• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.24 no.4
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• pp.419-428
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• 2000

Leptin, the product of obese (ob) gene, is an adipocyte-derived satiety factor that plays a major role in the regulation of food intake, energy homeostasis, body weight, reproductive physiology and neuropeptide secretion. The present study was designed to generate transgenic mice expressing antisense mouse ob (mob) gene. Total RNA was extracted from the adipose tissues of mouse, then reverse transcription was performed. The 303 and 635 bp fragments of anti I and II cDNAs were amplified from mob cDNAs by PCR. The two mob cDNAs were reversely ligated into between adipose tissue specific aP2 promote and SV40 poly(A) site. Transgenic mice carrying two different kinds of antisense mob transgenes were generated by DNA microinjection into pronucleus. Total 14 transgenic mice were born, and the 4 and 5 founder lines of the transgenic mice with anti I and II transgenes were respectively established. Antisense mRNA expression was detected in transgenic F$_1$ mice by RT-PCR analysis. This result suggests that the transgenic mice expressing antisense mob mRNA may be useful as an animal disease model to be obesity caused by decreased amount of leptin secretion.

• Proceedings of the KSAR Conference
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• 2003.06a
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• pp.38-38
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• 2003

본 연구는 사람 조혈촉진유전자(hEPO)가 도입된 형질전환돼지 Fl 수컷과 암컷간 교배로 F2 생산시, Fl 모돈에 대한 임신기간(약 114일)내 혈액조성(적혈구, 백혈구, Hemoglobin, Hematocrit value, MCV, MCH, MCHC, 혈소판) 변화를 구명하기 위하여 실시하였다. 시험에 이용된 암퇘지는 형질전환 F1 암컷 2마리와 일반돼지 1마리였고 교배와 동시에 임신기간동안(114일) 5일 간격으로 5ml의 혈액을 경정맥(jugular vein)에서 채취하였으며 혈액조성분석은 Celltac MEK 5108K(Nihon Kohden, Japan)를 이용하였는데 얻어진 결과는 다음과 같다. 임신기간중 혈액내 백혈구의 변화는 일반돼지의 경우 13.8($\pm$2.4)$\times$$10^3$/ul 로임신기간내에 일정한 변화양상을 보였으나 형질전환돼지의 경우 29.4($\pm$19.4)$\times$$10^3$와 22.5($\pm$14.1)$\times$$10^3$/ul 으로 일반돼지보다는 높게 나타났으며 임신기간내에 매우 높은 변화 양상을 나타내었다. 또한 적혈구는 일반돼지(7.2$\pm$0.7 $\times$$10^{6}$/ul)에 비하여 형질전환돼지(11.5$\pm$0.5 와 11.9$\pm$0.5 $\times$$10^{6}$ul)에서 매우 높게 나타났으며 변화양상은 일반돼지와 마찬가지로 작게 나타났다. 적혈구와 함께 Hemoglobin(Hb)과 평균혈구용적율(Hematocrit value ;, HCT) 모두 형질전환돼지가 일반돼지보다 높게 나타났으며 변화양상 또한 작게 나타남으로서 사람 조혈촉진유전자(hEPO)가 형질전환된 돼지에서는 지속적으로 발현되어 조혈촉진이 이루어지고 있으며, 조혈촉진에 의해 헤모글로빈 및 적혈구가 생성되어 혈액내 높은 혈구용적율(HCT)을 이루고 있음을 알 수 있었다. 적혈구 평균용적(Mean Corpuscular Volume ; MCV), 평균적혈구혈색소량(Mean Corpuscular Hemoglobin ; MCH), 평균적혈구혈색소농도(Mean Corpuscular Hemoglobin Concentration ; MCHC) 그리고 혈소판(Platelets) 분석결과 형질전환돼지가 일반돼지보다 약간 높은 수치를 나타냈으며 변화양상 또한 유사한 결과를 나타내었다. 이와 같은 시험분석결과를 토대로 사람 조혈촉진유전자(hEPO)가 형질전환된 돼지는 유즙으로 발현할 수 있도록 형질전환 되었음에도 불구하고 헤모글로빈 및 적혈구가 증가함으로서 형질전환돼지 개체의 혈장으로도 사람 조혈촉진인자가 분비하고 있음을 간접적으로 알 수 있었다. 정상돼지 보다 형질전환돼지가 약 30% 높은HCT 수준을 보였으며 이러한 현상은 사람에서는 적혈구증다증(erythrocytosis)으로 분류되고 있다. 이에 대한 고찰은 형질전환돼지 자체의 생리적 문제점(side effects)에 대한 해결과 더불어 기존의 인간질병에 대한 모델동물로서의 이용 가능성을 제시할 수 있는 것으로 사료된다.

