Although ascorbate (vitamin C) has been shown to have anti-cancer actions, its effect on human hepatoma cells has not yet been investigated, and thus, the exact mechanism of this action is not fully understood. In this study, the mechanism by which ascorbate induces apoptosis using HepG2 human hepatoblastoma cells is investigated. Ascorbate induced apoptotic cell death in a dose-dependent manner in the cells, was assessed through flow cytometric analysis. Contrary to expectation, ascorbate did not alter the cellular redox status, and treatment with antioxidants (N-acetyl cysteine and N,N-diphenyl-p-phenylenediamine) had no influence on the ascorbate-induced apoptosis. However, ascorbate induced a rapid and sustained increase in intracellular $Ca^{2+}$ concentration. EGTA, an extracellular $Ca^{2+}$ chelator did not significantly alter the ascorbate-induced intracellular $Ca^{2+}$ increase and apoptosis, whereas dantrolene, an intracellular $Ca^{2+}$ release blocker, completely blocked these actions of ascorbate. In addition, phospholipase C (PLC) inhibitors (U-73122 and manoalide) significantly suppressed the intracellular $Ca^{2+}$ release and apoptosis induced by ascorbate. Collectively, these results suggest that ascorbate induced apoptosis without changes in the cellular redox status in HepG2 cells, and that the PLC-coupled intracellular $Ca^{2+}$ release mechanism may mediate ascorbate-induced apoptosis.
The electron spin resonance signals of $Bi_xCa_{1-x}MnO_3$ have been acquired for two samples of x=0.15 and 0.22. ESR signal of the sample of x=0.15 clearly shows signal shape change into Dysonian with g-value shift at around 165 K so that the charge ordering temperature can be identified. The general features of ESR signal of the two samples well correlate with magnetic susceptibility measurement and also confirm the validity of former investigations.
Although alteration in protein phosphorylation by specific protein kinases is of importance in transducing cellular signals in a variety of neural/endocrine systems, little is known about protein phosphorylation in the hvpothalamus. The present study aims to explore whether activation of the second messenger-dependent protein kinases affects phosphorylation of specific proteins using a cell free phosphorylation system followed by SDS-polvacrylamide gel electrophoresis. Cytoplasmic fractions derived from hvpothalami of immature rats were used as substrates and several activators and/or inhibitors of CAMP-, phosphatidylinositol- and Ca2+-calmodulin-dependent protein kinases were assessed. Many endogenous proteins were extensively phosphorylated and depending on the signal transduction pathways, phosphorvlation profiles were markedly different. The present data indicate that extracellular signals may affect cellular events through protein phosphorylation by second messengers-protein kinases in the rat hypothalamus.
Cytosolic Ca2+ levels ([Ca2+]c) change dynamically in response to inducers, repressors, and physiological conditions, and aberrant [Ca2+]c concentration regulation is associated with cancer, heart failure, and diabetes. Therefore, [Ca2+]c is considered as a good indicator of physiological and pathological cellular responses, and is a crucial biomarker for drug discovery. A genetically encoded calcium indicator (GECI) was recently developed to measure [Ca2+]c in single cells and animal models. GECI have some advantages over chemically synthesized indicators, although they also have some drawbacks such as poor signal-to-noise ratio (SNR), low positive signal, delayed response, artifactual responses due to protein overexpression, and expensive detection equipment. Here, we developed an indicator based on interactions between Ca2+-loaded calmodulin and target proteins, and generated an innovative GECI sensor using split nano-luciferase (Nluc) fragments to detect changes in [Ca2+]c. Stimulation-dependent luciferase activities were optimized by combining large and small subunits of Nluc binary technology (NanoBiT, LgBiT:SmBiT) fusion proteins and regulating the receptor expression levels. We constructed the binary [Ca2+]c sensors using a multicistronic expression system in a single vector linked via the internal ribosome entry site (IRES), and examined the detection efficiencies. Promoter optimization studies indicated that promoter-dependent protein expression levels were crucial to optimize SNR and sensitivity. This novel [Ca2+]c assay has high SNR and sensitivity, is easy to use, suitable for high-throughput assays, and may be useful to detect [Ca2+]c in single cells and animal models.
