Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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1994.04a
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pp.265-265
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1994
본 연구는 간염 바이러스의 X 및 elongated X 유전자를 클로닝하여 E. coli에서 대량 발현시진 후, 그 기능을 여러 측면에서 연구하교 지금까지 알려진 oncogene products, tumor suppressor, 그리고 그 밖의 다른 암 유발인자와의 interaction에 대해 분석함으로써 간암 생성의 분자적 기작을 이해하고 더 나아가 간암의 예방 및 치료제의 개발을 목표로 하였다. 그 일차적 연구로서 이전에 플로닝된 mutant hepatitis Bvirus genome으로부터 X 및 elongated X 유전자를 클로닝하였으며, E. coli에서 대량 발현시키기 위하여 T7 bacteriophage promoter아래에 재 클로닝하였다. 이러한 X 및 ebngated X 유전자를 E. coli에서 대량 발현시킨 후, rabbit anti-X antibody를 이용하여 western blotting을 수행함으로서 이를 확인하였으며 DEAE-cellulose와 heparin-agarose chromategraphy를 이용하여 순수분리하였다. 순수분리된 X 및 etongated X 단백질을 highly differentiated hepatoma cell인 HepG$_2$ cell에 처리하여 transactivation activity를 측정하였다. 그 결과 순수분리된 단백질들이 SV4O promoter를 transactivation 함을 할 수 있었으며, 이로부터 클로닝된 유전자들이 모두 정상적인 기능을 가짐을 확인하였다. 그러고 X 유전자의 작용기작을 규명하기위하여 restriction endonuclease를 이용하여 5 개의 mutant X 유전자를 구성하였으며 현재 이를 HepG2 cell에 transfection 하여 그 기능을 연구하고 있다.
Cytolethal distending toxin(CDT)은 세포 주기 중 G2에서 M 기로의 전환을 막아 세포의 증식을 억제할 수 있는 세균 단백 독소의 일종이다. 구강 미생물 중 유일하게 Actinobacillus actinomycetemcomitans (A. actinomycetemcomitans)만이 이 CDT를 생성 할 수 있는 것으로 알려져 있다. A. actinomycetemcomitans는 localized aggressive periodontitis (LAP)의 원인균으로 여겨지며 비 운동성의 그람 음성 구간균이고 $37^{\circ}C$, 5% $CO_2$ 하에 성장이 왕성하다. A. actinomycetemcomitans의 CDT는 3개의 인접한 유전자인 cdtA, cdtB, cdtC에 의해 형성 되며 각각의 유전자에 대한 단백질의 기능은 아직 완전히 밝혀지지 않았다. 현재까지 연구에 의하면 cdtA는 CDT의 세포부착과 관련이 있는 것으로 여겨지며 이 유전자의 기능 이상 시 CDT의 독성 효과가 현저히 감소한다고 알려져 있다. 따라서 본 연구는 A. actinomycetemcomitans의 cdtA 유전자를 클로닝, 단백질 발현하여 향후 치주질환의 발병 과정에서 CdtA의 역할을 규명하고 질환의 예방 및 치료법에 도움을 주고자 하였다. A. actinomycetemcomitans Y4균주를 cdtA 유전자 클로닝을 위해 사용하였다. A. actinomycetemcomitans의 genomic DNA는 genomic DNA 추출 kit를 사용하여 분리하고 cdtA에 특이적인 primer를 이용하여 PCR을 통해 cdtA 유전자를 증폭하였다. 증폭된 cdtA 유전자를 T-vector에 클로닝 하였으며, 클로닝 된 cdtA 유전자는 단백질 발현을 위해 pRSET Avector에 서브클로닝 한 후 발현 균주인 BL21(DE3)를 이용하여 발현시켰다. 발현 후 Ni-NTA AP conjugate를 이용한 Western blot을 통해 pRSET-CDTA를 확인하였다.
To increase the production of glutathione by the expression of recombinant gsh plasmids, two genes responsible for the biosynthesis of glutathione were isolated and cloned. To clone a gshI gene, the GS903 mutant strain, which is deficient in $\gamma$-glutamylcysteine synthetase activity, has been raised. A gshI gene was cloned using pBR322 plasmid as a 3.6 Kb PstI DNA fragment isolated from E. coli K-12 chromosomal DNA. Also a gshIl gene was cloned using pUC13 plasmid as a 2.2 Kb PstI-BamHI DNA fragment. To study the effects of plasmid copy number and passenger DNA size on the expression levels of the gsh genes, various recombinant plasmids containing different sets of genes were constructed. The expression levels of the gsh genes were increased approximately twice higher in pUC series plasmids than that in pBR322 plasmid. But the sizes of the passenger DNA containing the gsh genes in the vector plasmid did not affect on the expression levels of the gsh genes.
본 연구는 서산 6쪽 마늘로부터 완전장 유전자 은행의 제작과 이를 통해서 확보된 1,000여개 재조합 클론에 대한 염기서열 결과를 web-based database를 통한 상동성 분석으로 부터 서산 마늘의 발현 유전자에 대한 생물정보학적 분석에 관해 것이며 본 연구로 부터 마늘의 대표적 생리활성 물질인 allicin의 생성에 관여하는 효소인 allinase의 cDNA를 클로닝 및 완전 염기서열을 해석하였으며 allinase 유전자의 genomic structure 에 대한 일부의 결과를 확보하였다. 또한 다양한 생물종에서 연구 되어지고 있는 생리활성 단백질인 lectin 유전자 cDNA를 클로닝하여 완전 염기서멸을 분석하고, 6xHis Tag올 통한 재조합 단백질을 대장균에서 E.coli에서 발현시켰다.
