영지 에탄올 추출물의 마우스 유래 뇌 해마세포 보호효과

Neuroprotective Effects of Ethanol Extract of Ganoderma lucidum L. on murine hippocampal cells

Abstract

Ganoderma lucidum L. (GL) is a traditional oriental medicine that has been widely used as anti-inflammatory, antitumor and anti-oxidant in Korea and other Asian countries. In this study, we investigated the ethanol extract of GL has neuroprotective effects in murine hippocampal HT22 cells. GL ethanol extract has the potent neuroprotective effects on glutamate-intoxicated cells by inducing the expression of heme oxygenase (HO)-1 in HT22 cells. GL ethanol extract increased JNK phosphorylation. Obviously, When we treated the GL extract with c-Jun N-terminal kinase (JNK) inhibitor (SP600125), HO-1 expression was reduced. Moreover, we found that GL treatment caused the nuclear accumulation of Nrf2. In conclusion, the ethanol extract of GL significantly protects glutamate-induced oxidative damage by induction of HO-1 via Nrf2, JNK pathway in mouse hippocampal HT22. These results suggest that GL ethanol extract would be a good source for taking active compounds and may be a potential pharmaceutical products for brain disorder induced by neuronal damage and oxidative stress.

재료 및 방법

실험 재료 −본 실험에 사용된 영지(Ganoderma lucidum L.)은 2014년 3월 대구광역시 약령 시장에서 건조된 것을 구입하여 실험에 사용하였다. 정길생 교수가 형태학적 평가를 통하여 동정하였고 표본시료(KMP-2014-03)는 계명대학교 약학대학 생약학연구실에 보관하였다.

시약 및 기기 −세포배양에 사용된 DMEM 배지와 trypsinethylenediaminetetraacetic acid (EDTA)는 Gibco Laboratories사에서 구입하였으며, fetal bovine serum (FBS)는 Hyclone Laboratories사에서 구입하였다. 96well tissue culture plates와 기타 tissue culture dishes는 Nunc사 제품을 이용하였다. 흡광도는 BioRad사의 Microplate Reader를 이용하여 측정하였다. L-glutamate, Trolox와 3'-(4,5-dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyltetrazolium bromide (MTT)는 Sigma 사에서 구입하였다.

추출 −건조된 영지 400 g을 100 g씩 물, 30% 에탄올, 70% 에탄올, 100% 에탄올로 각각의 조성의 용매 1 L를 넣어 추출, 여과하고 rotary vacuum evaporator로 농축하였다. 각 추출물들을 감압 농축하여 용매를 휘발시켜 물(5.54 g), 30% 에탄올(4.82 g), 70% 에탄올(6.44 g), 100% 에탄올(4.04 g) 추출물을 얻었다. 각 시료들은 -70℃에서 보관하여 사용하였다.

세포배양 −마우스 해마 유래의 HT22 세포주는 묵인희 교수(서울대학교)로부터 분양 받아 사용하였으며, DMEM배지에 10% FBS와 1% antibiotics를 첨가하여 37℃의 5% CO2 incubator에서 1-2일 마다 계대배양 하면서 실험에 사용하였다.

활성산소종(Reactive Oxygen Species: ROS)측정 −세포내에서 활성산소가 발생되면 2',7'-dichlorofluorescein diacetate (DCFDA)가 esterase 또는 산화적 가수분해에 DCFH로 탈아세틸화 되고 비형광성인 DCFH는 활성 산소에 의해 산화되어 2',7'-dichlorofluorescein (DCF)로 전환된다. 이는 강한 형광을 나타낸다. ROS 생성정도의 측정은 위의 기술된 원리를 이용하였다. 배양된 세포를 PBS로 세척한 후, 10 μM 2',7'-dichlorofluorescein diacetate (DCFDA, 35845)를 포함하는 Hank' blanced salt 용액에서 30분 동안 암실에서 반응시켰으며, 세포의 형광도(excitation wave length 490 nm; emission wave lenth; 525 nm)를 microplate reader (SpectramaxGemini XS, Molecular Devices, Sunnyvale, CA, U.S.A.)를 이용하여 측정하였다.

