Pseudomonas sp. P20 was shown to be capable of degrading biphenyl and 4-chlorobiphenyl (4CB) to produce the corresponding benzoic acids wnich were not further degraded. But the potential of the strain for biodegradation of 4CB was shown to be excellent. The pcbA, B, C and D genes responsible for the aromatic ring-cleavage of biphenyl and 4CB degradation were cloned from the chromosomal DNA of the strain. In this study, the pebC and D genes specifying degradation of 2, 3-dihydroxybiphenyl (2, 3-DHBP) produced from biphenyl by the pebAB-encoded enzymes were cloned by using pBluescript SK(+) as a vector. From the pCK102 (9.3 kb) containing pebC and D genes, pCK1022 inserted with a EcoRI-HindIII DNA fragment (4.1 kb) carrying pebC and D and a pCK1092 inserted with EcoRI-XbaI fragment (1.95 kb) carrying pebC were constructed. The expression of pcbC and D' in E. coli CK102 and pebC in E. coli CK1092 was examined by gas chromatography and UV-vis spectrophotometry. 2.3-dihydroxybiphenyl was readily degraded to produce meta-cleavage product (MCP) by E. coli CK102 after incubation for 10 min, and then only benzoic acid(BA) was detected in the 24-h old culture. The MCP was detected in E. coli CK1022 containing pebC and 0 genes (by the resting cells assay) for up to 3 h after incubation and then diminished completely in 8 h, whereas the MCP accumulated in the E. coli CK1092 culture even after 6 h of incubation. The 2, 3-DHBP dioxygenases (product of pebC gene) produced by E. coli CK1, CK102, CK1023, and CK1092 strains were measured by native PAGE analysis to be about 250 kDa in molecular weight, which were about same as those of Pseudomonas sp. DJ-12, P. pseudoa1caligenes KF707, and P. putida OU83.
A 5.7Kb EcoRI fragment containing alkaline amylase gene of Bacillus sp. AL-8 obtained in the previons experiment (10) was transformed in B. subtilis via plasmid pUB110. The enzymatic proper-ties of the amylase produced by the transformants were Identical to those of the donor strain. Thus, the alkaline amylase activity from the transformant was maximum at pH 10 and 5$0^{\circ}C$. And the enzyme was very stable over the ranges of alkaline pH. In order to determine the location of the alkaline amylase gene within the 5.7Kb DNA fragment, the fragment was subcloned in E. coli. It was found that the alkaline amylase gene was located k EcoRI fragment of 3.7Kb.
Cho, Moo Youn;Eo, Wan Kyu;Lee, Sang Uk;Jeong, In cheol
Journal of Life Science
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v.5
no.3
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pp.105-116
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1995
To investigate genomic changes in c-myc gene by a chemical carcinogen, human lymphoblast NC-37 cells were exposed to benzo(a)pyrene(BP) and dimethylbenzanthracene(DMBA), and the c-myc gene expression was evaluated by Northern and Southern blot hybridization techniques. The results are as follows: When the genomic DNA of NC-37 cells exposed to several concentrations(1.25, 2.5 and 5ug/ml) of BP concentration. However, the c-myc gene was most significantly enhanced with 2.5ug/ml of BP. The expressions of c-myc gene in NC-37 cells was stimulated by BP and DMBA. Addition of TPA reduced the gene expression BP-treated cells, whereas it enhanced the gene expression in DMBA-treated cells. The expression of c-H-ras gene was slightly increased by treatment with BP and DMBA alone and in combination with TPA, however the magnitude of increase was not significantly different between each other. The expressions of c-myc c-H-ras genes in Burkitt's lymphoma cells were greater than those in NC-37 cells. When the DNA extracted from NC-37 cells exposed to various concentrations of BP were amplified by polymerase chain reaction using a primer set containing c-myc exon I, the amplified products were of the same size in all groups. To evaluate the BP toxicity in E.coli to which human c-myc gene-cloned pBR322 vector was inserted, Southern blot hybridization was conducted on c-myc genes digested with EcoRI/HindIII and Smal/Xbal restriction enzymes, and observing that in 2 ug/ml BP-treated cells a 3.5kb fragment was generated in addition to 1.3kb fragment which can be observed in normal cells. Direct nucleotide sequence analysis of polymerase chain reaction products showed a mutation of G$\longrightarrow$A transition at the Smal recognition site.
The crystal structure of ethylenediammonium bis (p-methylbenzenesulfonate) monohydrate, $C_2H_{10}N_{22}^{+2}{\cdot}(C_7O_3H_7S^-){\cdot}H_2O$ has been determined by X-ray diffraction techniques. The space group is P21, in 2 unit cell with a = 12.649 (2) ${\AA}$, b = 7.727 (1) ${\AA}$, c = 11.295 (2) ${\AA}$, ${\beta}$ =111.8(1)$^{\circ}$, and z = 2. The structure was solved by direct methods and refined to R = 0.060 for 1134 reflections measured with Mo-K${\alpha}$ radiation. Two p-methylbenzenesulfonates, fragment A and B, from a pair through the hydrogen bonds to the ethylenediammonium ion. The sulfonate group in the fragment B are disordered. There are six unique hydrogen bonds, of which four are between the ethylenediammonium ion and the sulfonate groups and remaining two involve the water molecule.
