β-1,3-glucanosyltransferases play essential roles in cell wall biosynthesis in yeast. Kluyveromyces lactis has six putative β-1,3-glucanosyltransferase genes. KlGAS1-1 and KlGAS1-2 are homologs of Saccharomyces cerevisiae gene GAS1. RT-qPCR indicated the transcription level of KlGAS1-1 was significantly reduced while heterologous protein (thermostable xylanase B) secretion was enhanced during medium optimization. To evaluate if these two events were related, and to improve xylanase B secretion in K. lactis, we constructed KlGAS1-1 and KlGAS1-2 single deletion strains and double deletion strain, respectively. KlGAS1-1 gene deletion resulted in the highest xylanase B activity among the three mutants. Only the double deletion strain showed morphology similar to that of the GAS1 deletion mutant in S. cerevisiae. The two single deletion strains differed in terms of cell wall thickness and xylanase B secretion. Transcription levels of β-1,3-glucanosyltransferase genes and genes related to protein secretion and transport were assayed. The β-1,3-glucanosyltransferase genes displayed transcription complementation in the cell wall synthesis process. KlGAS1-1 and KlGAS1-2 affected transcription levels of secretion- and transport-related genes. Differences in protein secretion ratio among the three deletion strains were associated with changes of transcription levels of secretion- and transport-related genes. Our findings indicate that KlGAS1-1 deletion is an effective tool for enhancing industrial-scale heterologous protein secretion in K. lactis.
A full-length cDNA of OgGRP gene encoding a glycinerich cell wall protein was isolated from wild rice (Oryza grandiglumis). Deduced amino acid sequences of OgGRP are composed of 148 amino acids (16.3 kDa), and show 85.9% homology with Osgrp-2 (Oryza sativa). RT-PCR analysis showed that RNA expression of OgGRP was regulated by defense-related signaling chemicals, such as cantharidin, endothall, jasmonic acid, wounding, or yeast extract treatment. In relation to pathogen stress, the function of OgGRP was analyzed in OgGRP over-expressing Arabidopsis thaliana. Overexpression of OgGRP in Arabidopsis contributed to moderate resistance against fungal pathogen, Botrytis cinerea, by lowering disease rate and necrosis size. In the analysis of the transgenic Arabidopsis lines to check the change of gene expression profile, induction of PR1, PR5 and PDF1.2 was confirmed. The induction seemed to be caused by the interaction of ectopic expression of OgGRP with SA-and JA-dependent signaling pathways.
Kim, Wan-Jae;Yoon, Taek-Joon;Kim, Dong-Woo;Moon, Won-Kook;Lee, Kwang-Ho
The Korean Journal of Food And Nutrition
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v.23
no.2
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pp.141-146
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2010
Cisplatin(cis-diamminedichloroplatium) is one of the most effective anti-cancer drugs being clinically used in the treatment of solid tumors. Despite its therapeutic benefits, its use in clinical practice is often limited because of dose related toxicity. It is known that yeast cell wall beta-glucans possess immuno-modulating properties, which allows for their application in antitumor therapy. IS2 is a kind of beta-glucan derived from the cell wall of mutated Saccharomyces cerevisiae, which exhibits anti-cancer activity in vitro and in vivo. The present study explored the possibility of combination therapy of IS2 with cisplatin. In experimental metastasis of colon26-M3.1 cells, prophylactic intravenous administration of IS-2 in combination with cisplatin effectively inhibited tumor metastasis compared with cisplatin alone or IS-2 treatment in vivo. IS-2 effectively enhanced Th1 type cytokines including IFN-$\gamma$, IL-2, IL-12 and GM-CSF. Simultaneously, this combined treatment inhibited production of Th2 type cytokines compared with control. These results suggested that IS-2 can be applied in combination therapy with anti-cancer drugs to minimize their side effects.
The Potexvirus Alternanthera mosaic virus (AltMV) has multifunctional triple gene block (TGB) proteins, among which our studies have focused on the properties of the TGB1 protein. The TGB1 of AltMV has functions including RNA binding, RNA silencing suppression, and cell-to-cell movement, and is known to form homologous interactions. The helicase domains of AltMV TGB1 were separately mutated to identify which regions are involved in homologous TGB1 interactions. The yeast two hybrid system and Bimolecular Fluorescence Complementation (BiFC) in planta were utilized to examine homologous interactions of the mutants. Helicase motif I of AltMV TGB1 was found to be critical to maintain homologous interactions. Mutations in the remaining helicase motifs did not inhibit TGB1 homologous interactions. In the absence of homologous interaction of TGB1, subcellular localization of helicase domain I mutants showed distinctively different patterns from that of WT TGB1. These results provide important information to study viral movement and replication of AltMV.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.13
no.2
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pp.193-204
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1984
The enzymatic properties of the alkaline AL-protease, which had been prepared from the crude zymolyase of Arthrobzoter luteus, was investigated together with its active amino acid residue. Complete inactivaton of the proteolytic activity of AL-protease by either DFP or PMSF was simultaneously accompanied by the loss of its lytic effect on the lysis of yeast cell wall. In the reaction, AL-protease showed the pattern of inactivation to decrease very slowly, as compared to that of chymotrypsin, and that enzyme and DFP were found to react with a molar ratio of 1 : 1. The preparation of AL-protease exhibited no hydrolytic activity in any substrates of polysaccharases, playing a significant role in the lysis of yeast cell wall. The optimum pH and temperature of AL-protease was pH 10.5 and $65^{\circ}C$, respectively. It also showed stability in the pH range from 5 to 11 and at the temperature below $65^{\circ}C$. Through the identification of the amino acid residue in the active site of the $^{32}P$-diisopropylph-osphorylated(DIP) AL-protease modified specifically with $^{32}P$-labeled DFP, AL-protease was found to be a DFP-sensitive which has a mole of active serine residue involved in its proteolytic activity per mole of the enzyme.