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.27 no.2
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• pp.179-185
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• 2003

To determine whether the diphtheria toxin-A (DT) gene disrupts development of thymocytes in transgenic animal, the DT-A gene was used for the production of transgenic mice directed by proximal Ick promoter sequences. Two transgenic founder mice that contained several copies of transgene were produced by DNA microinjection and integration of transgene in transgenic mice was confirmed by PCR and Southern blotting analysis. Transgenic $F_1$ and $F_2$ mice were produced by outbreeding of founder and $F_1$ mice to investigate expression of transgene and phenotypes in transgneic mice. Expression of the diphtheria toxin gene was confirmed in thymus, spleen and liver of transgenic mice by RT-PCR. In circulating blood of transgenic mice, lower number of circulating white blood cells and platelets were observed compared with that of normal mice. In addition, transgneic mice had reduced number of circulating peripheral T-cells analyzed by FACS with anti-CD3 antibody. The data in these transgenic mice indicate that DT gene can play a disruptive role in developing thymocytes of transgenic mice resulted in lower number of T-cells that can be applicable to a wide range of tissues in other animals.

• Proceedings of the KSAR Conference
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• 2002.06a
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• pp.60-60
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• 2002

본 연구는 사람의 조혈촉진유전자가 형질전환된 돼지의 유즙내 hEPO 발현농도를 확인하고 3종의 동물 (mouse, rat, swine)에서 hEPO 의 생리활성을 분석하기 위하여 실시하였다. 새롬이 Fl 암컷의 유즙을 원심분리하여 지방을 제거한 후 hEPO 의 농도를 측정하고, PBS 로 유즙내 hEPO 농도가 100 IU/㎖가 되도록 희석하였다. Mouse (ICR)는 피하주사로 20 IU씩 2일 간격으로 3회 (0, 2, 4 일차 ) 주사하였으며, 주사 후 4회에 걸쳐 (0, 2, 4, 7 일차) 혈액을 채취하여. 분석하였다. (중략)

• Proceedings of the KSAR Conference
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• 2004.06a
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• pp.188-188
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• 2004

근래에 많은 형질전환 실험동물이 생산되어 인간을 대체하여 전임상실험에 사용되고 있으며, 그 요구는 점차 증가되고 있다. 그러나 지금까지 생산된 것은 소형 실험동물에 국한되고 있어, 사람과의 그 크기와 기능에 거리가 있었던 것이 사실이다. 본 실험은 중형 실험동물이자 사람과 여러 기관 및 조직이 유사하다고 알려진 돼지로부터 난자를 채취하여 난자의 핵을 GFP가 발현된 세포의 핵으로 치환하여 태어난 산자를 재복제하여 생산된 돼지 신생자를 이용하여 각 기관 및 조직에서 GFP의 발현을 RT-PCR, Northern blot 및 immunocytochemistry 방법으로 분석하였다. (중략)

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.14 no.3
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• pp.191-197
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• 1990