글루타메이트 유도 뇌세포 보호효과 측정 −글루타메이트로 유도한 뇌세포 독성에 대한 보호 효과는 정등의 방법20)에 따라 실시하였다. HT22 세포를 96well microplates에 2×105 cells/well이 되도록 분주한 후, 37℃의 5% CO2 incubator에서 24시간 배양한 다음, 5 mM의 글루타메이트와 각 추출물(50, 200 μg/ml)을 농도별로 처리하였다. 시료처리 12시간 후 세포 생존율을 MTT 방법으로 측정하였으며, Trolox 50 μM을 양성대조군으로 하여 비교하였다. 모든 실험은 대조군에 대한 세포 보호율을 mean±S.D로 표시하였으며, 각각 3회 반복 실험치를 이용하여 계산하였다.

Western Blot Analysis − HT22 세포를 60 mm dish에 3×105 cell/well 이 되도록 배양한 후 시료를 농도별 시간별로 처리한 후 상등액을 제거하고 PBS로 세척하였다.

RIPA buffer를 첨가하여 세포를 용해시키고 원심 분리하여 얻은 단백질은 Bradford assay로 정량하여 12% SDSPAGE를 이용하여 전기 영동한 후 PVDF membrane에 옮긴 다음 5% skim milk로 30분간 blocking 한 후 1차 항체(HO-1)를 1:1000으로 희석하여 넣고 12시간 동안 반응한 다음, 다시 2차 항체를 반응시키고, ECL 용액을 1:1로 잘 섞어서 membrane 위에 가하여 발광시키고 LAS4000을 이용하여 확인하였다.

핵과 세포질 분획 − HT22 세포에 Protease inhibitor cocktail I과 1 mM phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF)를 첨가한 PER-mammalian protein extraction buffer를 첨가하여 균질화 하고 4℃에서 16,000×g로 원심분리 하였다. 5분간 원심분리 후 상등액을 세포질 분획으로 사용하기 위하여 -80℃에서 저장하였다. 나머지 침전물은 PBS로 세척한 후 RIPA buffer [150 mM NaCl, 1% NP-40, 0.5% sodium deoxycholate, 0.1% SDS, 50 mM Tris-HCl (pH 7.4), 50 mM glycerophosphate, 20 mM NaF, 20 mM ethylene glycol tetraacetic acid (EGTA), 1 mM dithiothreitol (DTT), 1 mM Na3VO4, protease inhibitor]를 첨가하고 4℃에서 15분간 혼합한 후 4℃, 16,000×g에서 10분간 원심분리 하였다. 이후의 과정에서는 10% SDS-PAGE를 이용하여 앞에서 설명한 western blotting 방법을 이용하였다.

통계처리 −본 실험의 통계처리는 GraphPad Prism, version 3.03 (GraphPad Software Inc, San Diego, CA, USA)을 사용하였다. 각 실험군의 결과는 평균치와 표준오차로 나타내었으며, 각 실험군 간의 결과는 ANOVA test를 사용하여 분석하고 유의적인 차이가 있는 항목에 대해서만 검정하였다. 실험군 간의 차이는 95% 수준(P<0.05)에서 유의성 있는 것으로 하였다.

 

결과 및 고찰

본 연구에서는 영지 추출물의 뇌세포보호 효과와 그 기전을 연구하였다. 세포 구성성분인 당, 지질, 단백질 및 DNA 등은 반응성이 높은 ROS에 의해 비가역적으로 파괴된다.22-24) 5mM의 글루타메이트를 18시간 처리하였을 때 대조군에 비해 세포생존율이 33.8±1.75%로 감소하는 세포 손상을 유도하였으며, 영지 물 추출물, 30% 에탄올 추출물, 70% 에탄올 추출물, 100% 에탄올 추출물과 글루타메이트를 함께 처리 하였을 때 각 추출물에서 세포 보호 활성이 나타났으며, 100% 에탄올 추출물 처리군에서 세포 생존률이 가장 높게 측정되었다. 특히 200 μg/ml에서는 89±1.8%로 글루타메이트 처리군과 비교 시 우수한 보호활성을 나타내었다(Fig. 1A).

