In order to demonstrate whether ovoperoxidase hardens the zona of oocytes activated by incubating in M-S buffer supplemented with 20$\mu$M of Ca-ionophore A 23187, the effect of peroxidase inhibitors(250mM pheylhydrazine, 28mM sodilum sulfite, 350mM glycine ethyl ester and 50mM sodium azide), tyrosine analogue(12.5mM tyramine) and exogeneous peroxidase(50$\mu\textrm{g}$/ml horseradishperoxidase ; HRP) on zona hardening in ionorphore-treated oocytes were investigated. The results obtained from thses experiments were summarized as follows : 1. The zona solubility (t50) of ionophore-activated and DMSO-treated oocytes at 1, 2 and 3 hr of culture were 25.0, 31.6 and 40.6min., and 9.7, 10.8 and 15.5 min., respectively. The longest time required for zona lysis of ionophore activated oocytes at 1 hr after onset of ionophore treatment. The diferences int50 for zona was significantly greater as compared to DMSO-treated controls(P<0.01). 2. The inhibition rates of hardening in the oocytes treated with the phenylhydrazine, sodium sulfite, glycine ethyl ester and sodium azide, were 23.8, 61.9, 95.2 and 23.8%l, respectively, and the tyramine, was 14.3%. Several known peroxidase inhibitors and tyrosine analogue were blocked zona hardening in ionophore activated oocytes. 3. The treatment of exogeneous peroxidase promoted the zona hardening of activated oocytes but not unactivated oocytes. These resuls indicate that the ovoperoxidase apparently catalyzes the hardening of the zona following ionophore activation of mouse oocytes.
It is well known that the zona pellucidae of mouse oocytes become "hardened" when they are allowed to mature in vitro in the absence of serum components. To see if oocytes already undergone meiotic resumption in vivo exhibit similar zona hardening, hardening of ZP of cumulus-enclosed oocytes(CEOs) was examined after culture in vitro since their release from follicles various hours after hCG injection. When CEOs matured in vivo for 3h or longer were subjected to culture in vitro for 14h with BSA alone, zona hardening was significantly reduced compared to those cultured in vitro from the begining of maturation. However, when CEOs matured in vivo for 5h were freed from cumulus cells and then cultured in vitro with BSA alone, little reduction of zona hardening was observed. Preincubation of CEOs for 5h with fetuin, one of the well known inhibitor of in vitro zone hardening, did not prevent zona hardening during its subsequent culture of CEOs for 14h without fetuin. However, when CEOs precultured with both fetuin and PMSG for 5h and then further cultured with BSA alone for 14h, zona hardening was dramatically reduced. Under these conditions, the expansion of cumulus cell was observed. In addition, CEOs cultured with both BSA and dbcAMP to prevent their meiotic resumption showed a significant increase of zona hardening. Whether the observed zona hardening was correlated with the conversion of ZP2 to $ZP2_{f}$ was examined. Zona pellucida, isolated from CEOs matured for 5h in vivo and then further cultured with BSA alone was subjected to SDS-PAGE. Most of ZP2 molecules from these CEOs did not undergo conversion from ZP2 to $ZP2_{f}$. From these results, it is concluded that CEOs undergone meiotic resumption in vivo do not exhibit zona hardening when they were subsequently cultured in vitro without serum components. It appears that cumulus cells play an important role in this phenomenon.