Histone deacetylase (HDAC) removes acetyl group in lysine residue of histone protein, which is transferred by histone acetylase. HDAC is important in the stabilization and regulation of gene expression in eukaryotic organisms. PCR has been carried out to clone HDAC genes using cDNA library and genomic DNA as the templates from Ganoderma lucidum isolated in Korea. One 470 bp cDNA gene fragment, and 3 genomic HDAC fragments (585 bp, 589 bp, 630 bp) were amplified. When their deduced amino acid sequences were compared with other fungal HDACs, they showed 59-72% homology.
The gene encoding chondroitinase ABC from a genomic library of Bacteroides stercoris HJ-15, which was isolated from human feces, was cloned. The cloned gene consisted of 3,090 bp and was predicted to encode a 1,029−amino-acid protein. The B. stercoris chondroitinase ABC gene was not homologous to other chondroitinase ABC genes; however, its amino acid sequence showed 71% homology to that of Bacteroides thetaiotaomicron. The gene was cloned in the pET-26b+ expression vector and expressed under the T7 promoter in Escherichia coli BL21(DE3). The purified recombinant chondroitinase ABC degraded chondroitin sulfates A, B, and C.
Numerical identification was carried out for an isolate of Streptomyces strain producing the extracellular p-lactamase inhibitor. Fifty taxonomic unit characters were tested and the data were analyzed numerically using the TAXON program. The isolate was identified to the major cluster 5 of Streptomyces and it was best matched to Streptomyces omiyaensis which is a synonym of Streptomyces exfoliatus. Therefore, it was concluded that the isolate was identified to be a strain (SMF 19) of Streptomyces exjbliatus.
In order to study regulation of rbcL gene expression, rbcL gene of chloroplast DNA (Cp DNA) from maize was cloned. Cp DNA was isolated from intact chloroplast and digested with BamHI. BamHI 9 fragment of Cp DNA containing rbcL gene was ligated to pUC19 and transformed into E. coli DH5a. This recombinant plasmid was named pRLYSl. pRLYSl was hybridized with a part of rbcL gene from rice and digested with restriction enzyme BamHI, HindIIl, and PstI. From these results, it was confirmed that pRLYS1 contains intact rbcL gene and orientation of BamHI 9 fragment of Cp DNA in pRLYS1 was determined.rmined.
형질전환체 제작 시 발현벡터가 삽입되는 위치에 따라 발현 또는 억제되는 현상인 ‘position effect(위치효과)’를 극복하기 위해 Matrix Attachment Region(MAR)을 포함하는 발현벡터를 제작하였다 MAR는 핵 기질(nuclear matrix) 부착 부위로 발현조절에 관여하는 전사인자 등이 존재하는 핵 기질 부착부위로, 삽입된 발현벡터가 전사활성을 할 수 있는 게놈 환경을 제공해 주어 형질전환 유전자 발현을 향상시켜 준다고 보고되고 있다. 본 연구에서는 사람에서 이미 분리되어 염기서열이 밝혀진 MAR를 PCR로 증폭하였다. 증폭된 1,270 bp의 human alpha-1-antitrypsin MAR와 1,080 bp human corticosteroid binding globulin promoter MAR를 T vector에 클로닝하여 염기서열을 확인했으며 발현벡터 클로닝에 사용하였다. 유용 유전자와 세포 형질전환에 사용할 선별 유전자로 neo를 포함하며, 그 외 벡터골격은 pGL3 control vector를 사용하여 기본 발현벡터를 제작하였다. 이 벡터에 MAR를 5', 3' 양쪽 또는 한쪽만 포함하도록 클로닝하였다. 이는 MAR의 위치에 따른 게놈내 삽입 및 발현효과를 확인하여 형질전환동물 생산용 발현벡터로 활용하고자 한다.
Eukaryotic gene expression is an important process, which is initiated by several transcription factors and RNA polymerases that occupy the promoter region of genomic DNA. Although there are many experiments to identify the promoter region in a gene, it is time and labor consuming to finalize it. In this study, we utilized bioinformatic programs, including Ensembl, NCBI, and CpG plots, to identify the cloning promoter region in SETDB1 genomic DNA. We performed PCR amplification to obtain the SETDB1 promoter on an approximately 2 kb region upstream from the TSS named SETDB1-P1. The PCR product was ligated with TA cloning vectors, and we confirmed the insert size using restriction enzyme digestion. Sequentially, the insert was subcloned into a pGL3-luc vector to produce pGL3-SETDB1- P1-luc and then confirmed by DNA sequencing. We also obtained a fragmented PCR product called P2 and P3 and performed a luciferase assay using pGL3-SETDB1-P1-luc transfection. We found that several anticancer drugs, including taxol, 4-FU, and doxorubicin, decreased the promoter activity of SETDB1. We obtained consistent data on the regulation of SETDB1 gene expression after anticancer drug treatment using Western blot analysis and RT-PCR. Our results suggest that promoter cloning of the human SETDB1 gene utilizing bioinformatics is a very useful and timesaving approach to study gene expression.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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