Several kinds of organic acids, alcohols, aromatic compounds and sugars as carbon sources were tested in order to produce the cell mass of Rhizopus oryzae which is used in part of food processing or organic acid fermentation. Sodium acetate among them was good enough for carbon source as well as glucose under the concentration of one percent. All nitrogenous substances tested such as ammonium, nitrate or organic nitrogen compounds were well used by this strain of Rhizopus oryzae as nitrogen source. Ammonium sulfate among inorganic nitrogen compounds was most utilized as a nitrogen source in glucose or acetate medium. This strain did not require any growth factors such as yeast extract. The following composition of medium was therefore determined in order to produce the cell mass of Rhizopus oryzae: Na-acetate 1 %, (NH$_4$)$_2$SO$_4$ 0.2%, $K_2$HPO$_4$ 0.05%, MgSO$_4$.7$H_2O$ 0.01%, NaCl 0.01% (PH 5.5). The cell wall of mycelium grown in above medium was lysed optimally at pH 6.5 and 5$0^{\circ}C$ by the action of Strepzyme 115-5. On producing protoplast from mycelium by enzymatic action, almost all of the mycelium was damaged after 4hrs of treatment.
The taxonomical properties of strain J-275L isolated from soil as a microorganism which produces extracellular adenine deaminase and cultural conditions for the enxyme production were studied. The hyphae of strain J-275L is fragmented into rod-or coccus-like elements. The elements of fragmented aerkal hyphae has smooth surfaces. The cell wall of the organism contains LL-diaminopimelic acid. Mycolic acid are not produced. As a result of taxonomical studies, strain J-275L is designated as Nocardioides sp. J-275L. The optimum medium for the enzyme production from Nocardioides sp.J-275L wascomposed of 0.5% peptone, 0.5% dextrin, 1% yeast extract, and 0.2% $K_{2}HPO_{4}$. The optimum initial pH of the medium was pH 7.5.
This study was done to elucidate the electron microscopic characteristics of certain pathogenic fungi. Four Candida species, (C. albicans, C. tropicalis, C. parapsilosis and C. glabrate) and Cryptococcus neoformans were cultured for 3 days at $30^{\circ}C$ in the Sabouraud dextrose medium. After incubation, they were stored at $4^{\circ}C$ for 24hours. Fine structures were analyzed by morphometry, and Tukey's HSD test was used for statistics. On scanning electron microscopy C. albicans and C. neoformans were similar in size but different in shape, showing sphero-shape or ovalo-shape in C. neoformans. Surface of C. neoformans was coarse and spiny, but Candida species examined were uniformly smooth. In size, C. glabrata was the smallest among them. Budding scar as seen on the surface of Candida species by the number ranging from 1 to 7. Cryptococcus neoformans showed one or two budding scar. On transmission electron microscopy the cytoplasm of most yeast cells showed plentiful glycogen particles, mitochondria, peroxisomes and vacuoles. However, cell walls were different among four Candida species and Cryptococcus neoformans. The cell wall of Candida species consisted of fibrous layer, that was electron dense layer and transparent layer, in contrast to Cryptococcus neoformans consisted of electron dense layer with lamellar structure. This layer was two times thicker than that of Candida species. The outer layer of cell wall was of radiating pattern.
Xylan, the major hemicellulose component of many plants, occurs naturally in a partially acetylated form and lignin, the most resistant component in plant cell wall degradation, is also attached to ${\beta}-1,4-linked-D-xylose$ backbone through the ester linkage. Esterases are required to release the esterified substituent and acetyl esterases are important in the complete degradation of acetylated polysaccharides, like pectins and xylans. The gene(Axe) encoding acetyl xylan estarase(AXE) was isolated from genomic ${\lambda}$ library from Aspergillus ficuum. Nucleotide sequencing of the Axe gene indicated that the gene was separated with two intervening sequences and the amino acid sequence comparison revealed that it was closely related to that from A. awamori with the 92 % indentity. Heterologous expression of AXE was conducted by using YEp352 and Saccharomyces cerevisae 2805 as a vector and host expression system, respectively. The Axe gene was placed between GAL1 promoter and GAL7 terminator and then this recombinant vector was used to transform S. cerevisiae 2805 strain. Culture filtrate of the transformed yeast was assayed for the presence of AXE activity by spectrophotometry and, comparing with the host strain, four to five times of enzyme activity was detected in culture filtrate of transformed yeast.
Recently phage K11 lysozyme was cloned and characterized in our lab. The K11 lysozyme was identified to have dual functions. It not only cuts a peptidoglycan bond in bacterial cell wall but also acts as an inhibitor of K11 RNA polymerase. It has been known that the T7 lysozyme binds specifically to T7 RNA polymerase and inhibits transcription. The dual activities of K11 lysozyme are atreeable to the case of T7 phage lysozyme and RNA polymerare. In order to identify the binding magnitude of K11 lysozyme with K11 RNA polymerase, yeast two-hybrid system was used. K11 phage lysozyme gene was introduced into pLexA plasmid and used as a prey. Also, K11 phage RNA polymerase gene was introduced into pJG4-5 and used as a bait. The binding between K11 lysozyme and K11 RNA polymerase was demonstrated by expression of reporter genes such as lacZ and leu2.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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