The transgenic mice were produced by microinjection of human growth hormone gene fused with mouse metallothionein Ⅰ promoter. They were mated with momal mice by backcross or brother-sister mating. The reproduction efficiencies of female and male n the FO transgenic mice were 17.6%(3/17 mice) and 31.2%(5/16 mice), respectively, and were very lower than that in normal mice(85.7% and 100%, respectively). Interestingly, a few of female transgenic mice were fertile which was different from the previous reports. Of 6 fertile transgenic mice, 2 mice were identified as mosaic type by the reduced frequency of genetic transmission to successive generation below Mendelian levle and the enhanced copy numbers of transgene in progeny mice compared with the transgenic parent. In the group of F1, F2, F3 transgenic mice the reproduction efficiencies of males were gradually improved, whereas females were absolutely infertile. It was consequently shown that the transgenic mice expressing human growth hormone gene were frequently infertile, but the genotypic and phenotypic characteristics of the fertile transgenic mice were normally passed on to the progeny through herm line. Therefore it must be considered wheter or not the products of foreign DNA introduced into animals will detrimentally affect their physiological aspects.

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.19 no.4
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• pp.293-305
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• 1996

Retrovirus는 DNA가 아닌 RNA를 유전 물질로 갖고 있는 동물 virus인데 각 virus는 RNA와 함께 크게 gag, pol. 그리고 env 등의 3가지 단백질로 구성되어 있다. gag 단백질은 virus의 내부구조를 형성하는 단백질이고, pol단백질은 감염을 통해 표적 세포에 도입된 retrovirus의 RNA를 DNA로 역전사시키는 reverse transcriptase의 역할을 하며, env단백질은 virusdml 외부를 구성하는 단백질로써 이 단백질에 의해 각 retrovirus의 종류에 따른 감염이 가능한 표적세포의 종류가 결정된다(host cell specificity). 따라서 어떤 retrovirus의 envelope단백질과 표식세포에 있는 retrovirus의 envelope 단백질에 대한 특정 receptor와의 상호 작용에 의해 세포속으로 도입된 virus의 RNA는 reverse transcriptase에 의해 DNA로 역전사된 후 표적세포의 genomic DNA에 삽입되는 특징을 가진다. 이러한 특징을 가진 retrovirus vector system은 형질 전환 동물의 생산에 있어서 현재까지의 주된 방법인 수정란의 pronucleus에의 DNA microinjection방법 보다 여러 가지 면에서 우수함에도 불구하고 쥐 이외의 다른 동물에서는 거의 이용되고 있지 않는 실정이다. 주된 원인으로는 현재 사용되고 있는 대부분의 retrovirus vector system이 쥐의 백혈병 virus를 근간으로 하기 때문에 이 system에서 생산된 virus는 쥐 이외의 다른 동물, 특히 유제류의 세포에는감염성이 아주 약하기 때문이다. 이러한 결점을 해결하기 위하여 최근에 기존의 쥐 백혈병 virus의 envelope protein을 vesicular stomatitis virus의 G protein으로 대체한 hybrid retrovirus vector system이 개발되었다. 이러한 system에서 생산되는 virus는 조류를 포함한 거의 모든 종류의 동물세포를 감염시킬 수 있으며 몇몇 특정세포에 대해서는 기존의 retrovirus vector system에 비해 1,000배 이상의 높은 감염도를 나타내는데 그 특징이 있다. 따라서 이러한 새로운 virus vector system을 이용할 경우, 보다 다양한 종에 있어서 형질전환 동물을 효율적으로 생산할 수 있을 뿐만 아니라 형질전환 동물의 생산 방법 자체를 다양화 시킬 수 있다고 본다.

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.27 no.3
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• pp.225-231
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• 2003

Transgenic mice containing Diphtheria Toxin-A (DT-A) gene fused to proximal lck promoter sequences was used for analysis of DT-A gene expression and thymocyte development. The diphtheria toxin gene was expressed in thymus, spleen and liver of transgenic mice confirmed by RT-PCR and Northern blotting. A FACS analysis with thymocyte cell surface antigens antibodies (CD4 and CD8) showed that the number of peripheral mature single positive thymocytes ($CD4^{+}\;and\;CD8^{+}$ cells) T-cells was severely reduced in transgenic mice compared to that in the non-transgenic littermates. A relative portion of $CD8^{+}$ single positive thymocytes was about 33.2% in transgenic peripheral T-cells while 50.6% in wild type. Reduction of $CD4^{+}$ cell numbers in transgenic mice was observed (5.9% in transgenic versus 10.3% in non-transgenic). The data from analysis of these transgenic mice indicate that the proximal lck promoter regulated the expression of DT-A gene at high level in developing thymocytes and the DT-A disrupted developing thymocytes in transgenic mice.

