Massive identification of differentially expressed patterns has been used as a tool to detect genes that are involved in disease related process. We employed circular single stranded sense molecules as probe DNA for a DNA chip. The circular single stranded DNAs derived from 1,152 unigene cDNA clones were purified in a high throughput mode from the culture supernatant of bacterial transformants containing recombinant phagemids and arrayed onto silanized slide glasses. The DNA chip was examined for its utility in detection of differential expression profile by using cDNA hybridization. Hybridization of the single stranded probe DNA were performed with Cy3- or Cy5-labeled target cDNA preparations at $60^\circ$C. Dot scanning performed with the hybridized slide showed 29 up-regulated and 6 down-regulated genes in a cancerous liver tissue when compared to those of adjacent noncancerous liver tissue. These results indicate that the circular single stranded sense molecules can be employed as probe DNA of arrays in order to obtain a precious panel of differentially expressed genes.
Kim, Beom-Gi;Joh, Jung-Ho;Yoo, Young-Bok;Magae, Yumi
Mycobiology
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v.31
no.1
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pp.42-45
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2003
For transformation of Pleurotus ostreatus, two novel vectors, pPhKM1 and pPhKM2, were constructed, using the regulatory sequences of the P. sajor-caju $\beta$-tubulin gene(TUB1) and the ble gene encoding phleomycin binding protein. pPhKM1 contains ble fused to the TUB1 promoter and the Schizophyllum commune GPD terminator. pPhKM2 contains ble fused to the promoter and terminator regions of P. sajor-caju TUB1. To confirm phleomycin-resistance activity, each vector was cotrans-formed with pTRura3-2 into the P. ostreatus homokaryotic $ura^-$ strain. The transforming DNA was stably integrated into the genomic DNA. Subsequently, phleomycin resistance was conferred on wild-type dikaryotic P. ostreatus by transformation with pPhKM1 or pPhKM2. This transformation system generated stable phleomycin-resistant transformants.
Padilla-Guerrero, Israel Enrique;Bidochka, Michael J.
Mycobiology
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v.45
no.2
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pp.84-89
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2017
Fungi of the Metarhizium genus are a very versatile model for understanding pathogenicity in insects and their symbiotic relationship with plants. To establish a co-transformation system for the transformation of multiple M. robertsii genes using Agrobacterium tumefaciens, we evaluated whether the antibiotic nourseothricin has the same marker selection efficiency as phosphinothricin using separate vectors. Subsequently, in the two vectors containing the nourseothricin and phosphinothricin resistance cassettes were inserted eGFP and mCherry expression cassettes, respectively. These new vectors were then introduced independently into A. tumefaciens and used to transform M. robertsii either in independent events or in one single co-transformation event using an equimolar mixture of A. tumefaciens cultures. The number of transformants obtained by co-transformation was similar to that obtained by the individual transformation events. This method provides an additional strategy for the simultaneous insertion of multiple genes into M. robertsii.
Streptomyces cattleya is a producer of carbapenem antibiotics, thienamycin and N-acetylthienamycin, which have potent and broad-spectrum antibacterial activities. We stud ied on strain improvement for antibiotic productivity of S. cattleya by transformation technique which employed S.cattleya protoplasts and chromosomal DNAs of glutamic acid producers: Corynebacterium glutamicum and Arthrobacter simplex. 150 Transformant strains were cultured and bioassayed using Bacillus subtilis and Staphylococcus aureus as test organisms. 8.7% of transformants tested showed 1.4~2.6 fold higher productivities than wild type which produced $1.61{\pm}0.67{\mu}g/ml$. The best transformant produced $8.36{\pm}2.84{\mu}g/ml$ carbapenems.
We have evaluated a new mutagenesis strategy called random insertional mutagenesis with subtracted cDNA fragments. The cDNAs from long day Arabidopsis plants were subtracted by cDNAs from short day plants using PCR based cDNA subtraction. The subtracted cDNAs were inserted between 35S promoter and 3'-NOS terminator regardless of orientation. When the cDNA library was used for the random insertion into Arabidopsis genome by Agrobacterium-mediated transformation, approximately 15% of transformants showed abnormal development in leaf, floral organ, shoot apex. When 20 mutants were analyzed, 12 mutants showed single cDNA fragment insertion and 8 mutants showed more than 2 transgene insertions. Only two mutants among 12 mutants that have single cDNA insert showed consistent phenotype at T2 generation, suggesting the genetic instability of the mutants.