These experiments were carried out to investigate whether the enzyme is involved in zona hardening during normal activatin of the oocytes by sperm, and demonstrate peroxidase activity during in vitro fertilization of oocytes treated with peroxidase inhibitors(250 $\mu$M phenylhydrazine, 28mM sodium sulfite, 350mM glycine ethyl ester and 50mM sodium azide) and tyrosine analogue(12.5mM tyramine). Also, zona soluble properties of the ovarian oocytes incubated for 0, 5, 10 and 15 hr in the presence of pheylhydrazine or tyramine were studied by using $\alpha$-chymotrypsin. The results obtained from these experiments were summarized as follows ; 1. The rates of fertilizatin in control oocytes and oocytes treated with phenylhydrazine or tyramine were 69.8%, 62.3% and 88.2%, respectively. However in vitro fertilization in oocytes treated with three different peroxidase inhibitors, sodium sulfite, glycine ethyl ester and sodium azide, were not induced. The oocytes treated with phenylhydrazine had no significant effect on in vitro fertilization rate as compared to control. However there was a significantly different in fertilization between tyramine treated group and control group(P<0.01). 2. The zona solubility(t50) of control and fertilized oocytes in culture treated with phenylhydrazine or tyramine were 30.7, 26.0 and 16.3 min., respectively. Phenylhydrazine treated group and tyramine treated group had effect on inhibition of zona hardening as compared to control group. These results suggest that ovoperoxidase is involved in zona hardening during normal activation of the oocytes by sperm. 3. t50 of control oocytes and ovarian oocytes treated with phenylhydrazine or tyramine for 5, 10 and 15 hr in vitro were 14.0, 26.2 and 32.0 min., 14.5, 26.9 and 30.2 min., and 14.0, 24.3 and 31.2 min., respectively. These results suggest that zona hardening in ovarian oocytes matured for various times in vitro cannot be inhibited by peroxidase inhibitors and tyrosine analogue, that the spontaneous zona hardening incultured ovarian oocytes is not caused by the secretory products of cortical granules released during the cortical reaction, ovoperoxidase.
Objective: Zona pellucida (ZP) has been thought to be the barrier of egg to sperm penetration before and after fertilization. The phenomenon of ZP hardening has been considered as a post-fertilization event until now, and it is generally accepted that it is caused by the secretory products of cortical granules released during the cortical reaction. Hardening of ZP could occur "spontaneously" in mammalian oocytes in standard culture conditions, and that it is probably not a consequence of cortical reaction. The purpose of our study was to investigate the effect of human amniotic fluid (HAF) on nuclear maturation (NM) and fertilization ability of mouse immature oocytes. Methods: HAF was obtained from patients undergoing amniocentesis at $16{\sim}20$ weeks of gestation. HAF from five to ten patients was centrifuged and the supernatants was pooled. Cumulusenclosed mouse immature oocytes were incubated in the medium containing HAF, and examined to confirm NM and fertilization. Female ICR mice (about 3 weeks old) were stimulated with 7.5 IU PMSG. Immature oocytes were isolated at $48{\sim}52$ hrs post PMSG injection and cultured in TCM-199 supplemented with 20% HAF for 18 hrs. FBS was used as a control for the examination. Matured oocytes (MII) were fertilized with sperms collected from the epididymis of male mice (over 10 weeks old). Fertilization was in conducted T6 medium containing 15 mg/ml BSA, and confirmed at 6 hrs post-insemination. Fertilization rate was assessed in zona-intact or zona-free oocytes (denuded by trypsin). Evaluation of NM and fertilization was carried out by rapid staining method. ZP hardening was evaluated by incubating cumulus cell-free mature oocytes in 0.001% chymotrypsin at $37^{\circ}C$ for 10 min. Results: There was no significant difference between the effects of HAF (86.6%) and FBS (87.7%) supplements on NM of immature oocytes. When maturation medium was supplemented with HAF, total fertilization rates (7%) were significantly lower (p<0.01) than that of FBS (85.1%). In HAF group, fertilization rate was increased (p<0.01) in zona-free oocytes (7% versus 100%). The resistance of mouse oocyte ZP to digestion by chymotrypsin after maturation in vitro was significantly higher (p<0.01) in HAF group (86.7%) than in FBS (6.7%). To culture oocytes in FBS were very effective in preventing ZP hardening. However cultured oocytes in HAF showed high rate of ZP hardening (p<0.01). Conclusions: These results suggest that HAF can be used as a supplement for the NM of mouse immature oocytes in vitro. However, HAF induces spontaneous hardening of ZP of mouse immaure oocytes during maturation in vitro.
