYM, D6948, UK661, UPM97/61 and BD3/99. Also, the Chinju VP2 protein revealed a very close phylogenetic relationship with 99-100% homology to that of these vvIBDVs. The Chinju VP2 protein had 100% amino acid identity in the variable region of residues 206-360 with that of the D6948, HK46, OKYM and UK661, as well as 100% identity in two hypervariable regions of residues 212-224 and 314-324 with those of the D6948, HK46, OKYM, UK661, UPM97/61 and BD3/99. The amino acid sequence of the chinju VP2 protein contained a serine-rich heptapeptide of SWSASGS as in these vvIBDVs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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