DOI QR코드

DOI QR Code

인체백혈병 U937 세포에서 부처꽃 에탄올추출물에 의한 apoptosis 유도

Induction of Apoptosis by Ethanol Extract of Lythrum anceps (Koehne) Makino in Human Leukemia U937 Cells

  • 정진우 (국립낙동강생물자원관) ;
  • 김철환 (국립낙동강생물자원관) ;
  • 이영경 (국립낙동강생물자원관) ;
  • 황용 (국립낙동강생물자원관) ;
  • 이기원 (동아대학교 의과대학 직업환경의학교실) ;
  • 최경민 (국립낙동강생물자원관) ;
  • 김정일 (동아대학교 의과대학 직업환경의학교실)
  • Jeong, Jin-Woo (Nakdonggang National Institute of Biological Resources) ;
  • Kim, Chul Hwan (Nakdonggang National Institute of Biological Resources) ;
  • Lee, Young-Kyung (Nakdonggang National Institute of Biological Resources) ;
  • Hwang, Yong (Nakdonggang National Institute of Biological Resources) ;
  • Lee, Ki Won (Department of Occupational and Environmental Medicine, Dong-a University) ;
  • Choi, Kyung-Min (Nakdonggang National Institute of Biological Resources) ;
  • Kim, Jung Il (Department of Occupational and Environmental Medicine, Dong-a University)
  • 투고 : 2020.03.31
  • 심사 : 2020.07.22
  • 발행 : 2020.08.01

초록

본 연구에서는 부처꽃 에탄올 추출물(ELM)에 대한 항암효능을 알아보기 위하여 인체백혈병 U937 세포의 증식에 미치는 영향과 이와 연관된 apoptosis 유발 여부와 함께 그에 따른 분자생물학적 기전에 대해서 조사하였다. 먼저 ELM 처리에 따른 증식 억제 정도를 조사한 결과, ELM 처리 농도 의존적으로 생존율 및 증식억제 현상이 나타났으며, 핵의 형태 변화, DNA 단편화 및 apoptosis 유발에 관하여 조사한 결과 역시 ELM 처리 농도 의존적으로 증가됨을 확인할 수 있었다. ELM 처리에 따른 U937 세포에서의 apoptosis 유발에 있어서 미토콘드리아 막의 기능 손상이 관여하는 지를 확인하기 위하여 MMP의 변화 정도를 확인한 결과, ELM 처리 농도 증가에 따라 MMP의 소실이 증가하는 것을 관찰할 수 있었다. 이러한 MMP의 소실에 가 관여하는 지를 확인하기 위하여 사멸수용체(DR4, 5, Fas) 및 사멸수용체에 결합하는 리간드(FasL, TRAIL)의 발현 변화를 확인한 결과, DR4 및 DR5의 발현이 증가하는 것으로 관찰되었다. 또한 내인적 경로에 관여하는 Bcl-2 family 유전자들의 발현변화를 확인한 결과, Bcl-2 발현 감소 및 Bax의 발현 증가의 변화를 보였으며, Bid 단백질의 발현감소가 나타났으므로 상대적으로 tBid의 생성이 증가되었음을 추측할 수 있었다. 한편apoptosis 유발에 직접적으로 관여하는 것으로 알려진 caspase-3, -8 및 -9의 발현에 미치는 ELM의 영향에 대해서 조사하였다. 결과에서 알 수 있듯이 ELM은 death receptor에 의하여 활성화 되는 것으로 알려진 caspase-8 및 세포질로 방출된 cytochrome c에 의하여 활성화 되는 것으로 알려진 caspase-9의 활성화를 유발하였으며, caspase cascade에 의하여 apoptosis에 직접적으로 관여하는 caspase-3의 발현도 증가시키는 것으로 나타났다. 또한 활성화된 caspase-3에 의하여 분해가 일어나는 기질 단백질인 PARP의 경우 ELM 처리에 의하여 모두 단편화가 유발되는 것으로 나타났다. 이상의 결과를 종합해 보면 인체 백혈병 U937 세포에 ELM을 처리하였을 경우에 유발되는 apoptosis는 외인적 경로인 DR4 및 DR5의 발현 증가를 통한 caspase-8의 활성화와 이로 인한 Bid 단백질의 단편화와 함께 내인적 경로의 미토콘드리아 기능 손실에 의하여 caspase-9 및 -3의 활성화 유발과 기질단백질들의 분해가 중요한 역할을 하는 것으로 생각되며, IAP family의 발현 감소로 인하여 caspase의 활성이 억제되지 못하는 것도 apoptosis 유도에 어느 정도 관여했을 것으로 생각된다. 따라서 ELM 처리에 의하여 유발되는 apoptosis는 외인적 경로 및 내인적 경로를 모두 경유하는 multiple apoptotic pathway에 의하여 조절되며, 이때 caspases가 중요한 역할을 한다는 것을 알 수 있었다.