These experiments were carried out to investigate whether zona hardening affect the efficiency of in vitro fertilization in mouse oocytes. The soluble properties for zona pellucida of oocytes matured in vivo, aged oocytes, and ovarian oocytes matured in vitro have been analyzed with proteolytic enzyme, 3mg/ml of $\alpha$-chymotrypsin. The mean solubility(t50) for the zona of unfertilized oocytes, oocytes not fertilized at the first inseminati and in vitro produced zygotes were 10.1, 20.3 and 32.3min., respectively. The t50 for zona lysis of fertilized oocytes was significantly difference than those observed for unfertilized oocytes and oocytes not fertilized at the first insemination(P<0.01). In addition, the t50 of zona in ovulated oocytes with and without cumulus cells incubated for 0, 3, 6, 9 and 12 hr in vitro, t50 were 13.9, 11.1, 20.7 and 28.0min., and 22.3, 21.0, 30.0 and 33.5min., respectively. In these experiments, the zona pellucida showed a gradual increase in resistance to dissolution by $\alpha$-chyjotrypsin with in vitro aging for more than 6 hrs. This effect was greater in cumulus-free as compared to cumulus-intact oocytes. Finally, in cumulus-intact and cumulus-free ovarian oocytes matured for 0, 5, 10 and 15 hr in vitro the t50 of zona pellucida were 3.0, 10.6, 18.4 and 24.5 min., and 3.0, 14.0, 26.2 and 32.0 min., respectively. Clear differences in solubility between the zona pellucida of oocytes matured in vivo and in vitro. This data were found suggest that under in vitro conditions there is a gradual change in the soluble properties of the zona pellucida, particularly in the absence of the cumulus cells.
One consequence of fertilization in mammals is an increased resistance of the zona pellucida (ZP) to proteases and various chemical reagents. This phenomenon has been called 'zona pellucida hardening' (ZPH), and it is generally accepted that it is caused by the secretory products of cortical granules released by the egg at fertilization. ZP of mouse oocytes maturing in vitro in a chemically defined medium becomes progressively more resistant to solubilization by chymotrypsin ("Spontaneous" ZP hardening). In the present study, it was aimed to find the specificity of spontaneous ZPH in relation to its possible relevance to the cortical reaction and the physiological block to polyspermy. When a maturation inhibitors, cAMP analog(dbcAMP) and phosphodiesterase inhibitor (IBMX) was added to culture medium, it prevent spontaneous ZPH of mouse oocyte during in vitro culture. Thus spontaneous ZPH requires GVBD, since it is prevented by those agents, which inhibit GVBD in vitro. However, culture for 3 hours in the presence of PMA(lOng/ml), a protein kinase C activator, resulted in ZPH without GVBD, thus suggesting that ZPH may be regulated independently apart from the event of GVBD. Pretreatment of mouse oocyte with FBS result in partially inhibitory effect on subsequent spontaneous ZPH. Induction of GVBD in vivo had a inhibitory effect on the spontaneous ZPH, but subsequent spontaneous ZPH. Induction of GVBD in vivo had a inhinbitory effect on the spontaneous ZPII, but had no inhibitory effect on PMA-induced ZPH. Treatment with a microfilament formation blocker(cytochalasin-B) at 1${\mu}g$/ml concentration, resulted in the excellent inhibitory effect on spontaneous ZPH. However cytochalasin-B did not inhibit PMA-induced ZPH. Thus this suggesting that spontaneuse ZPH had a different mechanism from PMA-induced ZPH.
"Spontaneous" hardening of the zona pellucida of mouse oocytes during in vitro culture is most likely due to cortical granules exocytosis. Thus the purpose of the present study was to determine whether the exocytosis factor is involved in spontaneous zona pellucida hardening during in vitro culture of the mouse. The results obtained form these experiments were summarized as follows; 1. When a protein synthesis inhibitor(100${\mu}g$/ml puromycin) was added to the culture medium, it did not prevent spontaneous ZPH of mouse oocyte during in vitro culture. 2. Calmodulin antagonists (trifluoperazine and chlorpromazine) and calcium channel blocker (verapamil) had no inhibitory effect in spontaneous ZPH. 3. A microtubule assembly inhibitor, colcemid had some inhibitory effect on spontaneous ZPH. 4. Treatment with a microfillament formation blocker(cytochalasin-B) at 1${\mu}g$/ml concentration, resulted in the excellent inhibitory effect on spontaneous ZPH. However cytochalasin-B did not inhibit ethanol-induced ZPH.