Fig. 1.Effects of GL ethanol extract in a variety of concentration on glutamate-induced oxidative neurotoxicity and inhibition of reactive oxygen species generation and expression of HO-1. (A) Cells were treated with samples and then incubated for 18 h with glutamate (5 mM). (B) Expression of HO-1 was determined by western blot analysis, and representative blots of three independent experiments are shown. CoPP (20 μM) was used for positive control. (C) Exposure of HT22 cells with 5 mM glutamate for 18 h increased reactive oxygen species production. Each bar represents the mean±S.D. of three independent experiments. *P<0.05. Trolox (50 μM) was used as the positive control.

또한 마우스 해마 유래의 HT22 세포에 영지 에탄올 추출물을 18시간 처리한 후 뇌세포의 보호 역할을 담당하는 단백질인 HO-1 발현정도를 western blot analysis 방법으로 확인한 결과, 에탄올 함량이 높은 추출용매에서 얻어진 추출물일수록 HO-1 발현이 증가하였다(Fig. 1B). ROS 소거효과도 세포 보효효과와 같이 100% 에탄올 추출물 50, 200 μg/ml에서 168±3.2%, 118±2.13%의 우수한 ROS 감소효과를 나타내었다(Fig. 1C).

HO-1 발현정도가 에탄올 추출물의 농도에 의존적인가를 확인하기 위하여 25, 50, 100, 200 μg/ml 네 가지 농도로 18시간 처리 하였으며, 양성 대조군으로는 cobalt protoporphyrin(CoPP) 20 μM을 사용하였다. 그 결과, 추출물의 농도의 증가에 따른 HO-1의 발현증가가 확인되었다(Fig. 2). 산화적 손상이 유도된 세포의 보호효과 역시 에탄올 추출물의 농도에 따라 확연히 증가 되었으며(Fig. 3A), 농도 의존적으로 ROS 감소효과를 나타내었다(Fig. 3B).

Nrf2는 transcription factor로 기능하며 이것의 핵 내 이동은 HO-1발현에 관여하는 경로 중 중요한 인자로 알려져 있으며, 외부 침입인 산화적 스트레스 방어기전의 주요한 역할을 담당한다.25,26) 이를 바탕으로 영지 에탄올 추출물로 인한 Nrf2 단백질의 핵 내 이동을 통해 HO-1 발현의 증가가일어나는지 확인해보기 위해 HT22 세포에 200 μg/ml 농도를 시간별로 처리하고 단백질 발현 정도를 확인해 본 결과, 시간이 증가함에 따라 세포질의 Nrf2 발현이 감소하는 양상과는 대조적으로 핵에서의 Nrf2 발현은 증가하였다(Fig. 4). 이는 영지 에탄올 추출물이 Nrf2의 핵 내 이동을 촉진시킴을 알 수 있는 결과이다. Mitogen activated protein kinase (MAPK) 경로 역시 HO-1발현에 주요한 역할을 하는 것으로 알려져 있다. 일반적으로 MAPKs는 extracellular signal-regulated kinase (ERK), p38, c-Jun N-terminal kinase(JNK)의 세 가지 계열이 널리 알려져있으며, 세포 외부의 자극을 전달하여 세포내 반응을 일으키는 등의 다양한 역할을 한다.27,28) 영지 에탄올 추출물의 작용으로 인한 HO-1 발현에 있어서 MAPK의 영향을 알아보기 위해 200 μg/ml의 영지 에탄올 추출물을 일정한 시간 간격으로 처리하였다. 시간이 지남에 따라 영지 에탄올 추출물은 p38과 ERK의 인산화에는 영향을 주지 못하였으나(Fig. 5B, 5C), JNK의 인산화를 증가시키는 것을 확인할 수 있었다(Fig. 5A).

Fig. 2.Effect of GL 100% ethanol extract of HO-1 expression in HT22 cells. Cells were incubated for 18 h with ethanol extract. Expression of HO-1 was determined by western blot analysis, and representative blots of three independent experiments are shown. CoPP (20 μM) was used for positive control.