Dexmedetomidine is a sedative and analgesic agent that exerts its effects by selectively agonizing ${\alpha}2$ adrenoceptor. Histamine is a pathophysiological amine that activates G protein-coupled receptors, to induce $Ca^{2+}$ release and subsequent mediate or progress inflammation. Dexmedetomidine has been reported to exert inhibitory effect on inflammation both in vitro and in vivo studies. However, it is unclear that dexmedetomidine modulates histamine-induced signaling and pro-inflammatory cytokine expression. This study was carried out to assess how dexmedetomidine modulates histamine-induced $Ca^{2+}$ signaling and regulates the expression of pro-inflammatory cytokine genes encoding interleukin (IL)-6 and -8. To elucidate the regulatory role of dexmedetomidine on histamine signaling, HeLa cells and human salivary gland cells which are endogenously expressed histamine 1 receptor were used. Dexmedetomidine itself did not trigger $Ca^{2+}$ peak or increase in the presence or absence of external $Ca^{2+}$. When cells were stimulated with histamine after pretreatment with various concentrations of dexmedetomidine, we observed inhibited histamine-induced $[Ca^{2+}]_i$ signal in both cell types. Histamine stimulated IL-6 mRNA expression not IL-8 mRNA within 2 hrs, however this effect was attenuated by dexmedetomidine. Collectively, these findings suggest that dexmedetomidine modulates histamine-induced $Ca^{2+}$ signaling and IL-6 expression and will be useful for understanding the antagonistic properties of dexmedetomidine on histamine-induced signaling beyond its sedative effect.
Kim, Joon-Chul;Li, Yuhua;Lee, Sunwoo;Yi, Young-Joo;Park, Chang-Sik;Woo, Sun-Hee
Molecules and Cells
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v.26
no.6
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pp.558-565
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2008
Although the fertilizing ability of spermatozoa is greatly reduced after freezing, complete understanding of alterations induced by cryopreservation has not been elucidated. The present study evaluates the effects of cryopreservation on the $Ca^{2+}$ handling of boar spermatozoa using several sperm activators. Intracellular $Ca^{2+}$ signals from single spermatozoa were measured using confocal $Ca^{2+}$ imaging of unfrozen samples and of other spermatozoa after having been frozen. Elevation of the external $K^{2+}$ concentration elicited a three times larger $Ca^{2+}$ increase in fresh spermatozoa than in cryopreserved spermatozoa. Caffeine elicited $Ca^{2+}$ transients with some oscillations in the fresh spermatozoa, but not in the thawed spermatozoa. Depletion of the $Ca^{2+}$ store with thapsigargin induced a rapid rise in $Ca^{2+}$ in the control but generated a smaller increase of $Ca^{2+}$ after thawing. Exposure to progesterone induced a biphasic rise of the $Ca^{2+}$ level in the fresh spermatozoa only. Sperm viability was reduced by cryopreservation. Resting $Ca^{2+}$ levels in fresh and cryopreserved spermatozoa were similar. Longer incubation (2.5 h) of thawed spermatozoa partly recovered the $Ca^{2+}$ response to the interventions. These results suggest that cryopreservation reduces the responsiveness of spermatozoa to depolarization, modulators of the internal $Ca^{2+}$ store and progesterone in terms of the $Ca^{2+}$ signal, thus providing a possible mechanism for reduced fertility observed in cryopreserved boar spermatozoa.
Proceedings of the Korean Biophysical Society Conference
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1998.06a
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pp.30-30
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1998
The effects of capsaicin on phospholipase (PLC)-induced capacitative $Ca^{2+}$ entry (CCE) were investigated in PC12 cells. Capsaicin inhibited one of PLC-linked signal, extracellular ATP-induced norepinephrine secretion with a concentration range, 10-100 $\mu$M. Capsaicin did not inhibit the peak portion of extracellular ATP-mediated [Ca$^{2+}$]i rise, but it recovered more rapidly to the normal level of [Ca$^{2+}$]i from the sustained [Ca$^{2+}$]i level.(omitted)ted)
Lee, Sung-Ho;Kim, Cha Young;Lim, Chae Oh;Lee, Soo In;Gal, Sang Wan;Choi, Young Ju
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.43
no.1
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pp.5-11
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2000
Three cDNA clones encoding rice calmodulin (CaM) isoforms (OsCaM-1, OsCaM-2, and OsCaM-3) were isolated from a rice cDNA library constructed from suspension-cultured rice cells treated with fungal elicitor. The coding regions of OsCaM-1 and O.sCaM-2 were 89% homologous at DNA Ievel, whereas the 5' and 3' untranslated regions were highly divergent. The polypeptides encoded by OsCaM-1 and OsCaM-2 was identical except two conservative substitution at position 8 and 75. The coding region of OsCaM-3 was consist of a typical conserved CaM domain and an additional C-terminal extension. The amino acid sequence of conserved CaM domain of OsCaM-3 shared only 86% identity with that OsCaM-1. The OsCaM-3 cDNA is belongs to a novel group of calmodulin gene due to its C-terminal extension of 38 amino acids, a large number of which are positively charged. The extension also contains a C-terminal CaaX-box prenylation site (CVlL). Genomic Southern analysis revealed at least six copies of CaM or CaM-related genes, suggesting that calmodulin may be represented by a small multigene family in the rice geneme. Expression of OsCaM gene was examined through Northern blot analysis. Transcript level of OsCaM-3 was increased by treatment with a fungal elicitor, whereas the OsCaM-1 and OsCaM-2 genes did not respond to the fungal elicitor. The expression of OsCaM-3 gene was remarkable inhibited in the rice cells treated with cyclosporine A, calcinurin inhibitor.