핵 이식에 공여되는 수핵난자의 효과적인 동결보존을 위하여 한우 성숙난자를 1.0 M dimethylsulfoxide(DMSO) 또는 1.0 M glycerol이 함유된 동결보호제를 이용하여 처리하거나, 동결보호제 처리 후 완만동결법을 이용한 동결융핼르 시행하여 상기 실험처리로 야기되는 투명대 경화현상을 관찰하였다. 도축장 유래의 난소에서 미성숙난자를 채취한 후 10% 소 태아혈청을 함유한 TCM-199을 이용하여 22∼24 시간 동안 체외성숙배양을 이해하였다. 배양후 작출된 성숙난자를 각각의 동결보호제로 처리, 혹은 처리 후 동격융해한 후 protease를 이용하여 투명 대의 경화현상 발생의 빈도를 조사하였다. 또한 동격란을 동결정액을 이용한 체외수정에 공여한 후 정자 침입농도능을 조사하였다. 동결보호제로 처리한 난자에 있어서 보호제의 종류와 관계없이 투명대 경화현상이 유의적 (P<0.05) 으로 증가하였으나 이후의 동결융해 처리에 의한 추가적인 경화현상의 발생은 증가하지는 않았다. 또한 투명대 경화현상의 발생양상을 동결보호제 처리 후 10분 간격으로 측정한 결과 DMSO의 경우 처리후 10분, glycerol의 경우 처리 후 20분 후부터 유의적으로 차를 발견할 수 없었으며, 수정율 및 난자 1개당 침입한 정자의 수는 동결란에서 유의적으로 증가하지 않았다. 본 연구의 결과 동결난자의 투명대 경화현상은 동결보호제 처리과정에서 이미 일어나지만, 이러한 투명대 경화현상이 난자의 동결보존 후 수정능에는 현자한 영향을 미치지 않는다는 사실이 규명되었다.
흰쥐의 배아발생 동안에 피질반응 후 배아 외부에 새롭게 형성된 피질과립막 (cortical granule envelope, CGE)이 존속하는지 여부와 투명대와 배아표면의 미세구조 변화를 조사하였다. 흰쥐배아의 투명대와 배아표면의 미세구조는 주사전자현미경으로 관찰하였으며, 피질과립막 형성과 분포는 Ulex europaeus agglutinin I lectin을 표지하여 형광현미경으로 관찰하였다. 배아표면은 미수정란 과는 다르게 배아표면의 미세융모가 단축된 특징을 보였고, 8-세포기 배아에서 뚜렷하게 볼 수 있는 CGE에 의해 덮여 있다. 투명대의 구조 역시 미수정난자에 존재하는 구조와는 다른 특징을 나타냈고, 특히 투명대의 섬유성 미세공 구조가 거칠어지고 수적인 감소가 나타났다. 위란강에 피질반응에 의한 피질과립막이 형성되어 배아발생 동안에 존속하였으나 수정란보다는 엷고 국소적인 분포양상을 나타내었다. 본 연구 결과를 종합해 볼 때 흰쥐 초기 배아 발생 동안에는 배아 외부에 피질과립막이 존속하고, 수정시에는 투명대 경화 뿐만 아니라 피질반응에 의해 투명대의 미세구조와 배아표면의 구조도 변화됨을 알 수 있다.
ICR female mice aged 3 to 4 weeks, were stimulated with 7.5 IU PMS injection. At 48-52h post-PMS injection, ovaries were dissected out and oocytes-cumulus complexes(OCCs) were divided into three groups, cumulus-free oocytes(O), cumulus-free oocyte cocultured with cumulus cells(O+C) and OCC. The oocyte were cultured in TCM199 containing various protein sources, FCS, BSA or PVP with gonadotropins(Gns) for 24h. Spermatozoa were collected from cauda epididymis and capacitated in T6 + BSA for 2h. After oocyte maturation in vitro(IVM) in different experimental groups, matured oocytes were inseminated with the capacitated spermatozoa in T6 + BSA for 6h. In the groups of IVM in TCM + BSA or PVP, fertilization(IVF) did not occur efficiently. However, increased fertilization was found in TCM+ FCS group. The oocytes groups, with cumulus cells showed decreased polyspermy in FCS group (O; 31.8 %, O + C; 12.2 %, OCC; 16%), the addition of Gns did not prevent polyspermy in all three groups. The rates of fertilization increased in zona-free oocytes in PVP group. This results showed that culture system for IVM and IVF could be improved. Furthermore, PVP can be used for the substitution of protein source during maturation, and its low rate of fertilization has been found due to zona hardening which occurred in FCS-free medium.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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