The peptidyl prolyl sis-trans isomerase (PPIase, EC 5.2.1.8) from bacillus stearothermophilus was extracted from the cells treated with by lysozyme. PPIase was purified from the cell extracts by heat treatment, ammonium sulfate precipitation, ion exchange chromatography and finally gel filtration, sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis(SDS-PAGE). The molecular weight of the purified PPIase was estimated as 18kDa by SDS-PAGE. The 39 amino acid residues from the N-terminus were determined by the protein sequencer. The enzyme showed the optimum pH at 8.0 and was stable at the range of pH 7.0∼8.0. The enzyme was considerably stable after heat treatment at 60$\^{C}$ for 30minutes, and the enzyme was quite stable up to 65$\^{C}$. The presence of the PPIase in the refolding solution accelerated the isomerization rate of the assay peptide. PPIase gene of Bacillus stearothermophilus was screened from a genomic library by plaque hybridization using the A-l primer as a probe. A PPIase positive plaque contained a 3.0kb insert of the chromosomal DNA. A 3.0kb fragment was subcloned into pUC18, resulting pPI-40. A DNA fragment encoding the N-terminal portion of the PPIase in pPI-40 was amplified by polymerase chain reaction(PCR) method using the A-1 and B-2 primers. The amplified fragment was cloned into the Sma I site of pUC18 and recombinant plasmid was designated as pSN-18. The nucleotide sequence of 167bp fragment was determined. The deduced amino acid sequence of PPIase was completely matched with the determined N-terminal amino acid sequence of PPIase B. stearothermophilus.
Kamran, Muhammad;Javed, Nazir;Ullah, Ihsan;Nazir, Shahid;Jamil, Shakra;Iqbal, Muhammad Zafar;Abbas, Huma;Khan, Sajid Aleem;Haq, Muhammad Ehetisham ul
The Plant Pathology Journal
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v.35
no.1
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pp.51-62
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2019
A great variable response was observed when PP-3 and PP-J encumbered with 116 populations of root knot nematode (RKN) at two different temperatures ($25{\pm}2^{\circ}C$ and $30{\pm}2^{\circ}C$) and concentrations ($10^4$ and $10^5$ spores/ml). The PCR reaction amplified intergenic region between cytochrome oxidase subunit II gene (COII) and large subunit of rRNA gene (lrRNA) of the mitochondrial genome of different RKN species. The primer C2F3 and 1108 identified M. incognita with the highest frequency (52.6%) followed by M. javanica (36.8%) and M. arenaria (10.5%). The sizes of PCR products were 1.7 kb for M. incognita and M. javanica populations while populations of M. arenaria produced 1.1 kb fragment. The digestion with Hinf I yielded three different fragment length patterns on 1.5 % agarose gel. From current research it is concluded that intra-Meloidogyne genetic variability exist in RKN populations which have better encumbrance with P. penetrans.
Journal of the Korea Institute of Information and Communication Engineering
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v.10
no.12
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pp.2329-2334
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2006
In this paper, we proposed a method complementing failure of combining DNA fragments, defect of conventional contig assembly programs. In the proposed method, very long DNA sequence data are made into a prototype of fragment of about 700 bases that can be analyzed by automatic sequence analyzer at one time, and then matching ratio is calculated by comparing a standard prototype with 3 fragmented clones of about 700 bases generated by the PCR method. In this process, the time for calculation of matching ratio is reduced by Compute Agreement algorithm. Two candidates of combined fragments of every prototype are extracted by the degree of overlapping of calculated fragment pairs, and then degree of combination is decided using a fuzzy reasoning method that utilizes the matching ratios of each extracted fragment, and A, C, G, T membership degrees of each DNA sequence, and previous frequencies of each A, C, G, T. In this paper. DNA sequence combination is completed by the iteration of the process to combine decided optimal test fragments until no fragment remains. For the experiments, fragments or about 700 bases were generated from each sequence of 10,000 bases and 100,000 bases extracted from 'PCC6803', complete protein genome. From the experiments by applying random notations on these fragments, we could see that the proposed method was faster than FAP program, and combination failure, defect of conventional contig assembly programs, did not occur.
Alterations of the p53 gene arc among the most frequent genetic changes in human cancer and often result in increased levels of p53 protein within the malignant cells. Detection of accumulated p53 protein can be a useful prognostic tool in human cancer. In order to make polyclonal antibodies for immunohistochemical screening. human p53 gene was expressed in E. coli in the form of GST (glutathione S-transfi.:rase) fusion proteins. Two p53 gene fragments. which were N('()I small fragment encoding amino acid residues of 1-151-: and Ncol large fragment of 159-393. were subeloned into the unique BamHI site present within the pGEX-2T vector using BamHI linker and recombinant plasmids pGTNS and pGTNL were constructed. respectively. The p53 cDNA fragment (from pC53-$SN_3$,) encoding amino acid 38-145 (proline at residue 72) was amplified by polymerase chain reaction(PCR). The amplified DNA was digested with BamHI and Prull and inserted into the BamHI-Smal sites of pG EX-2T and recombinant plasmid pGTBP was constructed. After IPTG induction of these plasmids for 4 hours. fusion proteins were purified from E. coli extracts with glutathione Sepharose beads. The bound proteins were resolved by 10% SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and the molecular weights were 54 kDa. 53 kDa and 40 kDa. respectively. Approximately one milligram of fusion proteins were purified from 1 -liter cultures.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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