The glutamate receptors (GluRs) are key receptors for modulatory synaptic events in the central nervous system. It has been reported that glutamate increases the intracellular $Ca^{2+}$ concentration ($[Ca^{2+}]_i$) and induces cytotoxicity. In the present study, we investigated whether the glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase was associated with the activation of ionotropic (iGluR) and metabotropic GluRs (mGluR) in substantia gelatinosa neurons, using spinal cord slice of juvenile rats (10${\sim}21 day). $[Ca^{2+}]_i$ was measured using conventional imaging techniques, which was combined with whole-cell patch clamp recording by incorporating fura-2 in the patch pipette. At physiological concentration of extracellular $Ca^{2+}$, the inward current and $[Ca^{2+}]_i$ increase were induced by membrane depolarization and application of glutamate. Dose-response relationship with glutamate was observed in both $Ca^{2+}$ signal and inward current. The glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase at holding potential of -70 mV was blocked by CNQX, an AMPA receptor blocker, but not by AP-5, a NMDA receptor blocker. The glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase in $Ca^{2+}$ free condition was not affected by iGluR blockers. A selective mGluR (group I) agonist, RS-3,5-dihydroxyphenylglycine (DHPG), induced $[Ca^{2+}]_i$ increase at holding potential of -70 mV in SG neurons. These findings suggest that the glutamate-induced $[Ca^{2+}]_i$ increase is associated with AMPA-sensitive iGluR and group I mGluR in SG neurons of rats.
Objectives : In this study, the roles of Interleukin (IL)-4 and Signal transducer and activator of transcription 6 (STAT6), which have been reported to play a role in the pathogenesis of inflammation and cancer, were evaluated in snake venom toxin (SVT)-induced apoptosis. Methods : Inflammation was induced in human HaCaT kerationocytes, by lipopolysaccharide (LPS; $1{\mu}g/mL$) or tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$), followed by treatment with SVT (0, 1, or $2{\mu}g/mL$). Cell viability was assessed by MTT assays after 24 h, and the expression of levels of IL-4, STAT6, and the apoptosis-related proteins p53, Bax, and Bcl-2 were evaluated by western blotting. Electro mobility shift assays (EMSAs) were performed to evaluate the DNA binding capacity of STAT6. Results : MTT assays showed that inflammation-induced growth of HaCaT cells following LPS or TNF-${\alpha}$ stimulation was inhibited by SVT. Western blot analysis showed that p53 and Bax, which promote apoptosis, were increased, whereas that of Bcl-2, an anti-apoptotic protein, was decreased in a concentration-dependent manner in LPS- or TNF-${\alpha}$-induced HaCaT cells following treatment with SVT. Moreover, following treatment of HaCaT cells with LPS, IL-4 concentrations were increased, and treatment with SVT further increased IL-4 expression in a concentration-dependent manner. Western blotting and EMSAs showed that the phosphorylated form of STAT6 was increased in HaCaT cells in the context of LPS- or TNF-${\alpha}$-induced inflammation in a concentration-dependent manner, concomitant with an increase in the DNA binding activity of STAT6. Conclusion : SVT can effectively promote apoptosis in HaCaT cells in the presence of inflammation through a pathway involving IL-4 and STAT6.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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