Purple loosestrife-Lythrum anceps (Koehne) Makino is a herbaceous perennial plant belonging to the Lythraceae family. It has been used for centuries in Korea and other Asian traditional medicine. It has been showed pharmacological effects, including anti-oxidant and anti-microbial effects. However, the mechanisms underlying its anti-cancer effect are not yet understood. In this study, we investigated the mechanism of apoptosis signaling pathways by ethanol extract of Lythrum anceps (Koehne) Makino (ELM) in human leukemia U937 cells. Treatment with ELM significantly inhibited cell growth in a dose-dependent manner by inducing apoptosis, as evidenced by the formation of apoptotic bodies (ApoBDs), DNA fragmentation and increased populations of sub-G1 ratio. Induction of apoptosis by ELM was connected with up-regulation of death receptor (DR) 4 and DR5, pro-apoptotic Bax protein expression and down-regulation of anti-apoptotic Bcl-2 protein, and inhibitor of apoptosis protein (IAP) family proteins, depending on dosage. This induction was associated with Bid truncation, mitochondrial dysfunction, proteolytic activation of caspases (-3, -8 and -9) and cleavage of poly(ADP-ribose) polymerase protein. Therefore, our data indicate that ELM suppresses U937 cell growth by activating the intrinsic and extrinsic apoptosis pathways, and thus may have applications as a potential source for an anti-leukemic chemotherapeutic agent.

