병아리 및 청둥오리에 있어서 닭와포자충의 오오시스트 배설상황과 면역원성

Oocyst Production and immunogenicity of Cryptosporidium baileyi in chickens and mallards

  • 이재구 (전북대학교 수의과대학 기생충학교실) ;
  • 장병귀 (전북대학교 수의과대학 기생충학교실) ;
  • 박배근 (전북대학교 수의과대학 기생충학교실)
  • Lee, Jae-Gu (Department of Parasitology, School of Veterinary Medicine, Chonbuk National University) ;
  • Jang, Byeong-Gwi (Department of Parasitology, School of Veterinary Medicine, Chonbuk National University) ;
  • Park, Bae-Geun (Department of Parasitology, School of Veterinary Medicine, Chonbuk National University)
  • 발행 : 1995.03.01

초록

한국산 Cryptosporidium baileyi를 2일령의 각 청둥오리와 병아리에 $2{\;}{\times}{\;}10^6$개의 오오시스트와 그 10배단계 희석계열을 $2{\;}{\times}{\;}10^2$까지 5단계를 만들어 경구접종시켜 오오시스트 배설상황과 여러 장기내 발육기의 분포상황을 조사하고나서 초감염내과 조류에 처음에 40 mg/30 g 그 24시간 후에 10 mg/30 g의 carrageenan을 복강내 투여하고 그 6시간 후에 다시 $2{\;}{\times}{\;}10^6$개의 오오시스트를 재차접종하여 면역원성을 조사하였다. 오오시스트 투여량이 많을수록 patent period가 길었고(27-30일간, 병아리: 10-18일간 청둥오리), 오오시스트 배설량도 많았으나(극기에 있어서 $6{\;}{\times}{\;}10^5-3.5{\;}{\times}{\;}10^6$, 병아리: $2{\;}{\times}{\;}10^5-4{\;}{\times}{\;}10^5$, 청둥오리) prepatent period는 짧았다(2-3일간. 병아리: 3-4일간, 청둥오리). 한편, 청둥오리에서는 $2{\;}{\times}{\;}10^3{\;}및{\;}2{\;}{\times}{\;}10^3$의 오오시스트 접종군에서는 오오시스트가 전혀 검출되지 않았다. 오오시스트 경구접종 후 12일에 총배설강과 파브리시우스낭에서 다수의 발육기를 검출할 수 있었는데 병아리가 청둥오리보다 현저하였다. Carrageenan 투여군은 모두 대조군은 병아리에서 $2{\;}{\times}{\;}10^5{\;}및{\;}2{\;}{\times}{\;}10^3$, 그리고 청둥오리에서 이 밖에 $2{\;}{\times}{\;}10^4$의 오오시스트 투여군에서도 재차 접종후 4일에서 14일 및 5일에서 15일까지 분변으로부터 오오시스트가 다소 검출되었다 병아리 및 청둥오리에 있어서 재차접종 직전의 말초혈액내 대식세포수 및 복강내 대식세포 활성은 대조군에 비하여 carrageenan 투여군이 현저하게 낮았다(P < 0.05) 병아리와 청둥오리는 Meblocker인 carrageenan을 투여하였음에도 불구하고 이 원충의 재차감염이 미약하였다는 것은 이 원충의 면역원성이 극히 강력하였다는 것을 뜻한다.

Two-day-old chickens{\;}and{\;}mallards were orally inoculated with one of % doses varying from $2{\;}{\times}{\;}10^2{\;}to{\;}2{\;}{\times}{\;}10^6$ of C. bailevi oocysts per individual. Generally, the more oocysts Inoculated were, the longer the patent periods were, and the more oocysts shedding were. Meanwhile increasing the inoculative dose, the prepatent periods were shortened except that mallards inoculated with $2{\;}{\times}{\;}10^2and{\;}2{\;}{\times}{\;}10^3$ oocysts foiled to produce the oocysts. The more parasites involving oocysts appeared from the chicken in comparison to the mallard. In the chickens challenged with a single dose of $2{\;}{\times}{\;}10^6$ oocysts, a small number of oocysts were detected from feces on days 4-14 after challenge infection (ACI) in all of carrageenan administered groups and in the control groups inoculated with $2{\;}{\times}{\;}10^2{\;}and{\;}2{\;}{\times}{\;}10^3$ oocysts. In the mallards, a few oocysts were also recognized on days 5-15 ACI in all of carrageenan treated groups and in the control groups inoculated with $2{\;}{\times}{\;}10^2,{\;}2{\;}{\times}{\;}10^3{\;}and{\;}2{\;}{\times}{\;}10^4$ oocysts. Just prior to challenge infection, phagocytic activity of peritoneal macrophages (Me) and the number of peripheral Mc in both birds were significantly decreased in the carrageenan treated groups as compared to the control groups. Mild challenge inection in both birds denoted that the immunogenicity of C. bailelli to the birds was very strong, despite MB blocker carrageenan administration.

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