• Korean Journal of Animal Reproduction
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• v.25 no.1
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• pp.85-90
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• 2001

To study the signaling effect of growth hormone (GH) in vivo on animal physiology, transgenic mice containing GH Receptor (GHR) gene fused to metallothionein promoter were produced by DNA microinjection into one-cell stage embryos. Three founder mice were produced with transgenic mice with approximately 4~6 copies of GHR genes and transgene was transmitted into the progeny. The founder mice were mated with normal mice to produce F$_1$ mice, and intergation and transmission of transgene were checked by polymerase chain reaction and Southern blot methods. Transmission rate of GHR transgenic mice were 20~50% in F$_1$ generation and 50% in F$_2$ generation which means that some founder mice were mosaic and transgene in F$_1$ mice was transmitted to F$_2$ progeny with Mendelian ratio. Death rate of GHR transgenic mice after birth was about 10~30% in F$_1$ and F$_2$ progenies indicating that GHR gene may affect death of transgnenic progeny.

• Proceedings of the KSAR Conference
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• 2003.06a
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• pp.49-49
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• 2003

본 연구에서는 vesicular stomatitis virus G glycoprotein (VSV-G)를 envelope로 가지는 pantropic retrovirus vector system을 이용하여 재조합 human FSH 유전자가 전이된 형질전환 닭을 생산하고자 하였다. Human FSH $\alpha$ 및 $\beta$ 유전자와 CTP linker는 human pituitary gland cDNA library에서 RT-PCR 방법을 이용하여 cloning하였으며, 각각의 fragment는 FSH$\beta$-CTP-FSH$\alpha$ 순서의 단일사슬로 연결하였다. 연결된 FSH$\beta$-CTP-FSH$\alpha$는 retroviral vector 내의 $\beta$-actin promoter의 조절 하에 도입한 후, PT67 packaging cell line에 transfection하여 virus를 생산하였으며 생산된 virus는 pantropic한 virus producing cell인 GP293에 infection하여 FSH 유전자가 도입된 virus를 생산하였다. FSH 유전자의 발현을 in vitro에서 확인하기 위하여 CHO (chinese hamster ovary) 세포에 virus를 감염시킨 후, 세포의 배양액을 취하여 electrochemilumine-scence immunoassay 방법으로 정량하였다. In vitro에서 전이 후 발현이 확인된 FSH 외래유전자의 retroviral vector virus를 초원심분리로 고농축하여 stageX의 계란의 배반엽 층에 주입하였으며, 그 결과 18%의 부화율과 91%의 부화한 닭의 유전자 전이율을 확인할 수 있었다. 전이된 유전자의 확인은 FSH$\beta$와 Neo 유전자에 대한 primer를 이용한 RT-PCR의 방법을 이용하였다. In vitro에서와는 달리 in vivo에서는 FSH 유전자의 전이는 확인되었으나 발현을 확인하지는 못하였는데, 이는 적은 수의 실험군이 형질전환율에 비해 상대적이지 못하였거나, 외래 유전자인 FSH의 발현에 의한 생리적인 부작용이 유발되어 해당개체가 부화되지 못한 것으로 추정된다. 본 문제점을 해결하기 위하여 실험군의 수를 늘리고 외래 유전자에 대한 controllable expression system이 보완될 필요성이 요구되며, 이러한 점이 해결된다면 높은 유전자 전이율에 기인하여 retrovirus를 이용한 형질전환 방법은 형질전환 가금의 생산에 있어서 매우 효율적이고 주목할 만한 방법으로 사료된다.