키워드

참고문헌

  1. Acheampong, D.O., C.K. Adokoh, D.B. Asante, E.A. Asiamah, P.A. Barnie, D.O.M. Bonsu and F. Kyei. 2018. Immunotherapy for acute myeloid leukemia (AML): a potent alternative therapy. Biomed. Pharmacother. 97:225-232. https://doi.org/10.1016/j.biopha.2017.10.100
  2. Becker, H., J.M Scher, J.B. Speakman and J. Zapp. 2005. Bioactivity guided isolation of antimicrobial compounds from Lythrum salicaria. Fitoterapia 76(6):580-584. https://doi.org/10.1016/j.fitote.2005.04.011
  3. Brown, E.E., A.S. Lewin and J.D. Ash. 2018. Mitochondria: potential targets for protection in age-related macular degeneration. Adv. Exp. Med. Biol. 1074:11-17. https://doi.org/10.1007/978-3-319-75402-4_2
  4. Cossu, F., M. Milani, E. Mastrangelo and D. Lecis. 2019. Targeting the BIR domains of inhibitor of apoptosis (IAP) proteins in cancer treatment. Comput. Struct. Biotechnol. J. 17:142-150. https://doi.org/10.1016/j.csbj.2019.01.009
  5. Demine, S., P. Renard and T. Arnould. 2019. Mitochondrial uncoupling: a key controller of biological processes in physiology and diseases. Cells 8(8):E795. https://doi.org/10.3390/cells8080795
  6. Gilliland, D.G., C.T. Jordan and C.A. Felix. 2004. The molecular basis of leukemia. Hematology Am. Soc. Hematol. Educ. Program 2004(1):80-97. https://doi.org/10.1182/asheducation-2004.1.80
  7. Han, S.I., Y.S. Kim and T.H. Kim. 2008. Role of apoptotic and necrotic cell death under physiologic conditions. BMB Rep. 41(1):1-10. https://doi.org/10.5483/BMBRep.2008.41.1.001
  8. Ivanisenko, N.V. and I.N. Lavrik. 2019. Mechanisms of procaspase-8 activation in the extrinsic programmed cell death pathway. Mol. Biology 53(5):732-738. https://doi.org/10.1134/S0026893319050091
  9. Jan, R. and G.E. Chaudhry. 2019. Understanding apoptosis and apoptotic pathways targeted cancer therapeutics. Adv. Pharm. Bull. 9(2):205-218. https://doi.org/10.15171/apb.2019.024
  10. Kantari, C. and H. Walczak. 2011. Caspase-8 and bid: caught in the act between death receptors and mitochondria. Biochim. Biophys. Acta. 1813(4):558-563. https://doi.org/10.1016/j.bbamcr.2011.01.026
  11. Kaufmann, T., A. Strasser and P.J. Jost. 2011. Fas death receptor signalling: roles of Bid and XIAP. Cell Death Differ. 19(1):42-50. https://doi.org/10.1038/cdd.2011.121
  12. Korea Biodiversity Information System. 2014, http://www.nature.go.kr.
  13. Lamela, M., I. Cadavid, A. Gato and J.M. Calleja. 1985. Effects of Lythrum salicaria in normoglycemic rats. J. Ethnopharmacol. 14(1):83-91. https://doi.org/10.1016/0378-8741(85)90032-7
  14. Lamela, M., I. Cadavid and J.M. Calleja. 1986. Effects of Lythrum salicaria extracts on hyperglycemic rats and mice. J. Ethnopharmacol. 15(2):153-160. https://doi.org/10.1016/0378-8741(86)90152-2
  15. Lazebnik, Y.A., S.H. Kaufmann, S. Desnoyers, G.G. Poirier and W.C. Earnshaw. 1994. Cleavage of poly (ADP-ribose) polymerase by a proteinase with properties like ICE. Nature 371(6495):346-347. https://doi.org/10.1038/371346a0
  16. Lee, G.H., K.H. Park and S.E. Choi. 2018. Modulative effect of human hair dermal papilla cell apoptosis by oregonin from the braches of Alnus japonica. Korean J. Plant Res. 31(4):322-329. https://doi.org/10.7732/KJPR.2018.31.4.322
  17. Lee, H., R. Kang, Y.S. Kim, S.I. Chung and Y. Yoon. 2010. Platycodin D inhibits adipogenesis of 3T3-L1 cells by modulating kruppel-like factor 2 and peroxisome proliferatoractivated receptor gamma. Phytother. Res. 24(S2):S161-167. https://doi.org/10.1002/ptr.3054
  18. Lee, K.W., J.I. Kim, S.Y. Lee, K.M. Choi, Y.T. Oh and J.W. Jeong. 2019. Induction of apoptosis by water extract of Glycyrrhizae radix in human bladder T24 cancer cells. Korean J. Plant Res. 32(4):255-263.
  19. Lee, S.E., C.G. Park, Y.S. Ahn, Y.D. Son, S.S. Cha and N.S. Seong. 2009a. Antioxidative and hepatoprotective effects of Lythrum salicaria. Korean J. Medicinal Crop Sci. 17(1):1-7.
  20. Lee, S.E., T.J. Ahn, G.S. Kim, Y.O. Kim, H.S. Han, J.S. Seo, H.Y. Chung, C.B. Park, S.W. Cha, H.K. Park and N.S. Seong. 2009b. Antioxidative and anti-fibrotic properties of root extracts of Lythrum salicaria L. in CCL4-induced liver fibrosis rat model. Korean J. Medicinal Crop Sci. 17(4):243-250.
  21. Nagata, S. 2018. Apoptosis and clearance of apoptotic cells. Annu. Rev. Immunol. 36:489-517. https://doi.org/10.1146/annurev-immunol-042617-053010
  22. Piwowarski, J.P., S. Granica and A.K. Kiss. 2015. Lythrum salicaria L.-Underestimated medicinal plant from European traditional medicine. A review. J. Ethnopharmacol. 170:226-250. https://doi.org/10.1016/j.jep.2015.05.017
  23. Rauha, J.P. 2001. The search for biological activity in finnish plant extracts containing phenolic compounds, Department of Pharmacognosy, Academic Dissertation, University of Helsinki, Helsinki, Finland. pp. 1-72.
  24. Sachdeva, A., J.P. Rajguru, K. Sohi, S.S. Sachdeva, K. Kaur, R. Devi and V. Rana. 2019. Association of leukemia and mitochondrial diseases-A review. J. Family Med. Prim. Care 8(10):3120-3124. https://doi.org/10.4103/jfmpc.jfmpc_679_19
  25. Seo, M.Y. and K. Rhee. 2018. Caspase-mediated cleavage of the centrosomal proteins during apoptosis. Cell Death Dis. 9(5):571. https://doi.org/10.1038/s41419-018-0632-8
  26. Silke, J. and D. Vucic. 2014. IAP family of cell death and signaling regulators. Methods Enzymol. 545:35-65. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-801430-1.00002-0
  27. Tay, K.C., L.T. Tan, C.K. Chan, S.L. Hong, K.G. Chan, W.H. Yap, P. Pusparajah, L.H. Lee and B.H. Goh. 2019. Formononetin: a review of its anticancer potentials and mechanisms. Front. Pharmacol. 10:820. https://doi.org/10.3389/fphar.2019.00820
  28. Tunalier, Z., M. Kosar, E. Kupeli, I. Calis and K.H. Baser. 2007. Antioxidant, antiinflammatory, anti-nociceptive activities and composition of Lythrum salicaria L. extracts. J. Ethnopharmacol. 110(3):539-547. https://doi.org/10.1016/j.jep.2006.10.024