Fig. 3.Effects of GL extract of 100% ethanol on glutamateinduced oxidative neurotoxicity and inhibition of reactive oxygen species generation. (A) Cells were treated with samples and then incubated for 18 h with glutamate (5 mM). (B) Exposure of HT22 cells with 5 mM glutamate for 18 h increased reactive oxygen species production. Each bar represents the mean±S.D. of three independent experiments. *P<0.05. Trolox (50 μM) was used as the positive control.

Fig. 4.Effect of GL ethanol extract on Nrf2 nuclear translocation in HT22 cells. Cells were treated with 200 μg/ml of GL ethanol extract for 0.5, 1, and 1.5 h. The nuclei were fractionated from the cytosol using PER-mammalian protein extraction buffer as described in materials and methods. Nrf2 protein was detected by western blot analysis, and representative blots of three independent experiments are shown.

Fig. 5.Effects of GL ethanol extract induced MAPK activation in HT22 cells. (A) Cells were treated with 200 μg/ml of GL 100% ethanol extract for indicated times. The extract of cells were analyzed by western blot with specific antibodies for phosphorylated ERK1/2 (P-ERK)(A), phosphrylated JNK (PJNK) (B), and phosphorylated p38 (P-p38)(C). Membranes were stripped and reprobed for total form of each MAPK antibody as a control, and the representative blots of three independent experiments are shown.

이러한 결과를 바탕으로 영지 에탄올 추출물 처리로 인한 HO-1의 발현 증가가 JNK의 인산화를 통하여 나타나는지 살펴보기 위하여 JNK, p38, ERK에 대한 각각의 억제제를 전 처리한 후 영지 에탄올 추출물을 처리하여 HO-1 발현과 세포 생존율을 확인하였다. 그 결과, p38의 억제제인 SB203580과 ERK의 억제제인 PD98059를 전 처리 하였을 때에는 HO-1의 발현과 세포보효 효과에 큰 영향을 미치지 못했지만, JNK의 억제제인 SP600125 처리 시 증가했던 HO-1의 발현이 줄어들고, 세포 보호 효과 역시 영지 에탄올 추출물을 처리 하였을 때 84±0.23%로 증가하던 세포 생존율이 59±1.1%로 감소하는 것을 확인하였다(Fig. 6).

Fig. 6.Effects of GL ethanol extract induced JNK pathway activation on HO-1 expression and glutamate-induced neurotoxicity. (A) Cells were incubated with 200 μg/ml of GL ethanol extract for 18 h in the presence or absence of PD98059 (40 μM), SB203580 (20 μM) and SP600125 (25 μM). Western blotting was then performed with HO-1 antibody. (B) Cells untreated or treated with GL ethanol extract (200 μg/ml) in the presence or absence of each specific inhibitor for 18 h were exposed to 5 mM glutamate for 18 h. Trolox (50 mM) was used as positive control. Each bar represents the mean±S.D. of three independent experiments. Data shown represent the mean values of three experiments±S.D. *P<0.05 compared to the group with 5 mM glutamate.

따라서 본 연구를 통하여 영지 에탄올 추출물이 HO-1 단백질의 발현을 크게 증가 시켰고, 마우스유래 해마 세포 HT22에서 글루타메이트로 유도한 세포독성에 강한 보호효과를 관찰하였다. HO-1 단백질 발현의 증가는 MAPKs의 다양한 경로 중 JNK pathway 인산화와 Nrf2 단백질의 핵내 전사 유도를 통하여 이루어짐을 확인하였다. 추후 연구를 통해 영지 에탄올 추출물의 추가적인 뇌세포 보호기전 연구와 활성 물질 분리, 구조규명 및 동물실험 등에 관한 추가적인 연구가 필요할 것으로 생각된다.

 

결 론

본 연구는 영지 에탄올 추출물의 뇌세포 보호 효과와 그 메커니즘에 관하여 연구하였으며, 그 결과 100% 에탄올 추출물에서 글루타메이트로 유도한 HT22세포의 독성에 대해 우수한 보호 효과를 나타내었다. 이와 같은 효과는 영지 에탄올 추출물이 HT22 세포에서 JNK의 인산화와 Nrf2의 핵내 전사를 유도하고, 뇌세포 보호효과는 이와 같은 기전을 통한 HO-1 단백질 발현조절에 의한 것으로 생각된다.