SOON-DUCK HONG;SHIN, WOO-CHANG;DONG-SUN LEE;JONG-GUK KIM
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.5
no.2
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pp.87-91
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1995
The chitinase gene was cloned from Acinetobacter sp. WC-17 for investigating the genetic control and enzymatic properties of bacterial chitinase. A genomic library of Acinetobacter sp. WC-17 was prepared in E.coli JM109 by using pUC18 as a vector. The chitinase-positive clone containing 3.2kb insert fragment was obtained from 5, 000 insert-bearing transformants. The optimum pH and temperature of cloned enzyme were 6.0 and $55^{\circ}C$, respectively. Almost all the chitinase activity of E.coli recombinant was localized in the periplasmic fraction, while most of the enzyme activity of Acinetobacter sp. WC-17 was found in the extracellular fraction.
Within the secondary metabolite class of flavonoids, which consist of more than 10,000 known structures, flavones define one of the largest subgroups. The diverse function of flavones in plants as well as their various roles in the interaction with other organisms offers many potential applications including in human nutrition and pharmacology. We used two genes, flavone synthase (PFNS-l) that converts naringenin into apigenin and flavone 7-O-methyltransferase (POMT-7) that converts apigenin into 7-O-methyl apigenin, to synthesize 7-O-methyl apigenenin from naringenin. The PFNS-l gene was subcloned into the E. coli expression vector pGEX and POMT-7 was subcloned into the pRSF vector. Since both constructs contain different replication origins and selection markers, they were cotransformed into E. coli. Using E. coli transformants harboring both PFNS-l and POMT-7, naringenin could be converted into 7-O-methyl apigenin, genkwanin.
To examine intracellular signaling of human $S1P_3\;(hS1P_3),$ a sphingosine 1-phosphate (S1P) receptor in plasma membrane, $hS1P_3$ DNA was transfected into RH7777 rat hepatoma cell line, and the inhibition of forskolin-induced cAMP accumulation and activation of MAP kinases by S1P were tested. In $hS1P_3$ transformants, S1P inhibited forskolin-induced activation of adenylyl cyclase activity by about 80% and activated MAP kinases in dose-dependent and pertussis-toxin (PTX) sensitive manners. In oocytes expressing $hS1P_3$ receptor, S1P evoked $Cl^-$ conductance. These data suggested that PTX-sensitive G proteins are involved in $hS1P_3-mediated$ signaling, especially the positive action of S1P in cell proliferation. The potential advantages of rat hepatoma cells for the research of sphingosine 1-phosphate receptor are discussed.
Kim, Yang-Woo;Chun, Sung-Sik;Chung, Young-Chul;Roh, Jong-Soo;Sung, Nack-Kie
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.23
no.6
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pp.659-664
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1995
To improve stability of recombinant DNA pLC1 encoding endoglucanase gene and pGL1 encoding $\beta $-glucosidase gene, DNA fragments of genes coding endoglucanase and $\beta $-glucosidase were cloned within the recA gene on a pDR1453, and the pDRE10 and pDRG20 of recombinant plasmids were integrated into the recA gene on the E. coli 1100 chromosomal DNAs. The stability of inheritance was completely maintained in E. coli 1100; Transformants E. coli 1100/pDREIO and pDRG20 were expressed well by recA promoter and increased endoglucanase and $\beta $-glucosidase activities. This method can be used as a model to improve the stability of recombinant plasmid in large scale culture.
Chromosomal DNA fragments of Bacillus sp. YA-14 isolated from soil as a potent xylan hydrolyzing bacterium, were ligated to a vector plasmid, pBR322, and used to transfer Escherichia coli HB101 cells. The recombinant plasmid pYDC21 was found to enable the transformants to produce xylanase. pYDC21 was found to contain the 3 kb HindIII fragment originated from the Bacillus sp. YA-14 chromosomal DNA by southern hybridization. The optimum temperature and pH for the reaction of xylanse produced by E. coli (pYDC21) were appeared at 50$_7$C and pH 7.0, respectiveiy. the xylanase enzyme was stable between pH 5.0 and 7.0 and maintained stably up to 4$0^{\circ}C$.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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