• 대한임상검사과학회지
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• 제48권2호
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• pp.153-157
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• 2016

ATP 분비 경로는 담관세포종 세포주를 포함한 일부 세포의 RVD 조절에 있어서 주요한 조절 역할을 수행할 것으로 생각되나, 정상 담관세포의 RVD에 있어서의 역할은 잘 알려져 있지 않다. 정상 담관세포의 RVD에 있어서 세포 외 ATP와 ATP 경로의 역할을 알아보기 위하여, 정상마우스에서 담관세포를 분리하여 연구에 이용하였다. BDCCs의 크기 변화는 정량측정 비디오현미경을 이용하여 횡단면을 간접 측정하였다. 정상마우스의 BDCCs의 횡단면은 저장액에서 노출한 후 10분에 $1.20{\pm}0.02$ (n=20)이었으나, 40분에는 $1.06{\pm}0.03$로 감소하였다. ATP와 ATP 가수분해 효소인 아피라아제 또는 P2 수용체 차단제인 슈라민 RVD 과정 중에 처리 하였으나 처리하지 않은 대조군과 중요한 차이를 보이지 않았다. 더 나아가, PKC 저해제인 비신돌아마이드 I 과 Ro 31-8220을 처리하여 RVD에 미치는 영향을 알아 보았으나 대조군과 중요한 차이를 보이지 않았다. 이러한 결과들에서 정상 마우스 담관세포는 담관세포종 세포주와 다른 결과를 보였으며, 정상 마우스의 RVD에 있어서 ATP는 중요한 역할을 하지 않음을 알 수 있었다.

• IMMUNE NETWORK
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• 제6권2호
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• pp.76-85
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• 2006

Background: Chemotaxis is one of the cardinal functions of leukocytes, which enables them to be recruited efficiently to the right place at the right time. Analyzing chemotactic activities is important not only for the study on leukocyte migration but also for many other applications including development of new drugs interfering with the chemotactic process. However, there are many technical limitations in the conventional in vitro chemotaxis assays. Here we applied a new optical assay to investigate chemotactic activities induced in differentiated HL-60 cells. Methods: HL-60 cells were stimulated with 0.8% dimethylformamide (DMF) for 4 days. The cells were analyzed for morphology, flow cytometry as well as chemotactic activities by a time-lapse videomicroscopic assay using a chemotactic microchamber bearing a fibronectin-coated cover slip and an etched silicon chip. Results: Videomicroscopic observation of the real cellular motions in a stable concentration gradient of chemokines demonstrated that HL-60 cells showed chemotaxis to inflammatory chemokines (CCL3, CCL5 and CXCL8) and also a homeostatic chemokine (CXCL12) after DFM-induced differentiation to granulocytic cells. The cells moved randomly at a speed of $6.99{\pm}1.24{\mu}m/min$ (n=100) in the absence of chemokine. Chemokine stimulation induced directional migration of differentiated HL-60 cells, while they still wandered very much and significantly increased the moving speeds. Conclusion: The locomotive patterns of DMF-stimulated HL-60 cells can be analyzed in detail throughout the course of chemotaxis by the use of a time-lapse videomicroscopic assay. DMF-stimulated HL-60 cells may provide a convenient in vitro model for chemotactic studies of neutrophils.